Отчетный период с 29.10.2021г. по 11.11.2021г.

За отчетный период специалисты серологического отдела ИЛ ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория» происследовали 6001 пробу сыворотки крови животных, из них выявлено: 63 положительных пробы по лептоспирозу (39 проб у крупного рогатого скота, 19 проб у лошадей, 5 проб у свиней), 96 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота.

Лептоспироз – острая инфекционная болезнь, возбудителем которой являются бактерии рода лептоспира (Leptospira). Болезнь характеризуется поражением капилляров, часто поражением печени, почек, мышц, явлениями интоксикации, сопровождается постоянной лихорадкой. Болеют животные и человек.
В серологическом отделе исследуют на лептоспироз сыворотку крови и мочу животных. Сыворотку крови исследуют в реакции микроагглютинации (РМА). Данная реакция основана на обнаружении специфических антител. Наличие специфических антител в сыворотке крови свидетельствует об инфицировании данной особи лептоспирами и возможном лептоспироносительстве. Для установления того, что животное болеет лептоспирозом, привозят мочу животных, которые дали положительную реакцию в РМА. Мочу исследуют методом микроскопии в виде раздавленной капли. Если в моче будут найдены лептоспиры, то такое животное будет считаться больным лептоспирозом.
Диагноз на лептоспироз устанавливают на основании эпизоотологических, эпидемиологических, клинических и патологоанатомических данных с обязательным подтверждением диагноза лабораторными исследованиями.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 27 проб, проведено 96 исследований. 
За отчетный период выявлено 2 положительных результата.
В 2 пробах сена установлена массовая доля сырого протеина в сухом веществе ниже нормы – 2.

 Свойства сена и его полезные качества

Сено – это основной корм для травоядных животных, особенно в зимний период. На большинстве территорий нашей страны нет возможности кормить животных свежей травой круглогодично. Для сохранения их здоровья, полноценного роста и развития используют сухую траву. Для разных животных используется сено определенного состава, важно также знать, в какой период его заготавливать и как правильно хранить.
Главным критерием оценки сена является кормовая единица. Именно этот показатель определяет качество продукта. В нем рассчитываются все кормовые нормы – количество питательных веществ, которое необходимо для нормального развития и здоровья животных. Одна кормовая единица соответствует питательности 1 кг овса, или 1414 кКал.

Свойства конкретного типа определяется видом трав, которые входят в его состав, временем их уборки, качеством сушки. В килограмме хорошего сена содержатся:
Кормовые единицы: 0,4-0,5.
Протеин: 60-70 г.
Витамины: А, Е, К.                                   
Каротин: 40-50 мг.
Минеральные вещества.
В хорошо высушенном и правильно заготовленном корме растения идентифицируются и отделяются друг от друга свободно. Определение ботанического состава – основная задача при оценке питательно ценности и качества сена. Это важнее, чем такие его свойства как цвет, запах, влажность и т.д. Нормальный корм – зеленоватого оттенка. Примесь бурого говорит о наличии трав семейства клеверов, синего – сладких злаков, желтого – о поздней заготовке.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 875 проб материала, проведено 916 исследования, выявлено 6 положительных случаев.
Поступивший материал (стабилизированная кровь крс) в отдел бактериологии и паразитологии был происследован на лейкоз гематологическим методом, в ходе испытания были получены положительные результаты.
Лейкоз крупного рогатого скота - хроническая инфекционная болезнь, вызываемая вирусом лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС). Лейкозом болеет крупный рогатый скот всех возрастов. Источником возбудителя инфекции является животное, зараженное ВЛКРС. Факторами передачи являются кровь, молоко и другие секреты и экскреты, содержащие лимфоидные клетки, инфицированные ВЛКРС. 
Чтобы предотвратить развитие лейкоза КРС животновод должен соблюсти некоторые меры профилактики:
1. Выдерживать в условиях карантина приобретенных коров;
2. Регулярно проводить лабораторную диагностику крови всех животных из стада;
3. Продавать мясную, молочную и прочую продукцию лишь после того, как получено ветеринарное разрешение;
4. Не допускать самопроизвольное перемещение коров из одной группы в другую;
5. Если появились подозрения на развитие инфекции, незамедлительно ставить в известность ветеринарную службу.
Диагностические исследования на лейкоз проводят серологическими, молекулярно-биологическим, гематологическим, клиническим, патоморфологическим методами, методом биологической пробы. Если обнаружен лейкоз крупного скота, на ферму накладывают карантин. Одновременно проходит утверждение плана по оздоровлению стада. Когда хозяйство находится на карантине, следует соблюдать определенные правила:
1. На животноводческой ферме проводятся дезинфекционные мероприятия самого коровника и инструментов, используемых при уходе за животными;
2. Запрещена перегруппировка животных в группах, поголовье, фермах или регионе;
3. Самцов надо содержать отдельно от самок во избежание вольного осеменения;
4. Запрещено вводить и вывозить животных из неблагополучного хозяйства либо региона.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики  поступило 897 проб, проведено  922  исследования. В ходе исследований выявлено 37 положительных случая.
Лабораторный мониторинг гриппа птиц - комплекс лабораторно-диагностических исследований по выявлению циркулирующих штаммов вируса гриппа птиц.
Грипп птиц – высоко контагиозная вирусная инфекция, которая может поражать все виды птиц. Наиболее чувствительными из домашних видов являются индюки и куры. Дикие виды птиц могут служить переносчиками инфекции. В силу естественной резистентности они сами, как правило, при этом не заболевают и могут преодолевать в процессе миграции значительные расстояния. Естественным резервуаром для вирусов гриппа птиц (ВГП) являются водоплавающие птицы, которые чаще всего ответственны за интродукцию инфекции в домашние хозяйства.
Одним из  методов лабораторно-диагностических исследований на грипп птиц является иммуноферментный анализ (непрямой метод ИФА для выявления антител к гриппу типа А) - исследуют сыворотки крови с целью выявления антител к вирусу гриппа птиц у птиц  из птицеводческих предприятий, фермерских хозяйств, населенных пунктов и ввозимых из-за рубежа.
Методом ИФА также производят исследования  вакцинированной птицы в населенных пунктах на грипп птиц. Напряженным считается иммунитет, если у вакцинированной птицы получены положительные титры антител в 80% исследованных проб.
При подозрении на грипп птиц (наличие клинических, патологоанатомических признаков заболевания, внезапном падеже) в стадах домашней птицы рекомендуется проводить отбор проб для проведения ПЦР-диагностики. Для исследований отбираются клоакальные и/или трахеальные смывы, помет, патматериал (головной мозг, легкие, трахея, селезенка, участки кишечника).
Мониторинг дикой птицы необходимо проводить сезонно: весна, лето, осень (весенняя миграция, гнездование после вылупления птенцов, осенняя миграция).
Исследованиям подвергаются синантропные (воробьи, голуби, грачи, вороны), полусинантропные (чайки), а также дикие мигрирующие виды водоплавающих и околоводных птиц (утки, гуси, массовые виды куликов, колониально гнездящиеся цапли и др.).    
Домашняя птица обследуется: в благополучных регионах - 2 раза в год; в неблагополучных регионах и в угрожаемой зоне - один раз в месяц (каждый птичник, каждый населенный пункт): ввозимая из-за рубежа птица, эмбрионы, инкубационное яйцо - при ввозе, в период карантинирования.
Помет от дикой птицы, а также клоакальные, трахеальные смывы и патматериал исследуются методом ПЦР.
Дикая птица обследуется: в благополучных регионах - 3 раза в год (весна, лето, осень); в неблагополучных районах - 1 раз в квартал.
Помет от дикой птицы, а также клоакальные, трахеальные смывы и патматериал исследуются методом ПЦР.

Отчетный период с 22.10.2021г. по 28.10.2021г.

За отчетный период специалисты серологического отдела ИЛ происследовали 1941 пробу сыворотки крови животных на бруцеллёз, из них не выявлено положительных случаев на данное заболевание.

При установлении диагноза на бруцеллёз животных необходимо учитывать следующее:
- различные  виды возбудителя являются патогенными, в основном, для животных соответствующего вида. Бруцеллы видов мелитензис, абортус и суис могут мигрировать на животных других видов;
- клинические  признаки бруцеллёза у животных не характерны. Наиболее часто клиническое проявление болезни у маточного поголовья - аборт, у свиноматок наблюдается мумификация плодов.
При абортах  отмечается утолщение плодовых оболочек, образование на них фибринозных или гнойных хлопьев. Бруцеллёз сопровождается нередко поражением суставов (артриты), синовиальной системы (тендовагиниты, бурситы), половой системы (у самок – эндометрит, вагинит, у самцов – орхит,  эпидидимит);
- патологоанатомическая картина при бруцеллёзе не имеет характерных особенностей, позволяющих использовать их для диагностики этой болезни. Только у свиней на слизистой оболочке матки иногда находят желтовато- гнойные или казеозные узелки величиной  с просяное зерно, так называемый «милиарный бруцеллёз матки»;
- у баранов, больных бруцеллёзом, в семенниках и придатках обнаруживают некротические или гнойные очаги различной величины; отмечают заполнение полости мошонки серозно - гнойным  транссудатом, разрастание фиброзной ткани, сращение придатка с семенником и общей влагалищной оболочкой, иногда атрофию семенников.

За отчетный период в отдел химических исследований поступила 71 проба, проведено 286 исследований.
За отчетный период выявлено 32 положительных результата.
Установлено несоответствие крови по 32 биохимическим показателям:
выше нормы - 10:  неорганический фосфор - 3, альфа-глобулины - 4, бета-глобулины - 3;
ниже нормы - 22: щелочной резерв - 5, общий белок - 5, альбумины - 3, бета-глобулины – 1, гамма-глобулины - 3,  общий кальций - 5.

Определение неорганического фосфора в крови от крупного рогатого скота

Фосфор — один из основных структурных элементов организма. Все виды обмена в организме неразрывно связаны с превращением фосфорной кислоты. Фосфор входит в структуру нуклеиновых кислот, благодаря фосфорилированию осуществляется кишечная адсорбция, гликолиз, прямое окисление углеводов, транспорт липидов, обмен аминокислот и т. д. Макроэргические фосфорные соединения, среди которых центральное место занимает АТФ, — универсальные донаторы и аккумуляторы энергии. 80—85 % фосфора содержится в скелете. В крови он присутствует в неорганической и в органической формах. Органический фосфор связан с белками и липидами. Всего в крови животного около 10 фракций фосфорных соединений.
В клинической практике диагностическое значение имеет неорганический фосфор. Снижение уровня фосфора в крови отмечается при длительном недостатке его в рационе, плохом усвоении, при расстройствах желудочно-кишечного тракта или дефиците витамина D, при гиперфункции паращитовидных желез и гипофункции щитовидной железы, когда увеличивается секреция паратгормона и уменьшается выработка кальцитонина. Отмечается оно и при алиментарной остеодистрофии, рахите, уровской болезни, пеллагре, длительном лечении инсулином, кальция хлоридом, болезнях желудочно-кишечного тракта.
Повышение уровня фосфора в крови может быть вызвано уменьшением секреции паратгормона, когда тормозится реабсорбция фосфора в почках. Увеличение кальцитонина стимулирует реабсорбцию фосфора в почках и приводит к гиперфосфатемии.
В отделе химических исследований неорганический фосфор в крови определяют фотометрическим методом.
Сущность метода. В безбелковом центрифугате неорганический фосфор реагирует с молибденовой кислотой с образованием фосфорно-молибденовой кислоты, которая восстанавливается аскорбиновой кислотой до синего фосфорно-молибденового комплекса. Интенсивность окраски пропорциональна концентрации неорганического фосфора.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1695 проб материала, проведено 1772 исследования, выявлено 7 положительных случаев.
Отдел бактериологии и паразитологии исследует материал на микроскопические грибы. Одним из методов выделения грибов из кормов является посев на чашки Петри на специальной приготовленные среды (среда Ван-Интерсона, агар Чапека). Посевы инкубируются в термостате при 22-25 0С в течение 5-7 суток. Рост и спороношение большинства грибов, контаминирующих грубые корма, становятся заметными уже через 2-3 сутки.
Представители вида Rhizopus (Rhizopusnigricans) относятся к низшим грибам – фикомицетам. Широко распространен в воздухе, почве, на продуктах питания, плодах и гниющих растениях.
Rhizopus – это плесень-паразит. Поражает не только поверхность плода, но и его внутренности (когда мякоть становится коричневой, запускается процесс брожения). Плесневой гриб попадает в организм через дыхательные пути и зачастую вызывает аллергические реакции, вплоть до бронхиальной астмы. Гриб мукор (Mucorracemosus) – это белая плесень. Его мицелий представляет собой переплетение гиф беловатого цвета и выглядит как пушистый белый налет. 
Спорангии мукора имеют черный оттенок, поэтому через некоторое время белая плесень становится черной. Мукор можно увидеть, например, на хлебе и других продуктах питания. Также он встречается в верхних слоях почвы, на органических остатках. Патогенный возбудитель может вызывать различные заболевания. Среди них наиболее известных -мукоромикоз, при котором гриб, попадая внутрь организма, поражает внутренние органы.
Производя безопасные корма для животных необходимо соблюдать методы предотвращения: загрязнения кормовых ингредиентов и/или кормов, потенциальный рост уровня патогенов, а также позволяющие уничтожать или сдержать патогены, или токсины. Борьба с контаминантами не только минимизирует бактериальное загрязнение, но также устраняет производящие токсины грибки и дрожжевые грибки, что благотворно сказывается на здоровье и продуктивности животных и позволяет сократить применение антимикробных препаратов.


За отчетный период  в отделе ВСЭ и диагностики  поступило 762 пробы, проведено  1148  исследования. В ходе исследований выявлено 48 положительных случаев.
Лабораторный мониторинг гриппа птиц - комплекс лабораторно-диагностических исследований по выявлению циркулирующих штаммов вируса гриппа птиц.
Грипп птиц – высоко контагиозная вирусная инфекция, которая может поражать все виды птиц. Наиболее чувствительными из домашних видов являются индюки и куры. Дикие виды птиц могут служить переносчиками инфекции. В силу естественной резистентности они сами, как правило, при этом не заболевают и могут преодолевать в процессе миграции значительные расстояния. Естественным резервуаром для вирусов гриппа птиц (ВГП) являются водоплавающие птицы, которые чаще всего ответственны за интродукцию инфекции в домашние хозяйства.
Одним из  методов лабораторно-диагностических исследований на грипп птиц является иммуноферментный анализ (непрямой метод ИФА для выявления антител к гриппу типа А) - исследуют сыворотки крови с целью выявления антител к вирусу гриппа птиц у птиц  из птицеводческих предприятий, фермерских хозяйств, населенных пунктов и ввозимых из-за рубежа.
Иммуноферментный анализ (конкурентный метод ИФА для выявления антител к гриппу птиц Н5) - исследуются сыворотки крови различных видов птиц на наличие антител к гриппу птиц Н5.
Методом ИФА также производят исследования  вакцинированной птицы в населенных пунктах на грипп птиц. Напряженным считается иммунитет, если у вакцинированной птицы получены положительные титры антител в 80% исследованных проб.



 

 

Отчетный период с 01.10.2021г. по 07.10.2021г.

За отчетный период специалисты серологического отдела ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория» происследовали 6684 пробы сыворотки крови животных, из них выявлено: 27 положительных проб по лептоспирозу (17 проб у крупного рогатого скота, 10 проб у лошадей), 399 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота.

 Лейкоз крупного рогатого скота – хроническая инфекционная болезнь, вызываемая вирусом лейкоза крупного рогатого скота. Лейкозом болеет крупный рогатый скот всех возрастов. Клинически болезнь проявляется чаще у животных в возрасте старше 4 лет.
Болезнь протекает вначале бессимптомно, затем проявляется персистентным лимфоцитозом и/или образованием опухолевидных разрастаний в кроветворных и других органах и тканях.
Возбудителем лейкоза крупного рогатого скота является опухолеродный РНК-содержащий вирус из семейства Retroviridae.
Источник возбудителя инфекции – животное, зараженное вирусом лейкоза крупного рогатого скота.
Факторами передачи являются кровь, молоко и другие секреты и экскреты, содержащие лимфоидные клетки, инфицированные вирусом лейкоза крупного рогатого скота.
Заражение может происходить при совместном содержании здоровых и инфицированных животных.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 27 проб, проведено 61 исследование.
За отчетный период выявлено 4 положительных результата.
Установлена общая токсичность в 3 пробах кормосмеси.
В 1 пробе патологического материала от птицы обнаружены нитриты.


Методы определения общей токсичности в кормах

Токсичность кормов является основной причиной развития токсикозов у животных и птиц, поэтому необходимо своевременно и регулярно проводить исследования кормов на определение токсичности.
В отделе химических исследований общую токсичность  кормов определяют по ГОСТу 31674-2012 Корма, комбикорма, комбикормовое сырье. Методы определения общей токсичности.
Исследуют корма по следующим методам:
1) Биотестирование кормов на стилонихиях (Stylonychia mytilus). Метод основан на извлечении из исследуемых кормов различных фракций токсических веществ параллельно ацетоном и водой с последующим воздействием этих экстрактов на стилонихий. Оценку результату биотеста дают по реакции гибели инфузорий. Безопасным в этом случае следует считать корм, определенный как нетоксичный при одновременном параллельном исследовании как ацетонового, так и водного экстракта.
2) Основные методы определения общей токсичности кормов биотестированием на кроликах и мышах. Методы основаны на испытании кормов растительного и животного происхождения, а также комбикормов для продуктивных и непродуктивных животных и кормовых добавок методом биотестирования параллельно на кроликах (кожная проба) и на мышах (острый опыт), что дает возможность учесть как дермонекротическое действие токсинов, так и их воздействие на пищеварительную систему теплокровных животных. Результат определяют по совокупности реакций в обоих методах: корм нетоксичный (нетоксичен в обоих тестах), корм токсичный (токсичен хотя бы в одном тесте).

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 2329 проб материала, проведено 2344 исследования, выявлено 3 положительных случая.
Поступающие в отдел пробы сыворотки крови птиц исследуются на антитела к вирусу Ньюкаслской болезни.
Болезнь Ньюкасла является опасным патогеном для птиц, вызываемым вирусом семейства Paramyxoviridae. Он принадлежит первой серогруппе парамиксовируса птиц (PMV-1).
Этиология. Возбудитель – вирус семейства Paramyxoviridae, относится к 1-му серотипу. Выделяют 3 патотипа: велогенные — вирулентные штаммы, тяжелое течение кишечной и нервной формы; мезогенные – средней вирулентности, респираторные симптомы; лентогенные – низкая вирулентность, вызывают слабые симптомы, источник вакцинных штаммов.
Эпизоотология. Болеют куры, индейки. Характерна быстрая  скорость распространения. Признаки появляются по всему стаду в течение 2–12 дней после заражения птицы аэрозольным путем, также передается алиментарно. Резервуары – перелетные птицы, насекомые.
Симптомы болезни Ньюкасла. Зависят от патотипа, которым заражено стадо, условий содержания, иммуносупрессивных состояний, сопутствующих инфекций, степени иммунизации.
Патоморфология
Наиболее сильные поражения наблюдаются при висцеротропной велогенной болезни Ньюкасла: на границе железистого и мышечного отделов желудка видны кровоизлияния в виде пояска, точечные некротические геморрагические очаги на поверхности слизистой кишечника, лимфоидных органах, яичники гиперемированы, головной мозг отечен и гиперемирован, в сердечной мышце кровоизлияния, в полости сердечной сорочки экссудат; некрозы, кровоизлияния и отеки вокруг тимуса; селезенка увеличена, бледная, пятнистая. У птиц, инфицированных низковирулентными штаммами скопления мукоидного экссудата в дыхательных путях, воздухоносные мешки непрозрачные и утолщенные. Вторичные бактериальные инфекции увеличивают тяжесть респираторных поражений.
Диагностика
Диагностика болезни Ньюкасла проходит на основании клинических симптомов и патологических признаков. Диагноз считается установленным после выделения вируса, идентификации и выявления титров антител (ПЦР, серологические тесты). Дифференцируют от инфекционного ларинготрахеита, пастереллеза, гриппа, респираторного микоплазм. 

За отчетный период 01.10.2021-07.10.2021г. в отделе ВСЭ и диагностики  поступило 604 пробы, проведено  902  исследования. В ходе исследований выявлено 43 положительных случая.
Грипп А птиц (грипп птиц) представляет собой болезнь домашних и диких птиц различных видов, способную протекать в форме эпизоотий, которыми называют такое количественное выражение распространения заразных болезней, при котором болезнь способна к массовому охвату поголовья и широкому распространению, охватывающему хозяйство, район, область, страну. При этом грипп может вызывать смертность зараженной птицы, близкую к 100% и большой экономический ущерб. При этом некоторые вирусы гриппа А птиц способны инфицировать людей и вызывать у них болезнь различной степени тяжести вплоть до смертельной.
По степени тяжести вызываемой у конкретных видов птиц болезни вирусы гриппа А птиц подразделяются на вирусы подтипов Н5, Н7, Н9 ( высокопатогенные  и низкопатогенные вирусы гриппа).
Восприимчивы г гриппу птиц все виды домашних и диких водоплавающих птиц .
При заражении любых птиц низкопатогенными вирусами, а водоплавающей птицы - любыми (высоко- и низкопатогенными) вирусами, возможно появление атипичных или стертых форм болезни. Возможно носительство вируса без проявления каких-либо клинических признаков. Возможно бессимптомное носительство высоко- и низкопатогенных вирусов на иммунном фоне.
Вирусы гриппа А птиц способны быстро изменять свою патогенность.

Отчетный период с 08.10.2021г. по 14.10.2021г.

За отчетный период специалистами серологического отдела ИЛ проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 4571 проба;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 896 проб;
- бруцеллез свиней – 15 проб;
- бруцеллез верблюдов – 1 проба;
- случная болезнь верблюдов – 1 проба;
- бруцеллез лошадей – 65 проб;
- сап лошадей – 65 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 28 проб;
- случная болезнь лошадей – 28 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 293 пробы, положительных – 29 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 89 проб;
- лептоспироз свиней – 58 проб, положительных – 2 пробы;
- лептоспироз лошадей – 21 проба, положительных – 1 проба;
- лейкоз крупного рогатого скота – 3412 проб, положительных – 579 проб.
Диагностические исследования на лейкоз проводят серологическими, молекулярно-биологическим, гематологическим, клиническим, патоморфологическим методами, методом биопробы.
Основу диагностики лейкоза крупного рогатого скота составляет серологический метод исследования – реакция иммунодиффузии в геле агара (РИД). Сущность реакции заключается в выявлении в сыворотке крови животных преципитирующих антител против антигенов онкорнавируса типа С крупного рогатого скота.
Животных, сыворотки крови которых дали положительный результат в РИД, признают зараженными вирусом лейкоза. Таких животных исследуют гематологическим методом для выявления больных лейкозом животных.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 39 проб, проведено 110 исследований.

Определение титруемой кислотности молочной плазмы в масле сливочном

 Сливочное масло – результат поэтапной переработки молока животных. Сливочное масло получают в основном путем сбивания сливок, а в промышленных масштабах его производят путем сепарирования. Лучшее сливочное масло – это то, которое изготовлено из натурального коровьего молока. В таком масле содержится до 82,5% жира, а в топленом – вплоть до 99%. Сливочное масло, если оно натуральное, по праву считается лучшим из всех видов пищевых жиров.
В отделе химических исследований определение титруемой кислотности молочной плазмы в масле сливочном проводят по ГОСТ Р 55361-2012 Жир молочный, масло и паста масляная из коровьего молока. Правила приемки, отбор проб и методы  контроля.
Титруемая кислотность молочной плазмы сливочного масла измеряется в градусах Тернера в диапазоне от 10,0 °Т до 70,0 °Т.
Метод основан на нейтрализации свободных кислот, кислых солей и свободных кислотных групп, содержащихся в молочной плазме продукта, раствором гидроокиси натрия в присутствии индикатора фенолфталеина.
Ход работы. В коническую колбу вместимостью 100 см3 отмеряют 20 см3 дистиллированной воды, 10 смвыделенной молочной плазмы. Полученной смесью 3-4 раза промывают пипетку для удаления из нее остатков молочной плазмы и получения однородной смеси. Затем прибавляют 3 капли фенолфталеина и титруют при постоянном перемешивании раствором гидроокиси натрия до появления слабо-розового окрашивания, не исчезающего в течение 1 мин и соответствующего контрольному эталону окраски.

 

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1565 проб материала, проведено 1580 исследований, получено 11 положительных результатов.

Поступающие в отдел пробы сыворотки крови свиней исследуются на антитела к вирусу парвовирусной болезни свиней. Парвовирусная инфекция (болезнь репродуктивных органов) свиней (Parvovirus disease) ПВСИ – контагиозная вирусная болезнь, клинически проявляющаяся только у супоросных свиноматок нарушением функции органов воспроизодства (прохолостами, малоплодием, гибелью эмбрионов, рождением малоплодных пометов, мумифицированных плодов, мертвых и слабых поросят и реже абортами).
У хряков-производителей заболевание протекает субклинически.
Естественный хозяин вируса – свиньи и хряки, которые могут выделять его с вагинальной слизью, спермой. Как правило, заражаются серонегативные свиноматки в первой половине супоросности. Вирус, проникший в благополучное хозяйство, в течение 2-3 месяцев поражает практически всех животных. Источником возбудителя ПВСИ являются: больные животные, выделяющие вирус во внешнюю среду с фекалиями (до 2 недель), мочой, носовыми и вагинальными секретами, абортированными и мертворожденными плодами, а также плацента. Свиней можно заразить внутримышечно и внутривенно при массовых ветеринарных обработках, проводимых с нарушением правил асептики и антисептики. Заражение может происходит в родильных отделениях при травмировании родовых путей, при кастрации поросят. Болезнь сопровождается виремией. Чаще всего поражаются пометы первоопоросок. У зараженных свиноматок в более поздние сроки супоросности образуются антитела.
Диагноз на ПВСИ ставится комплексно с учетом эпизоотологических и клинических данных, массового нарушения функций органов воспроизводства у свиноматок. Для окончательного диагноза необходимо исследовать плоды, пораженные в ранние сроки супоросности, для выявления вируса (в более поздние сроки имеющиеся антитела мешают выявлению вируса). Для лабораторного исследования необходимо направлять сыворотку крови от новорожденных поросят до приема ими молозива, жидкость из грудной и брюшной полостей мертворожденных поросят, а также сыворотку крови от свиноматок с нарушенной репродукцией через 1 месяц после опороса (не менее 5-10 проб каждого материала). Для вирусологических (обнаружение вируса в РГА, МФА) и молекулярно-генетических (определение генома вируса при помощи ПЦР) исследований абортированные плоды или их легкие нужно доставлять свежим или в замороженном виде.
Профилактика болезни в хозяйствах, свободных от ПВСИ, строится на предотвращении заноса возбудителя. Свиней, закупаемых в других хозяйствах, необходимо предварительно исследовать на ПВСИ, а также в течение 30 дневного профилактического карантинирования в своем хозяйстве. Необходимо организовать раздельные опоросы основных и ремонтных свиноматок, систематически проводить профилактическую дезинфекцию с предварительной тщательной механической очисткой помещения, инвентаря и оборудования.
При установлении в хозяйстве ПВСИ в нем вводятся ограничения и проводятся мероприятия в соответствии с инструкцией «О мероприятиях по борьбе с парвовирусной болезнью свиней».

За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики  поступило 970 пробы, проведено  1423  исследования. В ходе исследований выявлено 36 положительных случая.
В практической деятельности работников торговли и общественного питания постоянно приходится пользоваться данными микробиологии, так как пищевые продукты представляют собой хорошую питательную среду для микроорганизмов. Зная условия, при которых микробы растут и развиваются, и необходимые для их подавления, можно правильно организовать хранение и реализацию продуктов питания.
Микроорганизмы не только портят внешний вид продовольственных товаров, но и изменяют их химический состав, снижают полезные свойства. В результате этого продукт становится несъедобным. Кроме того, в природе большое количество болезнетворных микробов, попадая в пищевые продукты, вызывают отравления и заболевания. Чтобы уберечь продукт от вредных микроорганизмов, необходимо знать, когда и при каких условиях они попадают на продукты, как сохраняются и развиваются на них и какие условия для них губительны.
Знание микробиологии пищевых продуктов необходимо специалистам в области торговли и общественного питания для организации хранения продовольственных товаров, сырья и полуфабрикатов и создания режимов, при которых развитие микроорганизмов будет сведено к минимуму. Все это очень важно для обеспечения населения высококачественными продуктами питания.
На качество продуктов общественного питания влияют условия хранения.
Для предотвращения потерь и порчи продуктов необходимо обеспечить в складских помещениях оптимальный режим хранения товаров в соответствии с их физико — химическими свойствами. Режим хранения — это определенная температура, скорость движения воздуха, относительная влажность. При хранении следует строго следить за соблюдением сроков реализации продуктов, особенно скоропортящихся.

Отчетный период с 24.09.2021г. по 30.09.2021г.

За отчетный период специалисты серологического отдела ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория» происследовали 9286 проб сыворотки крови животных, из них выявлено: 29 положительных проб по лептоспирозу (4 пробы у крупного рогатого скота, 7 проб у свиней, 18 проб у лошадей), 460 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота.
Инфекционный эпидидимит мелкого рогатого скота (баранов) – хронически протекающая болезнь, поражающая как взрослых животных, так и молодняк. Возбудителем болезни является один из видов группы Brucella, а именно - Brucella ovis.
Наиболее частое клиническое проявление болезни у половозрелых баранов – эпидидимиты и орхиты, у овцематок иногда наблюдаются аборты, у молодняка болезнь протекает в бессимптомной форме.
Источник возбудителя инфекции – больные животные. Больные бараны выделяют возбудителя со спермой, овцы – с плодом, плодовыми оболочками и водами. Заражение происходит главным образом через слизистые оболочки половых путей при случке.
Диагноз ставят на основании результатов серологических, аллергических и бактериологических исследований с учетом эпизоотологических данных и клинических признаков болезни.
В серологическом отделе для диагностики инфекционного эпидидимита мелкого рогатого скота ставят реакцию длительного связывания комплемента на холоде (РДСК). Суть реакции заключается в обнаружении специфических антител в сыворотке крови овец к антигенам из бруцелл вида овис.
Лечение больных животных нецелесообразно.

За отчетный период в отдел химических исследований поступила 51 проба, проведено 164 исследования.
За отчетный период выявлен 7 положительных результатов.
В 7 пробах сена установлена массовая доля сырого протеина в сухом веществе ниже нормы – 7.

Метод определения мышьяка в продуктах питания

Мышьяк – это металлоид, неорганические соединения которого проявляют токсические свойства при накоплении в организме человека. Этот химический элемент очень распространен в природе в составе металлических руд, откуда он попадает в воду, растения и атмосферу. Несмотря на то что соединения мышьяка традиционно ассоциируются с отравлением, каждый человек ежедневно потребляет его в количестве около 20-50 мкг с продуктами питания. Он присутствует в яблоках, томатах, красном вине, шоколаде, свинине, курином мясе, муке. Особенно богаты мышьяком морепродукты. В продуктах питания мышьяк находится в своей нетоксичной форме в виде органического соединения арсенобетаина. Неорганические соединения мышьяка (арсениты и арсенаты) могут стать причиной клинически выраженной интоксикации.
В отделе химических исследований для определения мышьяка в продуктах питания применяют атомно-абсорбционный метод.
Этот метод основан на минерализации продукта смесью кислот и реагентов - окислителей одним из трех способов (сухое озоление, автоклавная минерализация или кислотная экстракция), проведении реакции гидрирования мышьяка в полученном растворе - минерализате с помощью боргидрида натрия, отгонки летучего гидрида мышьяка потоком аргона в разогретую кварцевую кювету - атомизатор и измерении доли мышьяка атомно-абсорбционным методом по величине атомного поглощения на резонансной длине волны 193,7 нм. Исследование проводят на спектрометре атомно-абсорбционном «КВАНТ-2А».

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1486 проб материала, проведено 1523 исследований, выявлено 11 положительных случаев.
Поступающий в отдел материал (трупы животных, головной мозг или мазки с головного мозга) исследуются на вирус бешенства методом флуоресцирующих антител, методом постановки биологической пробы.
 
Бешенство - природно-очаговое особо опасное смертельное инфекционное заболевание, вызываемое вирусом бешенства Rabiesvirus, включённым в род Lyssavirus семейства Rhabdoviridae. Передаётся со слюной при укусе больным животным. Затем, распространяясь по нервным путям, вирус достигает слюнных желёз, нервных клеток коры головного мозга, гиппокампа, бульбарных центров и, поражая их, вызывает тяжёлые нарушения, приводящие к гибели.
Источником инфекции могут быть собаки, лисы, летучие мыши, волки, кошки и мелкие грызуны. Любое млекопитающее и птицы могут болеть бешенством, но в подавляющем большинстве не представляют опасности для человека (например, птицы).
Механизм передачи:
1 Контактный - при укусе или ослюнении, редко возможно заражение при разделке убитого животного;
2 Маловероятен аэрозольный механизм заражения - например, в пещере, населённой летучими мышами;
3 Алиментарный - при поедании павших от бешенства животных;
4 Трансплацентарный путь - при пересадке органов от умерших людей от бешенства (при неверно поставленном диагнозе).
Инкубационный период составляет от 10 дней до 3 месяцев. Он зависит от локализации укуса, иногда может находится в скрытом периоде до 1 года. Диагностика бешенства происходит на основании комплекса эпидемиологических и клинико-лабораторных данных. Общеклинические методы исследований малоинформативны. Лабораторное подтверждение диагноза бешенство возможно только посмертно.
Основные методы профилактики бешенства:
1 Борьба с источником инфекции (соблюдение правил содержания кошек и собак, предупреждение бродяжничества среди них, профилактическая вакцинация домашних животных против бешенства, контроль за популяцией диких животных);
2 При укусе подозрительным животным необходимо немедленно оказать помощь пострадавшему, а именно обеспечить проведение иммунизации против бешенства.
                                            

За отчетный период 24.09.2021-30.09.2021г. в отделе ВСЭ и диагностики  поступило 542 пробы, проведено  982  исследования. В ходе исследований выявлено 23 положительных случая.
Лейкоз крупного рогатого скота относится к злокачественным заболеваниям сельскохозяйственных животных и в настоящее время, является одной из наиболее острых общебиологических и социальных проблем. Ежегодно увеличивается количество неблагополучных пунктов, растет число выявленных инфицированных ВЛКРС и больных лейкозом животных. Многочисленные попытки найти способ лечения лейкоза КРС не дали никаких результатов. В настоящее время единственным способом борьбы с болезнью во всем мире является выбраковка больных и инфицированных животных на основании своевременной и точной диагностики. Разработанная и широко применяемая в ветеринарных лабораториях страны реакция иммунодиффузии в геле агара (РИД) с использованием антигена вируса лейкоза КРС в настоящее время остается основным диагностическим методом, по результатам которого проводят оздоровительные и профилактические мероприятия в неблагополучных по лейкозу хозяйствах. Результат регистрируется визуально по наличию полосы преципитации. В дальнейшем животное, отрицательно реагирующее в РИД необходимо исследовать в ИФА. Поэтому, особого внимания заслуживает иммуноферментный анализ (ИФА). Он находит широкое применение, поскольку чувствительность метода выше,возможно исследование других биологических жидкостей, например, молока. Это очень важно, так как позволяет судить об эпизоотическом состоянии стада по сборной пробе молока. Более высокая чувствительность, быстрая постановка реакции позволяют считать ИФА современным методом исследования и широко использовать для выделения вирусоносителей на последних стадиях оздоровления стад. Метод ИФА позволяет автоматизировать процесс.


Подкатегории