Отчетный период с 20.02.2026г. по 26.02.2026г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 1171 проба сыворотки крови животных и 1 проба мочи от лошади; проведено 2925 исследований сыворотки крови и 1 исследование мочи на лептоспироз. Выявлено: 50 положительно реагирующих проб по лептоспирозу крупного рогатого скота и 1 серопозитивная проба по лейкозу крупного рогатого скота.

Листериоз (Listeriosis) — инфекционная болезнь животных и человека.
Листерия, она же Listeria monocytogenes, — бактерия, которая имеет форму короткой палочки со жгутиками. Листерия не строго анаэробная: ей не требуется для жизни кислород, но при этом она также способна существовать в его присутствии. Хорошая среда для обитания листерий — почва, силосные ямы и кучи, водоёмы со стоячей водой.
К листериозу восприимчивы овцы, козы, крупный рогатый скот, свиньи, лошади, кролики, куры, гуси, утки, индейки. Болеют животные всех возрастов, особо чувствительны молодняк и беременные животные. Отмечены случаи заболевания листериозом кошек, собак и обезьян. Источник возбудителя инфекции — больные и переболевшие животные. Основной резервуар возбудителя в природе — свободноживущие грызуны, являющиеся причиной заражения листериозом сельскохозяйственных животных, чаще всего через воду, корма, загрязнённые выделениями грызунов. Отмечена большая роль некачественного силоса в появлении и распространении листериоза, в особенности у овец. В циркуляции возбудителя листериоза между дикими животными (особенно грызунами), по-видимому, определённую роль играют клещи. В естественных условиях заражение листериозом, очевидно, происходит через слизистую оболочку носовой и ротовой полостей, конъюнктиву, пищеварительный тракт, повреждённую кожу. Листериоз проявляется спорадически, реже — в виде эпизоотии, у овец носит сезонный характер, проявляется в зимне-весенний период, что связано с активизацией механизма передачи возбудителя (миграция грызунов - листерионосителей к животноводческим помещениям и складам кормов) со снижением неспецифической резистентности организма. Для листериоза характерна также стационарность.
Инкубационный период 7—30 суток. Течение острое, подострое и хроническое. Листериоз проявляется в несколько формах: нервной, септической, смешанной, бессимптомной, а также с преимущественным поражением половых органов и вымени. У крупного рогатого скота чаще поражается нервная система. Болезнь начинается угнетением, вялостью, снижением аппетита. Через 3—7 суток у животных отмечают некоординируемые движения, судороги, приступы буйства, парезы нижней челюсти и отдельных групп мышц, потерю зрения, конъюнктивит. Температура тела повышается или остаётся в пределах нормы. Длительность болезни до 10 суток. Поражение половой системы проявляется абортами, задержанием последа, метритами. Иногда возникает мастит. У телят листериоз чаще всего протекает в виде септицемии. У овец и коз также поражается нервная система. Вначале отмечают необычное поведение животного, снижение аппетита, сонливость, конъюнктивит и ринит. Температура тела повышается до 40,5—41°C или остаётся в пределах нормы. Через 1—2 суток появляются признаки поражения нервной системы: круговые движения, потеря равновесия, судороги, искривление шеи, расширение зрачков, потеря зрения. У ягнят чаще наблюдают септицемическую форму (поносы, лихорадка). У беременных овец и коз возникают аборты и маститы. У взрослых свиней отмечают исхудание, анемию, кашель, нарушение координации движений, абсцессы в различных органах и тканях, аборты и рождение мёртвых поросят. У поросят чаще наблюдают поражение нервной системы: расстройство координации движений, манежные движения, мышечную дрожь, судороги, возбуждение.
В ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проводит исследования по Методическим рекомендациям по лабораторной диагностике листериоза животных и людей п. 8.2

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 17 проб, проведено 230 исследований. 

Бенз(а)пирен в пищевых продуктах

Бенз(а)пирен относится к классу полициклических ароматических углеводородов – ПАУ. Это группа органических соединений, в химической структуре которых присутствуют бензольные кольца – группы от трех колец и больше.
Бенз(а)пирен – один из самых мощных и при этом широко распространенный канцероген. Будучи химически и термически устойчивым, обладая свойствами биоаккумуляции, он, попав и накапливаясь в организме, действует постоянно и мощно. Помимо канцерогенного, бенз(а)пирен оказывает мутагенное, эмбриотоксическое, гематотоксическое действие.
Основными источниками бенз(а)пирена, потребляемого человеком, являются: окружающий воздух, табачный дым, отопление (сжигание древесины, угля или других биомасс), автомобильный транспорт, асфальт, каменноугольные смолы.
Вещество образуется также при жарении и копчении продуктов. Это, прежде всего, копчености: колбаса, рыба, шпроты. И даже шашлыки могут содержать бенз(а)пирен. В продуктах питания, в которых допустимо наличие бенз(а)пирена из-за технологических особенностей (копченые мясные, мясосодержащие и птичьи продукты; копченые сыры и сырные продукты, сырные пасты, соусы; зерно продовольственное; шпик копченый), содержание бенз(а)пирена согласно требованиям Технического регламента Таможенного союза ТР ТС 021/2011 «О безопасности пищевой продукции» не должно быть более 0,001 мг/кг. В копченой рыбной продукции допускается не более 0,005 мг/кг бенз(а)пирена.
В других продуктах питания, в том числе продуктах питания для детей наличие бенз(а)пирена не допускается.
Попадание бенз(а)пирена в организм человека его даже в малых дозах опасно для здоровья. Под действием канцерогена клетки начинают аномально делиться, вызывая раковые опухоли. Другие проявления негативного воздействия на организм человека:
- развитие атеросклероза сосудов;
- поражение печени;
- инсульты и инфаркты.
В отделе химических исследований массовую долю бенз(а)пирена определяют методом ВЭЖХ.
Метод измерений состоит из следующих этапов анализа:
- щелочной гидролиз пробы;
- экстракция бенз(а)пирена гексаном;
- очистка экстракта методом колоночной хроматографии;
- концентрирование и количественное определение бенз(а)пирена методом ВЭЖХ с использованием жидкостного хроматографа «Люмахром» с флуориметрическим детектором.  

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 309 проб материала, проведено 322 исследования, выявлено 6 положительных случаев.

Посмертная диагностика при сальмонеллезе животных и птиц.

Первый день исследования. Посевы на питательные среды делают из крови сердца, печени, желчного пузыря, селезенки, почки, измененных лимфатических узлов и костного мозга. При подозрении на хроническое течение болезни делают дополнительные посевы из легких (телят), слепой кишки (свиней), измененных желтков яичника (кур). Патологический материал засевают на МПБ, чашки Петри с МПА и одной из дифференциальных сред (Эндо, Плоскирева, Левина, висмут-сульфитный агар). При подозрении на хроническое течение сальмонеллеза посевы обязательно проводят и на одну из сред накопления (селенитовая, Мюллера, Кауфмана, Киллиана).
Засеянные пробирки и чашки помещают в термостат при температуре 37°С на 18 - 20 часов.
Наряду с высевом на питательные среды проводят микроскопическое исследование методами световой и люминесцентной микроскопии.
Для световой микроскопии мазки готовят из трупного материала и органов абортированных плодов и окрашивают по Граму.
Второй день исследования. Через 18 - 24 часа просматривают посевы на плотных средах в чашках Петри и отбирают подозрительные колонии, а также делают высевы из жидких питательных сред на плотные дифференциальные среды.
При обнаружении роста типичных или подозрительных колоний их исследование начинают с изучения морфологии в мазке, окрашенном по Граму. Все отобранные культуры пересевают на цветной ряд, состоящий из полужидких или жидких с поплавками сред Гисса с глюкозой, лактозой, сахарозой, маннитом, а также на МПБ или 1%-ную пептонную воду для определения образования индола и сероводорода. Подвижность сальмонелл определяют при посеве культуры уколом в полужидкий агар (0,2% агар-агара) или при посеве в полужидкие среды Гисса. Неподвижные микробы растут только по ходу укола, подвижные дают диффузный рост и помутнение всей среды.
Одновременно необходимо проводить реакцию агглютинации с монорецепторными сальмонеллезными сыворотками.
Третий день исследования. Проводят идентификацию выделенных культур по биохимическим свойствам на цветном ряду, изучение антигенной структуры в реакции агглютинации на стекле с монорецепторными сальмонеллезными сыворотками, просмотр чашек Петри с посевами из жидких питательных сред.
Если выделенная культура обладает типичными морфологическими, культуральными и биохимическими свойствами и дает четкие результаты в реакции агглютинации с определенными монорецепторными сыворотками, дают ответ о выделении сальмонелл установленного серологического типа.
Если в первичных посевах на твердых питательных средах роста характерных колоний не получено, то при просмотре чашек с посевами из жидких питательных сред проводят отбор подозрительных колоний и исследуют в указанном выше порядке.
Если характерных и подозрительных колоний нет ни в чашках с прямыми посевами, ни в чашках с высевом из жидких питательных сред, дают ответ об отрицательном результате исследования.
Четвертый день исследования. Проводят учет ферментативной активности культур, пересеянных накануне на цветной ряд, и серологическое исследование их.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 394 исследования.
Бактерии рода Proteus-грамотрицательные палочковидные, аэробные, в основном, подвижные микроорганизмы. Термин «Протей» означает изменчивость формы роста на плотных питательных средах. Подвижные формы имеют характерные рост "роения" (пленкой, напоминающей туман, образующийся при дыхании на стекле). Поэтому жгутиковые (роящиеся, подвижные) варианты были обозначены как H-формы.  Не роящиеся, неподвижные варианты, растущие изолированными колониями и лишенные поверхностной пленки, были обозначены как O-формы.
Широко распространены в природе как сапрофиты, они обнаруживаются в разлагающихся остатках животных, сточных водах, навозе, в кишечнике млекопитающих, а также в фекалиях человека и животных. Они являются условно-патогенными микроорганизмами. Показывают фекальное и органическое загрязнение.
Бактерии рода Proteus в пищевой продукции являются индикатором гнилостной порчи. Они длительно сохраняются и размножаются в продуктах.
Основные пути передачи: употребление мяса, рыбы, молока, колбасы, которые хранились с нарушением сроков и условий хранения. Реже инфицирование происходит при употреблении заражённой воды, при купании, через грязные руки.
Обнаружение бактерий рода Proteus в готовой продукции говорит о нарушениях режима тепловой обработки; санитарной обработки инвентаря, посуды и оборудования; несоблюдении условий хранения и сроков реализации.
В соответствии с Техническим Регламентом Таможенного союза «О безопасности пищевой продукции» доброкачественные продукты (мясо всех видов, изделия из мяса, изделия из яиц, кулинарные изделия без тепловой обработки из рыбы и морепродуктов, икорные продукты, многокомпонентные блюда из рыбы, нерыбные объекты (двухстворчатые моллюски живые), хлебобулочные изделия с начинкой и другая продукция (салаты, соусы, студни, супы, гарниры, омлеты, готовые кулинарные изделия из мяса и др.)) не должны содержать бактерий рода Proteus. Поэтому проводится санитарный контроль на предприятиях по роду деятельности, связанные с пищевыми продуктами.
Кроме микробиологического исследования сырья и готовой пищевой продукции необходимо исследовать смывы с объектов окружающей среды (со спецодежды и рук работников, с оборудования, инвентаря, посуды, столовых приборов).
Источником инфицирования блюд очень часто являются загрязненные остатками пищи посуда, инвентарь и оборудование, работники. Обсеменение может происходить при использовании одних и тех же разделочных досок, ножей, мясорубок для сырых и вареных продуктов.
Протейная палочка погибает при тепловой обработке, обнаружение ее в готовой продукции говорит о нарушениях режима тепловой обработки или плохой санитарной обработке инвентаря, посуды и оборудования, а также несоблюдении условий хранения и сроков реализации.

Отчетный период с 13.02.2026г. по 19.02.2026г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 422 пробы сыворотки крови животных, проведено 731 исследование. Выявлено: 8 положительно реагирующих проб по лептоспирозу свиней и 2 положительно реагирующие пробы по лептоспирозу лошадей.

Лептоспироз (Leptospirosis, инфекционная желтуха, собачья лихорадка, болезнь Васильева–Вейля) — инфекционная, природно-очаговая болезнь многих видов животных и птиц, проявляющаяся лихорадкой, гемоглобинурией (гематурией), желтушным окрашиванием и некрозами слизистых оболочек и кожи, атонией желудочно-кишечного тракта, абортами, рождением нежизнеспособного потомства, снижением продуктивности животных.
Возбудитель был выявлен А. Вейлем в 1886 году и Н. П. Васильевым в 1888 году. Возбудители лептоспироза — лептоспиры, принадлежащие к семейству спирохет, которые занимают промежуточное положение между бактериями и простейшими. Лептоспира состоит из тонкой осевой нити, которую окружает цитоплазматическая спираль. Длина лептоспир колеблется от 5 до 20, толщина — от 0,1 до 0,2 микрон. Концы лептоспир крючкообразно загнуты и имеют пуговчатое утолщение. У отдельных лептоспир наблюдаются и безкрючковые формы.  Размножаются лептоспиры путем поперечного деления материнской клетки на две или три части.
Лептоспиры отличаются большим разнообразием серотипов, разделенных на 19 серогрупп. У сельскохозяйственных животных выделено 7 серогрупп.
Лептоспироз сезонная болезнь. В умеренном климате пик заболеваемости приходится на лето и первую половину осени.
На территории РФ возбудителями лептоспироза сельскохозяйственных животных и собак являются лептоспиры серогрупп: Grippotyphosa, Pomona, Tarassovi, Sejroe, Hebdomadis, Icterohaemorrhagiae, Canicola; в природных очагах установлена циркуляция лептоспир серогрупп: Grippotyphosa, Pomona, Sejroe, Javanica, Icterohaemorrhagiae, Bataviae, Australis, Autumnalis.
К лептоспирозу восприимчивы все сельскохозяйственные животные (крупный и мелкий рогатый скот, лошади, овцы, свиньи), домашние (собаки, кошки), дикие плотоядные (лисицы, волки, шакалы), пушные звери (норки, песцы), грызуны (нутрии, мыши, полевки, крысы), хищные, домашние и дикие птицы.
Основной источник инфекции — мыши, крысы, ежи, землеройки. Грызуны являются пожизненными носителями и основными резервуарами инфекции. Вторичными носителями лептоспир являются КРС, МРС, свиньи, собаки/лисицы.
В ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проводит исследования по ГОСТ 25386-91 «Животные сельскохозяйственные. Методы лабораторной диагностики лептоспироза» п. 2.3.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 37 проб, проведено 215 исследований.

Определение числа падения в муке пшеничной 

Число падения — это показатель, характеризующий активность зерновой альфа-амилазы в зерне и муке из мягкой пшеницы, а также в зерне и муке из твердой пшеницы. Показатель измеряется в секундах.
Этот показатель зависит от фермента альфа-амилазы: чем выше его активность, тем ниже число падения. Активность фермента означает, что происходит процесс прорастания зерна, на который затрачивается энергия. Поэтому показатель числа падения необходим для определения хлебопекарных качеств пшеницы.
Оптимальные значения числа падения зависят от назначения муки и требований переработки. В среднем:
- более 250 сек. – отличное качество;
- 200–250 сек. – допустимо;
- менее 180 сек. – сигнал о снижении качества.
Значения ниже 150 сек. часто указывают на прорастание зерна – такие партии, как правило, бракуются.
Число падения напрямую влияет на качество хлеба: чем ниже число падения от стандартных показателей, то хлеб из такой муки будет отходить от корки и иметь кисловатый вкус. Ярко выраженный запах солода и неустойчивая форма изделия – это тоже характеристики хлеба из некачественной муки с низким показателем числа падения.
В отделе химических исследований ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория» определение числа падения проводится по ГОСТ 27676-88 «Зерно и продукты его переработки. Метод определения числа падения». Принцип метода заключается в определении времени свободного падения шток-мешалки в клейстеризованной водно-мучной суспензии.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 114 проб материала, проведено 134 исследования, положительных случаев не выявлено.

Материал для исследования на сальмонеллез.

Для посмертной диагностики сальмонеллезов в лабораторию направляют свежие трупы мелких животных и птиц; от трупов крупных животных - паренхиматозные органы или части их (печень с желчным пузырем и лимфатическими узлами, селезенку, почку), мезентериальные лимфатические узлы, трубчатую кость; при подозрении на хроническую форму от свиней, кроме того, направляют слепую кишку с содержимым, и от телят - измененные участки легких; в случае аборта - свежий плод.
Материал для исследования следует брать в возможно более ранние сроки после гибели животного (не позднее 12 часов). Не рекомендуется брать материал от животных, подвергавшихся лечению антибиотиками.
Трупы направляют в лабораторию в водонепроницаемой таре. Пробы органов доставляют в чистой, по возможности стерильной посуде (кишечник отдельно от других органов) в свежем виде; при невозможности быстрой доставки материал консервируют 30% -ным водным раствором глицерина.
Для прижизненной диагностики в лабораторию направляют фекалии, кровь, истечения из матки при абортах, а для серологического исследования по РА - сыворотку крови.
Период бактериемии при сальмонеллезах очень короткий, поэтому кровь для прижизненной диагностики необходимо брать в наиболее ранние сроки заболевания (на 1 - 4-й день). Кровь берут стерильным шприцем из яремной вены больного животного (теленка) в количестве 5 - 10 мл. Посев на среды целесообразно проводить сразу же после взятия крови.
Для обнаружения сальмонелл пробы фекалий отбирают после дефекации из последней порции. При наличии в фекалиях крови, слизи, гноя, пленок их необходимо включить в пробу. Можно брать фекалии непосредственно из прямой кишки с помощью стерильной стеклянной ректальной трубки (трубки Цимана) или деревянной палочки с ватным или марлевым тампоном на конце. Отобранные пробы помещают в стерильную посуду.
При невозможности посева в течение 3-4 часов фекалии помещают в пробирку с консервирующим раствором. В качестве консерванта применяют глицериновую смесь или буферный раствор фосфорнокислых солей (pH 8,0). В пробирку наливают 5 мл консерванта, количество же помещенных фекалий должно составлять 1/3 объема консерванта.
Исследование фекалий следует начинать в возможно более ранние сроки. Лишь в исключительных случаях допускается хранение материала не более суток в холодильнике при 2 - 6°С.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 381 исследование.

Антибиотики в молоке могут присутствовать в остаточных количествах, которые попадают из-за применения препаратов в ветеринарии:
-лечение животных антибиотиками;
-применение антибиотиков в кормах для животных;
-неправильная обработка вымени (используемое средство может попасть в молоко);
-нарушение в очистке доильного оборудования (используемое средство может попасть в молоко).
В молоке, которое поступает в продажу, может сохраняться до 90–100% антибиотиков, присутствовавших в нём на момент дойки. Это связано с тем, что антибактериальные вещества практически не разрушаются и не переходят в другие формы при стерилизации и пастеризации.
Остаточные количества антибиотиков в молоке могут нанести вред здоровью человека и производству молочных продуктов:
-аллергические реакции;
-кумулятивное накопление в органах и тканях;
-появление устойчивости штаммов микроорганизмов к антибиотикам;
-нарушение технологического процесса (антибиотики подавляют развитие бактерий, применяемых при производстве кисломолочных продуктов, и нарушают сычужное свёртывание молока при производстве творога и сыра).
В лаборатории для определения остатков антибиотиков в молоке используют экспресс-тест 4 Sensor, основанный на иммунологическом методе (реакции комплексообразования антибиотиков в молоке со специфическими белковыми рецепторами, меченными коллоидным золотом, в микролунках диагностического набора). Данным набором определяются β-лактамы (пенициллин и цефалоспорин), тетрациклин, левомицетин (хлорамфеникол), стрептомицин.
Тест подходит для работы с сырым, пастеризованном, стерилизованном и предварительно восстановленным сухим молоком, и сывороткой.  Введён в ГОСТ 32219-2013 «Молоко и молочные продукты. Иммуноферментные методы определения наличия антибиотиков».
Микропробирки извлекают из пенала и помещают в термостат с температурой (40 ± 3) °С. В каждую микропробирку пипеткой с наконечником вносят 0.2 см3 анализируемого продукта, перемешивают и выдерживают в термостате в течение 5 мин.  В этот период реактив из микролунки смешивается с пробой молока. Если присутствуют антибиотики, то образуется комплекс из рецептора и анализируемого антибиотика.
Далее в микропробирки помещают индикаторные полоски хроматографической бумаги и выдерживают в термостате при температуре (40 ± 3) °С в течение 5 мин. После погружения в молоко, жидкость начинает мигрировать по тест-полоске и проходит через измерительные линии.
По истечении времени индикаторные полоски хроматографической бумаги извлекают из микропробирок и считывают результат. Если проба не содержит антибиотиков, линии окрасятся в насыщенный красный цвет, если антибиотики присутствуют- тестовая линия слабее контрольной.

Отчетный период с 30.01.2026г. по 05.02.2026г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 462 пробы сыворотки крови животных, проведено 1266 исследований. Выявлено: 4 положительно реагирующие пробы по лептоспирозу у мелкого рогатого скота.

Лейкоз крупного рогатого скота – хроническая инфекционная болезнь, характеризующаяся лимфоцитозом или образованием опухолей в кроветворных и других органах и тканях. Болезнь регистрируется почти во всех странах мира и наносит значительный экономический ущерб. Особую актуальность она приобрела из-за близкого родства ее возбудителя с вирусом Т-клеточного лейкоза человека. К вирусу восприимчивы крупный рогатый скот, овцы, зебу, буйволы и по некоторым данным, лоси. В организм крупного рогатого скота проникает вирус лейкоза, который является измененной макромолекулой рибонуклеиновой кислоты самого животного. Из-за этого происходит изменение строения клеток кровеносной системы, что нарушает ее функциональность. В результате происходит диффузная инфильтрация органов этими клетками или появляются опухоли. Инфекционная болезнь может носить скрытый инкубационный период до 7 лет. При этом корова может заразить других особей. Сложность выявления заболевания заключается в том, что оно может протекать совершенно бессимптомно. Лейкоз КРС передается при прямом контакте с больным животным, а также через слюну, молоко, околоплодные воды, плаценту, кровь и спермы от инфицированного быка. Вирус могут разносить кровососущие насекомые.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 58 проб,
проведено 334 исследования. 

В пробе лука репчатого свежего массовая доля нитратов – 1 выше нормы;
в пробе картофеля продовольственного свежего массовая доля нитратов – 1 выше нормы.

Нитраты — это соли азотной кислоты, которые накапливаются в продуктах и воде при избыточном содержании в почве азотных удобрений. Бесконтрольное применение азотных удобрений ухудшает качество сельскохозяйственной продукции, что может отразиться на здоровье человека.
Большая часть нитратов в организм человека попадает с продуктами питания растительного и животного происхождения, с питьевой водой и с лекарственными препаратами.
Главной причиной всех негативных последствий являются не столько нитраты, сколько их метаболиты – нитриты. Нитриты, взаимодействуя с гемоглобином, образуют метгемоглобин, не способный переносить кислород. В результате уменьшается кислородная емкость крови и развивается гипоксия (кислородное голодание).
Накопление нитратов и нитритов в кишечнике способствует образованию канцерогенных соединений нитрозаминного типа. Такое накопление опасных соединений в организме, может привести к значительным проблемам в здоровье и образованию злокачественных опухолей.
Отравления у людей происходят при употреблении воды и продуктов растительного и животного происхождения с высоким содержанием нитратов или нитритов.
Признаки отравления некачественной водой проявляются уже через 1-1,5 часа. Кроме типичных признаков отравления в виде болей в животе, рвоты и слюнотечения, появляется синюшность губ, слизистых оболочек, лица и ногтей. Отравление нитратами с пищей проявляется спустя 4-6 часов и проявляется сначала с синюшности, в опорожнении могут присутствовать примеси крови. Характерны - общая слабость, сонливость, потемнение в глазах, сильные головные боли, у детей сильное беспокойство. При тяжёлых отравлениях наблюдаются судороги и потеря сознания. Особенно опасны нитраты для грудных детей, т.к. их ферментная основа несовершенна и восстановление метгемоглобина в гемоглобин идёт медленно.
В отделе химических исследований массовую долю нитратов определяют ионометрическим методом в продуктах питания и кормах. Принцип ионометрического метода определения нитратов заключается в извлечении нитратов из анализируемого материала раствором алюмокалиевых квасцов с последующим измерением их концентрации в полученной вытяжке с помощью ионоселективного электрода.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 48 проб материала, проведено 66 исследований, выявлен 1 положительный случай.

Бактериологический метод лабораторной диагностики туберкулеза.

Мазки патологического материала готовят, используя чистые обезжиренные предметные стекла. Готовят по два мазка из каждого органа и лимфатического узла. Мазки высушивают на воздухе, фиксируют над пламенем и окрашивают по Циль-Нильсену.
Для микобактерий туберкулеза характерны тонкие, прямые или изогнутые красные палочки различной длины, часто зернистые. Они располагаются небольшими скоплениями или единичны. Из каждого доставленного лимфатического узла вырезают кусочки размером 0,5 см3 на границе здоровой и измененной ткани. Общая масса лимфоузлов для исследования составляет около 6-10 г. Брыжеечные лимфатические узлы, взятые в области илеоцекального соединения и подвздошной кишки, обрабатывают и высевают отдельно от других лимфатических узлов. Кусочки органов и тканей, свежие или отмытые дистиллированной водой от консервирующей жидкости, обрабатывают методом Аликаевой. Подготовленный для исследования материал высевают в 5-10 пробирок с питательной средой Левенштейна-Иенсена или Гельберга, Петраньяни, Финн-2, Мордовского. В 5 пробирок тех же сред высевают взвесь из брыжеечных лимфоузлов и в одну пробирку с мясопептонным агаром (МПА) и мясопептонным бульоном (МПБ). Посев проводят пастеровской пипеткой или платиновой петлей, осторожно втирая материал по всей поверхности питательной среды. Засеянные пробирки укладывают в наклонном положении и помещают в термостат с температурой 37-38 °С. Через 2 суток посевы просматривают и определяют восстановление цвета среды. Если цвет среды не восстановился, обработку и посев повторяют. Пробирки, в которых появился рост посторонней микрофлоры, удаляют. В остальных ватно-марлевые пробки парафинируют. Для выявления начального роста микобактерий все пробирки с посевами просматривают не менее одного раза в неделю. Посевы выдерживают в термостате в течение 90 суток. При обнаружении роста микобактерий в первые 10 суток наблюдение за посевами продолжают в течение 3 месяцев.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 488 исследований.

От качества и безопасности корма зависит здоровье животных. Употребление животными кормов, обсемененных микроорганизмами, провоцирует различные заболевания желудочно-кишечного тракта, поражает иммунную систему и может привести к летальному исходу.
Проведение бактериологического контроля кормов и сырья для их производства актуально, так как большинство производственных животноводческих и птицеводческих предприятий изготавливают корма на базе своих производств. Санитарное состояние кормов определяется органолептическим, бактериологическим методами. Органолептическое исследование включает в себя определение цвета и запаха.
При нарушении технологического процесса приготовления и условий хранения в кормах могут развиваться различные микроорганизмы, такие как кишечная палочка (Escherichia coli), сальмонелла (бактерии рода Salmonella), анаэробные микроорганизмы, энтерококки (бактерии рода Enterococcus), бактерии рода Proteus и др.
При микробиологическом исследовании различных видов кормов определяют следующие показатели:
- корма растительного происхождения исследуются на отсутствие сальмонелл, энтеропатогенных типов кишечной палочки, анаэробов, ботулотоксина;
- корма животного происхождения исследуются не только на вышеперечисленные показатели, но и на определение общего количества микробных клеток в 1 г корма, а также на наличие энтерококков и бактерий рода Proteus.
При обнаружении сальмонелл, энтеропатогенных типов кишечной палочки, протея, анаэробных микроорганизмов и их токсинов корм запрещается использовать животным без обработки.
В текущем году в лаборатории проведены исследования 16 проб корма и готового сырья с целью определения общей бактериальной обсеменённости, сальмонелл, энтеропатогенных типов кишечной палочки, токсинобразующих анаэробов, ГМО и органолептических показателей.

Отчетный период с 06.02.2026г. по 12.02.2026г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 588 проб сыворотки крови животных, проведено 1216 исследований. Выявлено: 2 положительно реагирующие пробы по лептоспирозу свиней и 1 положительно реагирующая проба по лептоспирозу крупного рогатого скота.

Бруцеллез (Brucellosis) — инфекционная, хронически протекающая болезнь домашних, некоторые виды диких животных и человека, характеризующаяся поражением многих систем жизнеобеспечения, нарушением функций сосудистой, пищеварительной, мочеполовой систем и системы воспроизводства. Длительность инкубационного периода 2 – 3 недели. Первым показателем развившегося инфекционного процесса служит появление в крови инфицированных животных агглютининов в постепенно нарастающих титрах. У коров основным клиническим признаком бруцеллеза является аборт и реже рождение нежизнеспособного приплода. Коровы, заразившиеся до покрытия, в большинстве случаев приносят нормальный приплод. Аборт чаще всего происходит на 5 – 8 месяце. За 1 – 2 дня до наступления аборта у коров отмечается припухание наружных половых органов, выделение из влагалища бесцветной или буроватой жидкости и набухание вымени. После аборта происходит задержка последа и развивается эндометрит, сопровождающийся обильными слизисто-гнойными или гнойно-фибринозными выделениями. При тяжело протекающем эндометрите повышается температура тела, снижаются удои, отмечается потеря веса, убыстряется СОЭ; умеренный лейкоцитоз. Эндометритам нередко сопутствуют серозные или серозно-катаральные маститы. В процессе могут вовлекаться яичники и фаллопиевы трубы, что приводит к нарушению полового цикла и временному или стойкому бесплодию. У отдельных животных в связи с абортом или независимо от него можно наблюдать развитие серозных бурситов или серофибринозных артритов. Последние в большинстве случаев возникают в суставах передних конечностей — запястном, путовом, коленном, локтевом. У быков бруцеллез, хотя и редко, сопровождается развитием орхитов и эпидидимитов.
Лабораторная диагностика бруцеллеза основана на результатах бактериологического и серологического исследований. Бактериологическое исследование в основном применяют при первичной постановке диагноза на бруцеллез в ранее благополучных хозяйствах.
При массовых диагностических исследованиях ставят пробирочную РА, РСК, РДСК, кольцевую реакцию с молоком (КР).

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 24 пробы, проведено 126 исследований. 
В пробе молока питьевого ультрапастеризованного с м.д.ж. 2,5% массовая доля сухого обезжиренного молочного остатка (СОМО) - 1 ниже нормы.
Определение СОМО в молоке

Молоко отличается высокой питательной ценностью, легко усваивается и после тепловой обработки может использоваться в пищу как самостоятельный продукт. Сырое молоко служит сырьем для изготовления сливок, творога, сливочного масла, кисломолочной продукции, твердых и мягких сыров. Натуральность и полноценность молочного сырья определяется процентным содержанием сухого молочного остатка (СМО) и сухого обезжиренного молочного остатка (СОМО).
СОМО – сухой обезжиренный молочный остаток. Позволяет судить о натуральности молока, так как выявляет разбавленное молоко.
Качество молочных продуктов и выход готовой продукции напрямую зависят от содержания сухих веществ в молоке. При этом первостепенное значение может иметь не количественный, а качественный состав молока.
Что же влияет на уровень СОМО в молоке?
Можно выделить три фактора, максимально влияющих на показатель СОМО в молоке:
1. Добавление в молоко воды (фальсификация). Считается, что, если СОМО в молоке ниже 8,2%, то молоко разбавлено водой.
2. Мастит. Считается, что в маститном молоке значение СОМО пониженное.
3. Нарушение обмена веществ. Длительный дефицит или избыток в рационе того или иного вещества влияет на общие обменные процессы в организме. В конечном итоге меняется состав крови, а значит, и молока.
В отделе химических исследований проводят определение массовой доли сухого обезжиренного молочного остатка (СОМО) по ГОСТ Р 54761-2011 «Молоко и молочная продукция. Методы определения массовой доли сухого обезжиренного молочного остатка, п. 6». Принцип метода определения массовой доли сухого обезжиренного молочного остатка (СОМО) в молоке заключается в высушивании анализируемой пробы при постоянной температуре.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 46 проб материала, проведено 65 исследований, выявлено 2 положительных случая.
Бешенство у животных (гидрофобия, Rabies) – это вирусное заболевание, поражающее любых млекопитающих. Летальность бешенства – 100%, умирают все особи, у которых начали проявляться клинические симптомы. На данный момент, заболевание считается неизлечимым, однако принятие срочных мер (вынужденная иммунизация), позволяет предотвратить летальный исход. Бешенство регистрируют повсеместно. Естественным резервуаром инфекции в природе являются дикие животные: лисы, еноты, летучие мыши, волки, ежи, мелкие грызуны. Домашние животные (собаки, кошки, коровы, мелкий рогатый скот, лошади) и человек заражаются при укусе больного бешенством животного или от попадания слюны на поврежденный участок кожи, слизистые оболочки или в глаза. Вирус бешенства поражает преимущественно нервную систему. Во внешней среде вирус неустойчив, заболевание передается исключительно при непосредственном контакте (укусе или ослюнении). Чем ближе место проникновения вируса в ткани к головному мозгу, тем быстрее развиваются симптомы.
Клинические признаки болезни у зараженного вирусом бешенства животного начинают проявляться незадолго до гибели, а способность заразить через слюну у бешеного животного появляется за 10 дней до появления клинической симптоматики.
У животных различают три формы проявления бешенства – буйная, тихая и атипичная.
Для буйной формы течения бешенства характерна четкая стадийность:
1 стадия - животное избегает контактов, стремиться спрятаться в укромном месте. Может проявляться странное поведение, ранее несвойственное данной особи - как повышенная ласковость, так и пассивная агрессия. Аппетит снижается или извращается (животное поедает несъедобные предметы). Затрудняется акт глотания, появляются рвота, слюнотечение и галлюцинации;
2 стадия - животное проявляет выраженную агрессию, нарастает беспокойство, вплоть до неистовства, наблюдается стремление к движению вперед. Животное может грызть окружающие предметы, амуницию, землю. На этой стадии проявляются судорожные припадки, которые с течением времени учащаются и удлиняются.
3 стадия, терминальная — паралитическая, или депрессивная. Животное, как правило, сильно истощено, наблюдается парез языка и гортани. Сначала походка становится шаткой, затем развивается паралич задних конечностей, а также атония кишечника и мочевого пузыря. Смерть наступает от остановки дыхания на фоне паралича дыхательной мускулатуры.
Тихая форма бешенства характеризуется развитием паралича, слюнотечением, неспособностью принимать пищу. Через 2 – 4 дня животное погибает.
Атипичная форма (наиболее сложная в диагностике) – может длиться до 3-х месяцев. Вначале может проявляться диареей или наоборот атонией кишечника, угнетением сознания. В течение болезни могут наступать временные улучшения, но в итоге животное все равно погибает с быстро нарастающей неврологической симптоматикой.
Диагноз "бешенство" ставят на основании комплекса эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных и результатов лабораторных исследований.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 170 исследований.
При бактериологическом контроле качества дезинфекции определяют наличие на поверхностях обеззараживаемых объектов жизнеспособных клеток санитарно-показательных микроорганизмов — бактерий группы кишечных палочек (Escherichia, Citrobacter, Enterо bacter), стафилококков (S. aureus, S. epidermatis, S. saprophiticus), микобактерий или спорообразующих аэробов рода Bacillus.
По наличию или отсутствию бактерий группы кишечных палочек определяют качество профилактической и вынужденной (текущей и заключительной) дезинфекции при бруцеллезе, эшерихиозе, лептоспирозе, листериозе, болезни Ауески, лейкозе, пастереллезе, сальмонеллезах, трихомонозе, кампилобактериозе, трипаносомозе, токсоплазмозе, инфекционном ринотрахеите, парагриппе и вирусной диарее крупного рогатого скота, контагиозной эктиме, инфекционной агалактии и контагиозной плевропневмонии овец и коз, отечной болезни, инфекционном атрофическом рините, дизентерии, трансмиссивном гастроэнтерите, балантидиозе, гемофилезной плевропневмонии и роже свиней, ринопневмонии лошадей, пуллорозе-тифе птиц, миксомотозе кроликов, микоплазмозе птицы.
По наличию или отсутствию стафилококков контролируют качество текущей дезинфекции при туберкулезе, болезнях, вызываемых спорообразующими микроорганизмами, и экзотических инфекциях, а также качество заключительной дезинфекции при туберкулезе, аденовирусных инфекциях, ящуре, оспе, туляремии, орнитозе (пситтакоз), диплококкозе, стафилококкозе, стрептококкозе, некробактериозе, катаральной лихорадке, бешенстве, чуме животных всех видов, злокачественной катаральной горячке, ринопневмонии и паратуберкулезном энтерите крупного рогатого скота, инфекционной катаральной лихорадке, копытной гнили и инфекционном мастите овец, везикулярной болезни свиней, инфекционной анемии, инфекционном энцефаломиелите, эпизоотическом лимфангите, сапе и мыте лошадей, гепатите утят, вирусном энтерите гусят, инфекционном бронхите, ларинготрахеите, болезни Марека, болезни Гамборо, ньюкаслской болезни, вирусном энтерите, алеутской болезни, псевдомонозе и инфекционном гепатите плотоядных, хламидиозах, риккетсиозах, энтеровирусных инфекциях, гриппе сельскохозяйственных животных и птицы, трихофитии, микроспории, других микозах животных и птицы, актиномикозе крупного рогатого скота.
Смывы должны быть доставлены в лабораторию в течение 3 - 6 ч с момента взятия.
Пробы, каждую в отдельности, отмывают в пробирке путем нескольких погружений и отжатий тампона. Отжатые тампоны удаляют, а жидкость центрифугируют при 3000 - 3500 об/мин в течение 20 - 30 мин. Затем над осадочную жидкость сливают, в пробирку наливают такое же количество стерильной воды, содержимое смешивают и снова центрифугируют. Над осадочную жидкость сливают, а из центрифугата делают посевы.
Для индикации кишечной палочки 0,5 мл центрифугата высевают в пробирки с модифицированной средой Хейфеца или КОДА. Посевы выдерживают в термостате при температуре 37 - 38°С в течение 12 - 18 ч. Изменение цвета среды, помутнением и газообразованием свидетельствует о наличии роста кишечной палочки.
В сомнительных случаях делают подтверждающий посев с жидких сред на агар Эндо. Посевы инкубируют при температуре 37 - 38 °С в течение 12 - 16 ч.
Для индикации стафилококков 0,5 мл центрифугата высевают в 5 мл мясопептонного бульона с 6,5 % хлористого натрия. Через 22 - 24 ч инкубирования посевов при температуре 37 - 38 °С делают пересевы бактериологической петлей на солевой мясопептонный агар. Посевы выдерживают в термостате 22 - 24 ч при температуре 37 - 38 °С. Из выросших культур для подтверждения роста стафилококков готовят мазки, окрашивают и микроскопируют.

Отчетный период с 23.01.2026г. по 29.01.2026г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 630 проб сыворотки крови животных, проведено 2606 исследований. Выявлено: 11 положительно реагирующих проб по лептоспирозу у крупного рогатого скота, 1 серопозитивная проба по лейкозу крупного рогатого скота.
Бруцеллез (Brucellosis) — инфекционная, хронически протекающая болезнь домашних, некоторые виды диких животных и человека, характеризующаяся поражением многих систем жизнеобеспечения, нарушением функций сосудистой, пищеварительной, мочеполовой систем и системы воспроизводства. Многие исследователи считают, что специфическим для бруцеллеза механизмом передачи являются алиментарные пути заражения, и на этом основании относят бруцеллез к группе кишечных инфекций, возбудители которых проникают через рот, локализуются в слизистой оболочке кишечника, размножаются в ней и выделяются во внешнюю среду с испражнениями. Источником заражения человека являются больные животные – коровы, козы, свиньи, верблюды. Молоко от абортировавших коров наиболее опасно для заражения бруцеллёзом, убить бруцелл в нём можно только при помощи кипячения. Заразиться бруцеллёзом через сметану и сливочное масло, а также простоквашу, сыворотку, пахту также легко, потому что эти продукты в процессе изготовления не подвергаются тепловой обработке. Опасным в отношении заражения бруцеллёзом является мясо больных животных, бруцеллы сохраняются даже в замороженном сыром мясе. Только тщательная долгая варка может убить возбудителя заболевания бруцеллёзом, изделия из фарша могут стать источником заражения бруцеллёзом, так, например, котлеты, плохо прожаренные, имеют в середине температуру от 40 градусов, а это не убивает возбудителя заболевания. Возбудитель бруцеллёза может сохраняться в активном состоянии и на шерсти с больных животных, шкурах, в местах их содержания. Длительность инкубационного периода 2 – 3 недели. Первым показателем развившегося инфекционного процесса служит появление в крови инфицированных животных агглютининов в постепенно нарастающих титрах. У коров основным клиническим признаком бруцеллеза является аборт и реже рождение нежизнеспособного приплода. Аборт чаще всего происходит на 5 – 8-м месяце. За 1 – 2 дня до наступления аборта у коров отмечается припухание наружных половых органов, выделение из влагалища бесцветной или буроватой жидкости и набухание вымени. После аборта происходит задержка последа и развивается эндометрит, сопровождающийся обильными слизисто-гнойными или гнойно-фибринозными выделениями. При тяжело протекающем эндометрите повышается температура тела, снижаются удои, отмечается потеря веса, убыстряется СОЭ; умеренный лейкоцитоз. В лабораторию направляются пробы сыворотки крови для серологического исследования. При массовых диагностических исследованиях ставят РА (реакция агглютинации), РСК, РДСК, кольцевую реакцию с молоком (КР). 

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 19 проб, проведено 148 исследований. 
В ряженке массовая доля белка – 1 ниже нормы;
в мясокостной муке массовая доля влаги – 1 выше нормы.

Определение массовой доли белка методом Кьельдаля
Йохан Кьельдаль – известный датский химик и пивовар XIX века. Его метод определения белка, предложенный в 1883 году, до сих пор является одним из основных и широко применяется для анализа состава продуктов питания, кормов для животных, а также почв, удобрений, сточных вод и пр.
Метод Кьельдаля – это эффективный способ определения массовой доли белков и общего азота в различных продуктах и материалах.
Суть метода – последовательное проведение трёх операций, а именно:

  • минерализации;
  • отгонки;
  • титрования.

Среди преимуществ метода – высокая точность и воспроизводимость. Недостаток – отсутствие селективности по отношению к атомам азота, входящим в состав изучаемого вещества. То есть метод Кьельдаля определяет весь азот – не только тот, что входит в структуру молекул молочных белков, но и тот, что был привнесён азотсодержащим веществом. Пользуясь этой погрешностью, многие недобросовестные производители стали добавлять в молочную продукцию азотсодержащие вещества, например, мочевину.
Несмотря на высокую точность, метод Кьельдаля считается достаточно трудоёмким. Он занимает от одного до нескольких часов, требует работы с опасными веществами (щёлочью, серной кислотой). Но, несмотря это, способ является единственным общепризнанным арбитражным методом определения белка.
В отделе химических исследований методом Кьельдаля определяют массовую долю белка в пищевых продуктах и массовую долю сырого протеина в кормах по следующим методикам:
- ГОСТ 25011-2017 Мясо и мясные продукты. Методы определения белка, п. 6;
- ГОСТ 23327-98 Молоко и молочные продукты. Метод измерения массовой доли общего азота по Кьельдалю и определение массовой доли белка (химический способ);
- ГОСТ 34454-2018 Молочная продукция. Определение массовой доли белка методом Кьельдаля;
- ГОСТ 13496.4-2019 Корма, комбикорма, комбикормовое сырье. Метод определения содержания азота и сырого протеина, п.1-п.8.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 50 проб материала, проведено 63 исследования, выявлен 1 положительный случай.

Псевдомоноз сельскохозяйственных животных

Синегнойная палочка - это прямая или слегка изогнутая палочка размером 0,5 - 1 x 1,5 - 3 мкм, хорошо окрашивается анилиновыми красителями, грамотрицательная, аэроб. В мазке располагается одиночно, парами или короткими цепочками. Подвижна, имеет 1 - 3 полярных, биполярных или боковых жгутика, но имеются и безжгутиковые формы. Установлено присутствие фимбриальных (пилевых) структур, спор не образует, обнаружены капсульные и бескапсульные варианты синегнойной палочки. Обладает способностью образовывать внеклеточную капсулоподобную слизь. Хорошо растет на простых и искусственных питательных средах. Дополнительных факторов роста не требует. Оптимальная температура роста - 37°C, однако может расти в диапазоне от 5 - 7 до 43°C. Предпочитает нейтральную реакцию среды (pH 7,2 - 7,5), но может размножаться при pH 4,5 и 9,0. Рост на мясо-пептонном бульоне через 18 - 24 часа характеризуется равномерным помутнением с образованием небольшого осадка и серовато-серебристой пленки.
На мясо-пептонном агаре, средах Эндо или Плоскирева можно различить 5 типов колоний:

  • · плоские неправильной формы;
  • · колонии, напоминающие колонии Escherichia coli в S-форме;
  • · - складчатые ("цветок маргаритки");
  • · - слизистые;
  • · - точечные, карликовые.
При культивировании на питательных средах Pseudomonas aeruginosa выделяет ароматическое вещество триметиламин, запах которого напоминает цвет липы, жасмина, земляничного мыла или карамели. У беспигментных штаммов запах может иметь горьковато-прогорклый оттенок.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1266 исследований.
Репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС) - контагиозная вирусная болезнь свиней. Характерные клинические признаками РРСС: угнетенное состояние, отказ от корма, повышение температуры тела, конъюнктивит, отек век, потеря зрения, поражение органов дыхания, цианоз ушей, хвоста, молочных желез, вульвы. У свиноматок поздние аборты, преждевременные опоросы или задержка опороса, рождение нежизнеспособного молодняка, молодняка с признаками уродства, гибель поросят на 2-7 сутки жизни, гибель поросят-отъемышей с признаками пневмонии и диареи. У хряков ухудшается качество спермы.
Возбудителем является РНК-содержащий вирус рода Arterivirus семейства Arteriviridae. Существует два генотипа вируса: американский (А) и европейский (В).
В лаборатории исследования материала проводятся с использованием следующих методов: полимеразной цепной реакции и иммуноферментного анализа.
Для выявления РНК вируса репродуктивно-респираторного синдрома свиней методом ПЦР направляется материал:
• Плазма крови, сыворотка крови. Кровь забирается в пробирку с антикоагулянтом (ЭДТА), закрытую пробирку с кровью несколько раз переворачивают. Для получения сыворотки забирают кровь в пробирку без антикоагулянта.
• Мазки со слизистой носа и носоглотки берут сухими ватными зондами. Зонд с материалом помещают для транспортировки в пробирки со стерильным физиологическим раствором.
• Сперму в объеме не менее 2 мл, в стерильную посуду.
• Плацента и плодовые оболочки от абортировавших животных берут на исследование целиком.
• Фрагменты тканей и органов павших животных (миндалины, селезенка, легкие, печень и др.) отбирают в стерильный контейнер.
• Продукты питания (фарш, мясные полуфабрикаты, сосиски, колбасу и т.п.) отбирают в стерильные контейнеры.
• Смывы с поверхностей (внутрилабораторных, с поверхностей тары, кормушек, мест содержания животных и др.) отбирают в стерильную тару с 0,5 мл физиологического раствора.
Не рекомендуется исследовать материал от вакцинированных животных, если от момента вакцинации прошло менее 4 недель.
Полученные образцы можно транспортировать и хранить в следующих режимах:
- при температуре от 2 до 8°С – в течение суток;
- при температуре не выше минус 18°С – в течение 2 недель;
- при температуре не выше минус 68°С – длительно.
Допускается однократное замораживание-оттаивание материала.
Для определения уровня антител к вирусу репродуктивно-респираторного синдрома свиней методом ИФА в лабораторию направляют сыворотку крови.

Подкатегории