Метод основан на извлечении из исследуемых кормов различных фракций токсических веществ параллельно ацетоном и водой с последующим воздействием этих экстрактов на стилонихий. Оценку результату биотеста дают по реакции гибели инфузорий. Безопасным в этом случае следует считать корм, определенный как нетоксичный при одновременном параллельном исследовании как ацетонового, так и водного экстракта.

• Методы определения общей токсичности кормов биотестированием на кроликах и мышах.

Методы основаны на испытании кормов растительного и животного происхождения, а также комбикормов для продуктивных и непродуктивных животных и кормовых добавок методом биотестирования параллельно на кроликах (кожная проба) и на мышах (острый опыт), что дает возможность учесть как дермонекротическое действие токсинов, так и их воздействие на пищеварительную систему теплокровных животных. Результат определяют по совокупности реакций в обоих методах: корм нетоксичный (нетоксичен в обоих тестах), корм токсичный (токсичен хотя бы в одном тесте). При этом готовят и вводят мышам либо ацетоновый экстракт (если по результатам экспресс-биотеста токсичен был ацетоновый экстракт корма), либо водный экстракт (если по результатам экспресс-биотеста токсичен был водный экстракт). Такой анализ дает возможность учесть действие водорастворимых и растворимых в ацетоне токсинов.

За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1946 проб материала, проведено 1980 исследований, выявлено 9 положительных случаев.

Бактериологическое исследование колибактериоза.

Второй день: извлечённые из термостата чашки с культурами на агаре Эндо или Левина просматривают и отбирают 10 типичных для эшерихий колоний (5 - выросших после посева фекалий или соскобов со слизистой кишечника и 5 - из других органов и тканей, в том числе брыжеечных лимфатических узлов).Эти колонии: круглые, с гладкой, выпуклой поверхностью, ровными краями, диаметром 2-4 мм, красно-малинового цвета на агаре Эндо и тёмно-фиолетового цвета на агаре Левина с металлическим блеском или без него. Затем их нумеруют. Из отобранных колоний готовят мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют. При наличии в мазках мелких грамотрицательных палочек с закруглёнными концами, не образующих спор, расположенных одиночно и попарно, пересевают эти колонии на пластинчатый МПА и среду Минка в чашках, разделённых карандашом для стекла на 10 секторов (каждую колонию на две среды и соответствующий пронумерованный сектор). При этом в обязательном порядке пересевают лактозоположительные колонии, имеющие слизистую тягучую консистенцию, если такие колонии содержатся в культуре.
С чашек с культурами на среде с сорбитом, выделенных из разных органов и тканей животного, отбирают 3-4 колонии, характерные по структуре и цвету для эшерихий сероваров О157:Н7 и О157:Н- (средних размеров S-формы, серовато-белого цвета). Из этих колоний готовят мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют. В случае типичных для эшерихий клеток бактерий указанные колонии пересевают в пробирки со скошенным МПА.
При исследовании на отёчную болезнь поросят дополнительно пересевают с агара Эндо или Левина 5-6 колоний на кровяной агар в чашке, разделённой на соответствующее количество секторов, для изучения гемолитических свойств культур.
Лактозоположительные колонии на плотной селективной среде (Эндо или Левина), выросшие после посева материала от птиц, не пересевают на пластинчатый МПА и среду Минка. Для родовой и видовой идентификации культур и изучения их свойств отбирают 2-3 типичные для эшерихий колонии (с культур, выделенных из разных органов и тканей одной погибшей или убитой с диагностической целью птицы), из которых готовят мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют. При наличии в мазках морфологически характерных для эшерихий клеток бактерий пересевают эти колонии на скошенный МПА или среду Олькеницкого, или другую комбинированную среду.
Во всех случаях засеянные чашки и пробирки помещают в термостат (37°С) на 16-20 часов.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 493 исследования.

Классическая чума свиней (лат. Pestis suum) — вирусная болезнь свиней, характеризующаяся лихорадкой, поражением кровеносных сосудов и кроветворных органов, крупозно-дифтеритическим воспалением слизистой оболочки толстых кишок. Регистрируется во всех странах, наносит большой экономический ущерб хозяйствам: летальность 80—100 %. Заболевание возникает в любое время года.
Возбудитель - вирус рода Pestivirus семейства Flaviviridae.  В организме больных свиней вирус находится в крови, во всех органах и тканях.
Вирус поражает домашних свиней и диких кабанов независимо от породы и возраста. Источник возбудителя инфекции — больные свиньи, выделяющие вирус во внешнюю среду с мочой, фекалиями, спермой, секретами.
Факторами передачи возбудителя являются продукция животного происхождения, трупы, сперма восприимчивых животных, корма, оборудование, подстилка, инвентарь и иные материально-технические средства, объекты внешней среды, контаминированные возбудителем. Естественное заражение свиней чаще происходит через пищеварительный тракт, органы дыхания, реже через повреждённую кожу. Передача возбудителя осуществляется контактным, алиментарным, трансплацентарным, ятрогенным путями и при искусственном осеменении.
При патологоанатомическом вскрытии обращают внимание на выраженный геморрагический диатез в различных органах, мраморность лимфоузлов, инфаркты селезенки, кровоизлияния в почках на фоне их анемии, катарально-геморрагический гастроэнтерит, лимфоцитарный энцефаломиелит. При хроническом течении характерными измениями являются очаговый дифтеритический налет (бутоны), коричневая экзема, фибринозный плеврит и перикардит, некроз миндалин. Хроническая болезнь часто протекает на фоне других инфекций.
Для лабораторных исследований методом ПЦР от каждого трупа восприимчивого животного должны отбираться фрагменты селезенки, почек, печени массой 5-10 г, заглоточные, подчелюстные, мезентериальные и брыжеечные лимфатические узлы, костный мозг из грудной кости. Также исследуется биологический материал: пробы крови в объеме по 5-7 мл с антикоагулянтом и без антикоагулянта (или с фактором свертывания крови для получения сыворотки), мазки со слизистой оболочки носоглотки и миндалин, фекалии, продукты свиного происхождения. С целью выявления антител к вирусу классической чумы свиней исследуется сыворотка крови методом ИФА.

Трипаносомозы (случная болезнь) – протозойные болезни животных, протекающие преимущественно хронически.

Возбудитель случной болезни – Trypanosoma equiperdum, поражающая слизистые оболочки половых органов, регионарные лимфатические узлы и сосуды, кровеносные капилляры. Основной вред – нарушение работы половых органов, приводящее к бесплодию. Также отмечается поражение нервной системы токсинами трипаносом.

Источником заражения выступают больные животные. Заражение восприимчивых животных происходит половым путем при случке или искусственном осеменении спермой, содержащей возбудителя. Жеребята могут заражаться во время родов через слизистую оболочку или через молоко от больных кобыл. Передача возбудителя происходит через инвентарь, предметы ухода и с помощью насекомых.

Болезнь протекает в любое время года обычно хронически. Клинические признаки часто развиваются в определенной последовательности. В первые 30-40 дней после заражения – период отеков слизистых оболочек органов, на них и коже появляются узелки, язвочки, на месте заживления которых образуются беспигментные пятна.

Затем следует период, когда образуются специфические для этой болезни припухлости кожи, так называемые «талерные бляшки» размером от 4 до 20 см. Характерно их внезапное появление и исчезновение. Животные обычно худеют, кобылы абортируют.

И наступает период – период параличей. Появляются парезы и параличи двигательных органов, чаще лицевых: искривляются губы, отвисает ухо. Лошадь хромает, слегка приседая при проводке.

В серологическом отделе исследование сывороток крови животных на случную болезнь проводят в реакции связывания комплемента (РСК), по Методическим указаниям по лабораторным исследованиям на трипаносомозы лошадей, верблюдов, ослов, мулов и собак № 13-7-3/150 от 06.09.1994г, пункт 4.2.

За отчетный период в отдел химических исследований поступила 31 проба, проведено 210 исследований. 
В пробе лука репчатого свежего массовая доля нитратов - 1 выше нормы

 Содержание нитратов в плодах и овощах

Нитратами называют соли азотной кислоты – природные вещества, образующиеся при метаболизме в растениях, в том числе овощах. Более того, эти естественные соединения есть в почве, откуда тоже идут через корневую систему в стебли, листья, плоды. Еще нитраты проникают в сельхозкультуры из внесенных в землю и растворившихся там удобрений.
Растения накапливают азотистые соли на начальном этапе развития, запасаясь питательными веществами. Если производители овощей, ягод, фруктов, зелени используют удобрения в чрезмерном количестве, содержание нитратов в растительной продукции может стать опасным для людей.
Овощи, плоды которых находятся над поверхностью почвы, и фрукты в среднем содержат азотистых солей меньше, чем корнеплоды. Причем опасные компоненты сконцентрированы в основном в кожуре и под ней, в мякоти их количество невелико.
Содержание нитратов зависит и от степени зрелости овощей и фруктов: чем спелее, тем солей азота больше.
Пиковое количество нитратов в корнях, стеблях, черешках, крупных прожилках листьев и корнеплодах. По способности аккумулировать азотистые соли ученые классифицируют плоды по трем группам:

• низкое содержание нитратов – от 10 до 80 мг на килограмм продукта – может быть в брюссельской капусте, репчатом луке, горохе, томатах, фасоли, картофеле, фруктах, щавеле, ягодах;
• среднее – от 300 до 600 мг – в белокочанной и цветной капусте, моркови, огурцах, репе, кабачках, редьке, тыкве, хрене;
• высокое – до 5000 мг нитратов на килограмм – накапливается дынями, арбузами, зеленым луком, листовой капустой, редисом, шпинатом, салатом, свеклой, укропом.

Оказавшись в организме, нитраты всасываются через стенки тонкого кишечника и попадают в кровь, а в период лактации у женщин — в грудное молоко. Компоненты реагируют с гемоглобином, окисляя его и образуя метгемоглобин с повышенным количеством железа. В результате у человека могут развиться серьезные заболевания.
В отделе химических исследований массовую долю нитратов определяют по МУ 5048-89 Методические указания по определению нитратов и нитритов в продукции растениеводства, п. 2. Сущность метода состоит в извлечении нитратов из анализируемо­го материала раствором алюмокалиевых квасцов с последующим измере­нием их концентрации в полученной вытяжке с помощью ионоселективного электрода.  

За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 352 пробы материала, проведено 410 исследований, выявлено 5 положительных случаев.

Материал для исследования бактериологической диагностики колибактериоза.

Для посмертной бактериологической диагностики колибактериоза в лабораторию направляют 2-3 свежих трупа или убитых с диагностической целью больных животных (желательно не подвергавшихся лечению антибактериальными препаратами). В случае невозможности доставки целого трупа в лабораторию направляют от телят, ягнят и поросят долю печени с жёлчным пузырём; сердце, перевязанное лигатурой вблизи разреза сосудов и аорты; селезёнку, поражённый участок тонкого отдела кишечника, перевязанный с двух концов лигатурой, с 2-3 пакетами регионарных лимфатических узлов, голову, трубчатую кость. Кишечник вместе с регионарными лимфатическими узлами упаковывают отдельно в полиэтиленовый пакет.
Для прижизненной бактериологической диагностики колибактериоза в лабораторию направляют фекалии больных диареей животных (не менее чем от 5 животных с одной фермы), не подвергавшихся лечению антибактериальными препаратами. Пробы фекалий массой 1-2 г от каждого больного животного берут во время дефекации или из прямой кишки в стерильные пробирки с помощью прокипячённого резинового катетера, обвёртывают их ватой и вместе с сопроводительной запиской упаковывают в пенал, коробку или полиэтиленовый пакет. При невозможности быстрой доставки проб фекалий в лабораторию (через 3-4 часа после взятия) их консервируют глицериновым раствором в соотношении 1:2.
Для диагностики колибактериоза птиц в лабораторию направляют из неблагополучных птичников по 3-5 свежих трупов и 3-4 цыплёнка с клиническими признаками болезни. Больную птицу убивают в лаборатории и подвергают бактериологическому исследованию.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 666 исследований.
Орнитоз, пситтако́з (от лат. psittacus — «попугай») – это инфекционное заболевание с преимущественно аэрозольным механизмом передачи, характеризующаяся в типичных случаях лихорадкой, интоксикацией и поражением органов дыхания. Возбудитель орнитоза – бактерии Chlamydia psittaci.  Бактерия устойчива к высыханию, поэтому может сохраняться в окружающей среде (пыли, загрязнённых перьях) долгое время.
Источником и резервуаром C. psittaci являются различные виды синантропных, декоративных, домашних и диких птиц. Наибольшее эпидемиологическое значение имеют домашние птицы - особенно утки и индюшки, комнатные птицы-попугаи, волнистые попугайчики, канарейки, синантропные - городские голуби.
Симптомы орнитоза у птиц: ринит, диарея, воспаления глаз, заторможенность, вялость, слипание перьев, взъерошенность оперения, отказ от еды. Чаще наблюдается бессимптомное течение болезни, с выделением микроорганизмов во внешнюю среду.  При непосредственном контакте дикие птицы заражают домашних уток, индеек, кур, что может приводить к возникновению вторичных очагов орнитоза в птицеводческих хозяйствах. Заражение происходит при контакте с инфицированной птицей, пометом, выделениями дыхательных путей, пылью, пухом. Механизм передачи возбудителя преимущественно аэрозольный, фекально-оральный. Высокий риск заражения человека. Особенно лиц, постоянно контактирующих с птицами: работники птицефабрик, мясокомбинатов, фермеры и др.
Лаборатория проводит диагностические исследования для выявления генетического материала возбудителя орнитоза в биологическом материале от животных методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме «реального времени». Материал для исследования: мазки с конъюнктивы, мазки из клоаки, мазки со слизистой оболочки глотки, тканевой материал (фрагменты органов), помет птиц.

Основная угроза охратоксина A состоит в его негативном воздействии на почки (нефротоксичности). Весьма чувствительны к нему оказались собаки, у которых даже небольшие дозы охратоксина А вызывают смертельные поражения почек (LD₅₀ охратоксина A для них составляет 0,2 мг/кг перорально). Крайне опасен этот яд и для домашней птицы (LD₅₀ — 3,3 мг/кг), у которой он вызывает также нарушения свертываемости крови и синдром плохого усвоения корма («синдром бледной птицы»). Охратоксин А также снижает темпы роста и ухудшает продуктивность свиней и лошадей, но малоопасен для жвачных благодаря расщеплению в рубце. Очень чувствительны к охратоксину А рыбы.
Охратоксин A способен повреждать нервную систему, подавлять иммунитет, вызывать мутации ДНК и приводить к возникновению опухолей. Этот микотоксин негативно влияет на мужскую репродуктивную систему. Также известно, что охратоксин А может проникать через плаценту, что означает, что он может воздействовать на эмбрионы.
В отделе химических исследований массовую долю охратоксина А определяют методом ВЭЖХ по ГОСТ 32587-2013 Зерно и продукты его переработки, комбикорма. Определение охратоксина А методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (метод А). Метод основан на экстракции охратоксина A из анализируемой пробы продукта подкисленным хлороформом, скрининге проб, которые могут содержать охратоксин A, очистке их экстрактов методом колоночной хроматографии на силикагеле и определении массовой доли охратоксина A с применением ВЭЖХ с флуориметрическим детектированием.

За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 2104 пробы материала, проведено 2125 исследований, выявлено 15 положительных случаев.

Бактериологическое исследование колибактериоза

Первый день - посевы из паренхиматозных органов, костного и головного мозга, брыжеечных лимфатических узлов, соскобов со слизистой тонкого кишечника павших и убитых животных делают на подсушенную среду Эндо или Левина, а также на плотную среду с сорбитом (сорбитолом) для обнаружения эшерихий сероваров 0157:Н7 и 0157:Н-. Посевы проводят путем проведения разрезанной поверхности кусочка органа (из предварительно профламбированного участка) по поверхности питательной среды или отпечатков разрезанной поверхности органа. Кровь, костный мозг, желчь наносят на поверхность среды пастеровской пипеткой и равномерно растирают их стеклянным шпателем.
При исследовании трупов птиц посевы делают из крови сердца, легких, печени, костного или головного мозга на среду Эндо или Левина. От погибших поросят-отъемышей с признаками отечной болезни или диареи проводят посевы суспензии из соскобов со слизистой оболочки пораженного участка тонкого кишечника, регионарных брыжеечных лимфатических узлов и паренхиматозных органов.
Каждую пробу фекалий (не более 0,5 г) от больных диареей или соскобов со слизистой кишечника погибших животных,
взятую стерильным скальпелем, помещают в отдельную пробирку, содержащую 10 см³ стерильного 0,85%-ного раствора хлорида натрия; тщательно размешивают стеклянной палочкой и выдерживают 10-15 минут при комнатной температуре для осаждения крупных частиц. Надосадочную жидкость засевают бактериологической петлей частыми, широкими штрихами на поверхность плотной селективной среды в чашках с целью получения роста изолированных колоний бактерий.
Перед посевом материала на среду Эндо или Левина ее поверхность орошают 1-2 см³ 96° спирта-ректификата для задержки роста роящейся формы протея. Невпитавшийся спирт отсасывают пастеровской пипеткой при наклонном положении чашки, после чего среду подсушивают в термостате в течение 10-15 мин, а затем используют для посева. Засеянные чашки помещают в термостат (37°С) на 18-24 часа.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 707 исследований.
Ящур - острое вирусное заболевание из группы зоонозов, характеризующееся интоксикацией и везикулёзно-эрозивным (пузырьково-язвенным) поражением слизистых оболочек ротовой и носовой полости, а также кожи межпальцевых складок и околоногтевого ложа.
Возбудителем ящура является РНК-содержащий вирус семейства Picomaviridae рода Aphtovirus, который отличается значительной антигенной вариабельностью. Существует семь типов вируса: О, А, С, Sat-1, Sat -2, Sat -3, Азия-1 и их варианты (топотипы и генетические линии). Восприимчивые животные, переболевшие ящуром, вызванным вирусом одного типа, могут заболевать ящуром, вызванным вирусом другого типа.
Ящур широко распространён среди животных (крупный рогатый скот, свиньи, козы, овцы, олени). Могут болеть лошади, верблюды, собаки, кошки и грызуны. Ящуром болеет и человек. Основной путь инфицирования людей — через сырое молоко больных животных и продукты его переработки, реже через мясо. У лиц, непосредственно контактирующих с больными животными, возможна прямая передача при доении, уходе, лечении, убое, воздушно-капельный путь заражения при дыхании, кашле животных, а также через предметы, загрязнённые их выделениями.
В лаборатории исследования материала проводятся с использованием следующих методов: полимеразной цепной реакции и иммуноферментного анализа.
Для выявления РНК вируса ящура методом ПЦР направляется материал:
- Мазки и смывы из глотки берут сухими ватными зондами. Зонд с материалом помещают для транспортировки в пробирки со стерильным физиологическим раствором.
- Выделения из носа и рта собирают в стерильную тару, в количестве не менее 0,3-0,5 мл.
- Отбор пищеводно-заглоточной жидкости проводят при помощи пищеводно-глоточного зонда (у свиней мазок из зева). Отобранная жидкость должна содержать некоторое количество клеточного материала, видимого невооруженным глазом, но не должна содержать пищевых масс.
- Тканевый материал (внутренние органы, мышцы, афты, соскобы с кожи, пищевые продукты, молоко) помещают в стерильные контейнеры.
- Кровь забирается в пробирку с антикоагулянтом (ЭДТА), закрытую пробирку с кровью несколько раз переворачивают. Для получения сыворотки забирают кровь в пробирку без антикоагулянта.
- Смывы с поверхностей (внутрилабораторных, с поверхностей тары, кормушек, мест содержания животных и др.) отбирают в стерильную тару с 0,5 мл физиологического раствора.
При отборе материала для ПЦР-исследования важно учитывать тропность возбудителя к определённому виду эпителия или среде.
Полученные образцы можно транспортировать и хранить в следующих режимах:
- при температуре от 2 до 8°С – в течение суток;
- при температуре не выше минус 18°С – в течение 2 недель;                                       
- при температуре не выше минус 68°С – длительно.
Допускается однократное замораживание-оттаивание материала.
Методом ИФА выявляются антитела к неструктурным белкам вируса ящура (основной метод серологического мониторинга отсутствия вирусной инфекции в вакцинированных и невакцинированных  стадах, ретроспективной диагностики заболевания) и выявляются антитела к структурным белкам (серотипоспецифическим, определяющим антитела, индуцированные при вакцинации или инфекции).                          

Определение массовой доли общего фосфора в мясной продукции

Фосфор – элемент с порядковым номером 15. Фосфор – основной компонент всех растительных и животных клеток и, следовательно, присутствует во всех пищевых продуктах. В целом продукты, богатые белком, также богаты и фосфором. Мясо, птица, рыба, яйца, молоко и зерновые продукты являются хорошими источниками фосфора.
Этот элемент входит в состав белков, фосфолипидов, нуклеиновых кислот. Кроме пластической роли, соединения фосфора принимают участие в обмене энергии.
Фосфаты - смеси различных солей фосфорной кислоты, предназначенные для регулирования функционально - технологических свойств мясных эмульсий и действуют как синергисты поваренной соли. Фосфаты, вызывая изменение рН среды, повышая ионную силу растворов и, связывая Са в системе актомиозинового сокращения, обеспечивает интенсивное набухание мышечных белков, увеличивают уровень водосвязывающей и эмульгирующей способности, повышают вязкость фарша, тормозят окислительные процессы в жире.
В отделе химических исследований массовую долю фосфора определяют спектрофотометрическим методом по ГОСТ 32009-2013 Мясо и мясные продукты.
Метод основан на высушивании навески, озолении остатка с последующим охлаждением и гидролизом золы азотной кислотой, фильтровании, разбавлении фильтрата смесью монованадата аммония и гептамолибдата аммония с образованием соединения желтого цвета и фотометрическом измерении оптической плотности при длине волны 430 нм.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 576 проб материала, проведено 649 исследований, выявлено 3 положительных случая.

Прижизненная диагностика сальмонеллеза (исследование фекалий).

Первый день исследования (посев материала на питательные среды). Фекалии засевают в чашки Петри с плотными дифференциальными средами (Эндо, Плоскирева, Левина, висмут-сульфитный агар).
Необходимым условием для получения изолированных колоний является отсутствие конденсата на поверхности питательной среды, что достигается разливом среды, охлажденной до температуры 50°С, и ее подсушиванием. Готовить среду лучше накануне.
Одновременно проводят посев фекалий в среды обогащения (селенитовая, Кауфмана или Мюллера), при этом соблюдают соотношение посевного материала к среде 1:5.
Засеянные чашки и пробирки помещают в термостат при температуре 37°С на 18 - 20 часов.
Учитывая возможность неудачи первичного посева (отсутствие роста или сплошной рост), материал хранят в холодильнике, пока не будут просмотрены чашки с посевами.
Второй день исследования. Через 18 - 24 ч просматривают посевы на чашках Петри и отбирают подозрительные колонии, а также делают высев из сред обогащения на чашки Петри с плотными дифференциальными средами.
При обнаружении на чашках роста типичных колоний изучают 2 - 3 колонии, а при наличии подозрительных колоний изучают 3 - 5 колоний с каждой чашки. Изучаемые колонии снимают и пересевают в пробирки на трехуглеводную среду с мочевиной (рецепт среды см. в приложении) или короткий цветной ряд (среды Гисса с глюкозой, лактозой, сахарозой, маннитом) и МПА. На трехуглеводную среду с мочевиной посев делают сначала штрихом по скошенной поверхности, а затем уколом в глубину столбика.
Одновременно может быть проведена предварительная реакция агглютинации с сальмонеллезными агглютинирующими сыворотками.
Третий день исследования. Изучают выделенные культуры по биохимическим свойствам, просматривают чашки Петри с посевами из сред обогащения и отбирают подозрительные колонии, которые пересевают на трехуглеводную среду с мочевиной.
Если характерных и подозрительных колоний нет в чашках с прямыми посевами, а также в чашках с высевом из сред обогащения, дают ответ об отрицательном результате исследования.
Четвертый день исследования. Проводят учет ферментативной активности культур, пересеянных с трехуглеводной среды с мочевиной, и серологическое исследование их. Таким образом, на четвертый день заканчивают исследование культур, выделенных из первичного посева.
В тех случаях, когда сальмонелл из первичных посевов не выделено, проводят идентификацию культур, высеянных накануне на трехуглеводную среду с мочевиной, по ферментации лактозы, сахарозы, глюкозы и мочевины. При подозрении на наличие сальмонелл делают пересев на цветной ряд, а также в МПБ или 1%-ную пептонную воду для определения сероводорода и индола.
Пятый день исследования. Проводят учет биохимических и серологических свойств культур, пересеянных накануне с трехуглеводной среды с мочевиной.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 646 исследований.

Грипп птиц - высококонтагиозная вирусная болезнь птиц, характеризующаяся поражением кровеносной и центральной нервной систем, органов дыхания, пищеварения, выделения и яйцеобразования. Возбудителем болезни является РНК-содержащий вирус, относящийся к семейству ортомиксовирусов, роду вируса гриппа А, а также его серотипы Н5, Н7 и Н9 в независимо от их патогенности.
Характерными клиническими признаками вируса гриппа птиц являются снижение продуктивности, угнетенное состояние, отказ от корма и воды, взъерошенность оперения, цианоз кожных покров, отек межчелюстного пространства, наличие подкожных кровоизлияний на конечностях, нарушение координации движений, синусит, ринит, конъюнктивит, диарея. Возможно бессимптомное течение болезни у вакцинированных против гриппа птиц, а также у диких водоплавающих птиц. Характерными патологоанатомическими изменениями являются кровоизлияния в подкожной клетчатке, слизистых и серозных оболочках, головном мозге, паренхиматозных органах, застойная гиперемия в органах и тканях.
Лабораторные исследования проб биологического, патологического материала проводятся с использованием методов исследования: выделение возбудителя с использованием вирусологического метода исследований на свободных от специфических патогенов, развивающихся эмбрионах кур или в чувствительной культуре клеток с его идентификацией в реакции торможения гемагглютинации, выявление генетического материала возбудителя методом полимеразной цепной реакции, выявление антигена возбудителя методами иммуноферментного анализа и в реакции диффузионной преципитации, выявление антител к возбудителю серологическими методами РТГА, ИФА, РДП.
Для выявления вируса гриппа птиц методом ПЦР в лаборатории направляют биологический  материал (трахеальные (ротоглоточные), клоакальные смывы (мазки), сыворотка крови, сборные пробы помет). Патологический материал (от трупов птиц отбирается: головной мозг, селезенка, трахея, легкие, сердце, почки, участки кишечника вместе с содержимым, перевязанные лигатурами). Участки кишечника отбираются отдельно от других внутренних органов. Допускается направление трупов птиц целиком. Так же проводятся исследования пищевой продукции, кормов с целью выявления вируса гриппа птиц.