Отчетный период с 04.05.2026г. по 07.05.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 7610 проб сыворотки крови животных, проведено 14574 исследований. Выявлено: 473 серопозитивные пробы по лейкозу крупного рогатого скота, 48 положительно-реагирующих проб по лептоспирозу у лошадей.
Бруцеллез (Brucellosis) — инфекционная, хронически протекающая болезнь домашних, некоторые виды диких животных и человека, характеризующаяся поражением многих систем жизнеобеспечения, нарушением функций сосудистой, пищеварительной, мочеполовой систем и системы воспроизводства. Длитльность инкубационного периода 2 – 3 недели. Первым показателем развившегося инфекционного процесса служит появление в крови инфицированных животных агглютининов в постепенно нарастающих титрах.
У коров основным клиническим признаком бруцеллеза является аборт и реже рождение нежизнеспособного приплода. Коровы, заразившиеся до покрытия, в большинстве случаев приносят нормальный приплод. Аборт чаще всего происходит на 5 – 8-м месяце. За 1 – 2 дня до наступления аборта у коров отмечается припухание наружных половых органов, выделение из влагалища бесцветной или буроватой жидкости и набухание вымени. После аборта происходит задержка последа и развивается эндометрит, сопровождающийся обильными слизисто-гнойными или гнойно-фибринозными выделениями. При тяжело протекающем эндометрите повышается температура тела, снижаются удои, отмечается потеря веса, убыстряется СОЭ; умеренный лейкоцитоз. Эндометритам нередко сопутствуют серозные или серозно-катаральные маститы. В процессе могут вовлекаться яичники и фаллопиевы трубы, что приводит к нарушению полового цикла и временному или стойкому бесплодию. У отдельных животных в связи с абортом или независимо от него можно наблюдать развитие серозных бурситов или серофибринозных артритов. Последние в большинстве случаев возникают в суставах передних конечностей — запястном, путовом, коленном, локтевом. У быков бруцеллез, хотя и редко, сопровождается развитием орхитов и эпидидимитов.
Лабораторная диагностика бруцеллеза основана на результатах бактериологического и серологического исследований. В лабораторию направляются пробы крови (сыворотки) для серологического исследования, абортивный плод с плодными оболочками, околоплодную жидкость, истечения из родовых путей или желудок плода, кусочки печени, селезенки, пробы молока (последние порции). При убое животных берут паренхиматозные органы, лимфатические узлы, пораженные суставы, у самцов — семенники. Объектом исследования могут быть молочные продукты (брынза, сыр, масло), объекты внешней среды.
При массовых диагностических исследованиях ставят пробирочную РА, роз бенгал пробу (РА на стекле), РСК, РДСК, кольцевую реакцию с молоком (КР).
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 45 проб, проведено 282 исследования.
В трех пробах молока сырого коровьего массовая доля белка - 1 ниже нормы,
кислотность - 2 выше нормы, массовая доля сухого обезжиренного молочного остатка (СОМО) - 1 ниже нормы.
Афлатоксин М1
Афлатоксины — продукты жизнедеятельности грибов рода Aspergillus (Афлатоксины В1, В2, G1 и G2). Афлатоксин B1 является токсичным вторичным метаболитом, продуцируемым несколькими штаммами Aspergillus, в основном Aspergillus flavus и Aspergillus parasiticus.
Эти смертельно опасные микотоксины устойчивы к тепловой обработке и не чувствительны к органическим растворителям. Самым опасным и распространенным афлатоксином является афлатоксин B1. При попадании его с кормом дойным коровам в молоке может образовываться его метаболит – афлатоксин М1. Он обнаруживается не только в цельном молоке, но и в восстановленном, в твороге, сырах и йогуртах. Загрязненная им молочная продукция экологически опасна для человека. Это один из самых сильных природных ядов, устойчивый к нагреванию, который может вызывать онкологические заболевания и поражать иммунную систему, а его определение в продуктах проводится специализированными лабораторными методами. Афлатоксины B1 и M1 обладают сильнейшим канцерогенным, тератогенным и мутагенным действием.
Основное влияние они оказывают на печень, а также на почки и головной мозг. Они являются иммуносупрессантами: подавляют фагоцитоз и синтез белка путем нарушения выработки белков рибосом, ДНК и РНК. Кроме того, нарушается всасывание аминокислот, что приводит к увеличению времени задержки аминокислот в печени. Большинство ученых считают, что перенос афлатоксина в молоко составляет от 1 до 3%, в среднем — около 1,7%. Этот показатель отличается у разных животных и зависит от таких физиологических факторов, как скорость переваривания, состояние здоровья, период лактации и других. Ввиду токсических свойств афлатоксина М1 его содержание в сыром молоке и молочных продуктах подлежит обязательному контролю.
В отделе химических исследований массовую долю афлатоксина М1 определяют методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (далее — ВЭЖХ) с использованием жидкостного хроматографа с флуориметрическим (спектрофлуориметрическим) детектированием.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 736 проб материала, проведено 774 исследования, выделено 4 положительных случая.
Цистицеркоз (финноз) крупного рогатого скота - это заболевание, вызываемое личиночной стадией бычьего цепня из семейства Taeniidae, характеризуется острым или хроническим течением, которое возникает в результате поражения мышечной ткани личинками (цистицерками). Возбудитель: Cysticercus bovis — это пузырь серовато-белого цвета, овальной формы, длиной 5–9 мм и шириной 3–6 мм. Внутри пузыря находится прозрачная жидкость, а на внутренней стенке пузыря располагается головка с четырьмя присосками (невооруженный сколекс). Бычий цепень может достигать длины более 10 метров, с шириной зрелых члеников 12–14 мм. В каждом членике содержится около 175 тысяч яиц.
Цикл развития: бычий цепень является биогельминтом, где человек выступает в качестве дефинитивного хозяина. Цепень локализуется в тонком кишечнике человека, где созревает, а зрелые членики отрываются и выделяются с фекалиями. Яйца, попадая в окружающую среду, могут переноситься на значительные расстояния.
Промежуточные хозяева — крупный рогатый скот, буйволы, зебу, яки и северные олени. Заражение происходит при поедании яиц и члеников гельминта на пастбищах.
Личинки могут жить в организме животных около трех лет, но дегенерация может начаться уже через 4 недели после заражения.
У человека заражение происходит при употреблении недостаточно обработанного мяса, содержащего цистицерки. В кишечнике под воздействием желчи и кишечных соков цистицерки выворачивают сколекс и прикрепляются к слизистой тонкой кишки. Личинка быстро растет и достигает половой зрелости за 2,5–3 месяца, после чего начинает выделять зрелые членики и яйца.
К основным мерам предупреждения финноза относятся:
- строгий ветеринарно-санитарный контроль на мясокомбинатах, бойнях и рынках, исключающий проникновение в торговую сеть необезвреженного мяса;
- мероприятия по своевременному выявлению и лечению больных;
-соблюдение основных санитарно-гигиенических норм содержания сельскохозяйственных животных;
- широкая санитарно-просветительная работа с населением.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 693 исследования.
Сырое молоко - свежеполученное молоко, не подвергавшееся тепловой обработке при температуре более чем 40 °C.
Сырое молоко должно быть получено от здоровых сельскохозяйственных животных на территории, благополучной в отношении инфекционных и других общих для человека и животных заболеваний. Не допускается использование в пищу сырого молока, полученного в течение первых семи дней после дня отёла животных и в течение пяти дней до дня их запуска, а также от больных животных и находящихся на карантине животных. Уровни содержания потенциально опасных веществ (антибиотиков), микроорганизмов и соматических клеток не должны превышать допустимые уровни, установленные Техническим регламентом Таможенного союза "О безопасности пищевой продукции" (ТР ТС 021/2011) и Техническим регламентом Таможенного союза «О безопасности молока и молочной продукции» (ТР ТС 033/2013).
Содержание микроорганизмов в сыром молоке отражает уровень гигиены получения молока, особенно степень чистоты доильных установок, условия его хранения и транспортирования. Пути обсеменения молока микроорганизмами: эндогенный (молоко обсеменяется микроорганизмами непосредственно в вымени животного, как естественной микрофлоры, так и патогенными) и экзогенный (обсеменение происходит из внешних источников: кожи животного, подстилочных материалов, кормов, воздуха, воды, доильной аппаратуры и посуды, рук и одежды работников молочной фермы).
Контроль качества и безопасности сырого молока:
1.Определение количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов (КМАФАнМ). Метод основан на подсчёте колоний микроорганизмов, вырастающих на твёрдой питательной среде при температуре (30±1)°С в течение 72часов.
2.Определение патогенных микроорганизмов, в том числе сальмонеллы. Метод исследования проводится в 4 этапа:
а) посев 25см3 сырого молока в питательную среду предварительного обогащения с последующей инкубацией при температуре 37°C в течение 16-20 ч;
b) посев полученной культуры в жидкую селективную среду обогащения с последующей инкубацией при температуре 41,5°C в течение 48 ч;
c) посев полученной культуры на твердые селективные среды с последующей инкубацией при температуре 37°C в течение 24-48 ч. и идентификация выросших колоний;
d) подтверждение биохимическими и серологическими испытаниями колоний предполагаемых сальмонелл.
3.Содержание соматических клеток (клетки эпителия молочной железы, лейкоциты). Визуальный метод определения соматических клеток по изменению вязкости основан на воздействии поверхностно-активного вещества препарата "Мастоприм" на клеточную оболочку соматических клеток, приводящем к нарушению ее целостности и выходу содержимого клеток во внешнюю среду. При этом изменяется вязкость (консистенция) сырого молока, что оценивают визуально. Молоко с повышенным содержанием соматических клеток может иметь повышенную бактериальную обсеменённость-один из показателей наличия воспалительного процесса в молочной железе (мастита).
4.Антибиотики - остаточные количества лекарственных препаратов, которые могут попадать сырое молоко при лечении сельскохозяйственных животных или из других источников. Их наличие в молочной продукции влияет на безопасность здоровья человека и технологический процесс производства молока питьевого и молочных продуктов.
Отчетный период с 24.04.2026г. по 30.04.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 4076 проб сыворотки крови животных, проведено 11607 исследований. Выявлено: 91 серопозитивная проба по лейкозу, 15 положительно-реагирующих проб по лептоспирозу у крупного рогатого скота, 40 положительно-реагирующих проб по лептоспирозу мелкого рогатого скота, 66 положительно-реагирующих проб по лептоспирозу у лошадей.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 47 проб, проведено 367 исследований.
В одной двух пробах молока сырого коровьего массовая доля белка - 2 ниже нормы, массовая доля жира - 1 ниже нормы.
Содержание белка в молоке коровьем
Молоко коров – это натуральный кладезь полезных веществ и микроэлементов. Оно богато белками, жирами, лактозой, витаминами, полезными солями, ферментами и многими другими необходимыми элементами. В цельном молоке коров в среднем содержится: белков – 3,2 %, жиров – 3,8 %, лактозы – 4,8 %, полезных макро- и микроэлементов – около 1 %, что в совокупности составляет около 13 % сухих веществ. Усвояемость человеческим организмом белка, жира и лактозы варьируется от 95 % до 98 % в зависимости от состава.
Особую ценность в наше время приобретает повышенное содержание белка в цельном молоке. Так, в странах с высокоразвитым молочным животноводством до 60 % стоимости производимого молока зависит от уровня содержания в нем белка.Содержание белков в коровьем молоке варьируется от 2,8 % до 3,6 %. Имеется прямая зависимость уровня жира в молоке от процента содержания в нем белка, то есть чем выше насыщенность белком, тем жирнее молоко.
Содержание белка в молоке зависит как от генетических особенностей породы (примерно 50%), так и от условий содержания и питания коров (около 40%). Ключевые аспекты, влияющие на качество молока:
- Качество корма и его энергетическая ценность.
- Здоровье и благополучие животных.
- Условия содержания и сезонные изменения.
Для улучшения качества молока необходимо обеспечить коровам доступ к высококачественным кормам, таким как льняной и подсолнечный жмых, сено из бобово-злаковых культур. Следует воздержаться от кормления животных излишне измельченными кормами, а также ограничивать содержание сена в рационе
В отделе химических исследований массовую долю белка определяют методом Кьельдаля. Метод основан на минерализации пробы молока концентрированной серной кислотой в присутствии окислителя, инертной соли — сульфата калия и катализатора –сульфата меди. При этом аминогруппы белка превращаются в сульфат аммония, растворенный в серной кислоте.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1540 пробы материала, проведено 1610 исследований, выявлен 1 положительный случай.
ГОСТ 26503-85. Животные сельскохозяйственные. Методы лабораторной диагностики клостридиозов. Проведение исследования.
Из отобранных проб патологического материала делают мазки-отпечатки, которые окрашивают по Граму. Присутствие многочисленных грамположительных палочек и спор позволяет предположить наличие возбудителей клостридиозов.
Из отобранных проб патологического материала делают посевы в жидкую питательную среду, используемую для культивирования анаэробных микроорганизмов, а также в МПБ и на МПА. Перед посевом пробирки и флаконы с МППБ выдерживают в кипящей водяной бане в течение 15-20 мин для удаления растворенного в среде воздуха, а затем охлаждают их путем постепенного добавления холодной воды в водяную баню. Посевы выдерживают в термостате при температуре 37-38 °С в течение 24-48 ч. При подозрении на столбняк и ботулизм посевы делают в два флакона, один из которых прогревают при 80 °С в течение 1 ч и инкубируют в течение 2-5 суток.
При появлении характерных признаков роста (помутнение среды, газообразование) делают дробный посев полученных культур на 3-5 чашек Петри с мясо-пептонным печеночным агаром, в который добавляют 0,5 % глюкозы и 5 % стерильной дефибринированной крови барана к объему среды. Чашки помещают, не переворачивая, в микроанаэростат или эксикатор, из которого удаляют воздух при помощи вакуум-насоса, и выдерживают в термостате при температуре 37-38 °С в течение 12-48 ч. Полученные отдельные колонии, которые по структуре напоминают колонии клостридий, определяют по формам роста по Цейсслеру и отсевают в жидкие питательные среды, которые инкубируют при температуре 37-38 °С в течение 24-48 ч.
При получении второй генерации посев делают также на среды, предназначенные для культивирования аэробной микрофлоры (МПБ, МПА). Для дальнейшей работы отбирают культуры, которые не дают роста в контрольных посевах (МПБ, МПА).
Для ускорения работы допускается посев проб патологического материала на твердые питательные среды в чашках Петри. Дальнейший отбор выросших колоний проводят так же, как и при пересеве с жидкой питательной среды.
Патологический материал очищают путем пассажа через морскую свинку. Для этого измельченный в ступке материал или первичный посев материала в
жидкой питательной среде вводят подкожно в области брюшных мышц или внутримышечно морской свинке массой 350-450 г в объеме 0,5-1,0 см3.
Животных, павших в течение 72 ч, вскрывают, учитывают патологоанатомическую картину. Из места введения, крови, взятой из сердца и печени, делают посевы в жидкие и на твердые питательные среды, а также мазки-отпечатки с мест посева и диафрагмальной поверхности печени.
В качестве дополнительных тестов для идентификации культур Cl. chauvoei и Cl. septicum используют результаты исследования мазков-отпечатков с диафрагмальной поверхности печени морских свинок: при наличии Cl. septicum обнаруживают удлиненные формы в виде нитей, Cl. chauvoei — одиночные короткие палочки. Заражение кроликов культурой Cl. chauvoei не вызывает их гибели.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 375 исследований.
Болезнь Ауески, псевдобешенство, инфекционный бульбарный паралич, инфекционный менингоэнцефалит – остро протекающая болезнь многих видов домашних и диких животных, проявляющаяся расстройством ЦНС, сильным зудом и расчёсами (у всех животных, кроме свиней и пушных зверей). У свиней болезнь обычно протекает в виде лихорадки, а у молодняка сопровождается судорогами, параличами, гибелью животных. Возбудителем заболевания является герпесвирус Suid herpesvirus.
В естественных условиях вирус болезни Ауески поражает крупный рогатый скот, оленей, овец, свиней, лошадей, кошек, собак, лисиц, норок, волков, медведей, ежей, грызунов, птиц и т. д., однако чувствительность к нему животных разных видов неодинакова. Из домашних животных наиболее восприимчивы свиньи, крупный и мелкий рогатый скот, собаки и кошки. Болезнь протекает у них в тяжёлой форме и почти всегда завершается гибелью. Лошади, ослы, мулы восприимчивы в меньшей степени. Из пушных зверей чаще болеют норки. Источником возбудителя служат больные животные и вирусоносители, фактором передачи – молоко.
Вирусоносителями могут быть свиньи (до 140 дней, установлены случаи вирусоносительства до 6 месяцев), а также крысы (до 130 дней). С возрастом животных длительность вирусоносительства увеличивается.
В естественных условиях животные заражаются преимущественно алиментарно. Алиментарный путь заражения – это способ передачи возбудителей болезней через пищеварительный тракт. Возбудители попадают в организм животного с кормом, водой, мясом или промежуточными хозяевами. Среди грызунов инфекция распространяется в результате каннибализма. Контактное заражение через повреждённую кожу отмечено при стойловом содержании.
В свиноводческих хозяйствах болезнь быстро распространяется – за 8-10 дней охватывает 60-80 %, иногда до 100 % поголовья. Эпизоотия по времени продолжительная. У пушных зверей эпизоотия более кратковременная, связана с поступлением инфицированного корма. У крупного рогатого скота и овец отмечают спорадические случаи болезни, хотя у последних она может протекать в виде эпизоотии. У грызунов эпизоотия достаточно продолжительная. Нередко гибель грызунов, собак, кошек предшествует появлению болезни Ауески среди сельскохозяйственных животных. Для болезни характерна стационарность – животные болеют на протяжении нескольких лет.
Развитие болезни Ауески имеет некоторые особенности в зависимости от вида и возраста животного, степени поражения ЦНС, путей проникновения, длительности вирусемии – первой стадии развития болезни. Размножаясь в крови, вирус оказывает действие на клетки стенок кровеносных сосудов, обусловливая в конечном итоге явления отёка и геморрагического диатеза в разных органах и особенно в головном мозге. Это сопровождается появлением нестерпимого зуда у животных большинства видов.
У свиней, напротив, изменения чаще локализуются в лёгких и брюшной полости и реже – в ЦНС, это связано с тем, что вирус редко проникает через гематоэнцефалический барьер. Именно поэтому у взрослых свиней клинические симптомы, свидетельствующие о тяжёлом поражении нервной системы, как правило, отсутствуют, также, как и зуд.
Инкубационный период болезни длится от 2 до 20 дней.
Для крупного рогатого скота характерны утрата аппетита, снижение удоя, повышение температуры тела до 40,9-41,9 °C в течение 2-3 первых дней болезни. Животное непрерывно лижет зудящие места, трётся об окружающие предметы. Шёрстный покров на этих местах выпадает. Регистрируют кашель, слезотечение, слизистые истечения из носа, выпадение третьего века, судороги мышц в области живота и шеи, возбуждение. Животное испугано, мычит, рвётся с привязи, бросается на стены, изгороди, натыкаясь на них. Иногда падает, бьётся, после чего наступают оцепенение, угнетение, судороги. Агрессивность не выражена. Позывы к мочеиспусканию болезненные, отмечается жажда, но паралич не позволяет больному животному пить.
Гибель наступает через 72-84 ч. Выздоровление отмечают редко.
Отчетный период с 10.04.2026г. по 16.04.2026г.
Возбудитель обладает устойчивостью к факторам внешней среды и дезинфицирующим средствам. Основными факторами вирулентности являются эндотоксины.Клинические признаки болезни: периодическая диарея, переходящая в постоянную, отеки век, межчелюстного пространства, области подгрудка и нижней части живота, обезвоживание, прогрессирующее истощение, атрофия мышц в области крупа и задних конечностей, дугообразное изгибание позвоночника, паралич сфинктера прямой кишки. Возможно бессимптомное течение болезни.
Диагноз на паратуберкулез устанавливают на основании результатов клинического осмотра животных, аллергического, серологического, бактериоскопического, патологоанатомического или гистологического методов исследования с учетом эпизоотологических данных.
В серологическом отделе для диагностики паратуберкулеза животных проводят реакцию связывания комплемента (РСК). Сущность данной реакции заключается в выявлении комплементсвязывающих антител в сыворотке крови животных, инфицированных микобактериями паратуберкулеза.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 42 пробы, проведено 217 исследований.
В пробах лука репчатого свежего и огурцов свежих массовая доля нитратов - 2 выше нормы.
Хлорорганические пестициды (ХОС) в пищевых продуктах
Хлорорганические пестициды – производные циклопарафинов, бензола, многоядерных циклические углеводородов и других веществ, содержащие хлор. Характеризуются высокой химической устойчивостью, медленно разрушаются во внешней среде, оставаясь там годами, разносятся на большие расстояния потоками воды и воздуха. Жирорастворимые хлорорганические пестициды передаются по пищевым цепочкам, причем в каждом последующем звене их концентрация возрастает примерно в десять раз.
Оказывают токсическое действие практически на все виды живых существ. В первую очередь, накапливаются в богатых жирами тканях. Поражают печень, почки, эндокринную, сердечно-сосудистую, центральную нервную системы, нарушают процессы тканевого дыхания, снижают иммунитет.
В отделе химических исследований остаточные количества хлорорганических пестицидов определяются методами газожидкостной и тонкослойной хроматографии.
Газожидкостная хроматография (ГЖХ) – это метода анализа, основанный на разделении компонентов смеси при прохождении их через колонку с неподвижной жидкостью и подвижной газовой фазой. Образец вводят в газовый поток, где компоненты движутся с различными скоростями в зависимости от их летучести и взаимодействия с неподвижной фазой. Метод позволяет разделить и количественно определить вещества в сложной смеси, даже если они сходны по химическим свойствам, и требует очень малых количеств веществ для анализа.
Таким образом, ГЖХ является одним из наиболее перспективных методов анализа, обеспечивая высокую точность и эффективность.
Тонкослойная хроматография (ТСХ) – это метод анализа, основанный на различии в скорости перемещения компонентов смеси в тонком слое сорбента при движении в потоке подвижной фазы. Разделяемые вещества адсорбируются на поверхности сорбента, что приводит к образованию зон адсорбции. Метод включает в себя подготовку образца, хроматографических пластин и хроматографической камеры, а также анализ и идентификацию компонентов.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1205 проб материала, проведено 1249 исследований, выявлено 3 положительных случая.
Оценка результатов бактериологического исследования колибактериоза.
Бактериологический диагноз на колибактериоз считается установленным в каждом из следующих случаев:
- выделения чистых культур эшерихий не менее чем из двух таких органов и тканей, как селезёнка, кровь сердца, костный мозг, головной мозг свежего трупа или убитого клинически больного животного, без определения их патогенности для белых мышей или цыплят и установления серогрупповой принадлежности;
- выделения из исследуемого материала культур эшерихий, содержащих какой-либо из следующих адгезивных антигенов: К88, К99, 987Р, F41, F18, A20;
- выделения из патологического материала культур эшерихий, относящихся к патогенным серогруппам или обладающих патогенностью для белых мышей или цыплят;
- выделения культур эшерихий от поросят-отъёмышей, погибших с признаками отёчной болезни, из содержимого тонкого отдела кишечника и брыжеечных лимфатических узлов, обладающих гемолитическими свойствами.
Результаты бактериологического исследования формулируют: "Из присланного материала (указать какого) выделен возбудитель колибактериоза" (указать тип адгезивного антигена или серогруппу в случае их установления) или "Из присланного патологического материала (указать какого) возбудитель колибактериоза не выделен".
Общий срок бактериологического исследования патологического материала - до 7 суток.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1199 исследований.
Органолептические исследования мяса в вакуумной упаковке — это оценка качества продукта с помощью органов чувств человека (зрение, обоняние, осязание). Такой метод позволяет определить свежесть, безопасность и потребительские свойства мяса, упакованного под вакуумом.
Основные показатели для органолептической оценки:
1. Внешний вид и цвет. Осмотр поверхности продукта, особое внимание уделяется цвету жира.
2. Консистенция. Определение на свежем разрезе продукта. При лёгком надавливании пальца образуется лунка, с последующим наблюдением за её выравниванием.
3. Запах (аромат). Сначала оценивается запах поверхностного слоя продукта, затем — в глубине мышечной ткани.
4. Состояние жира. Проверяется цвет, запах и консистенция жира (растирание кусочка жира между пальцами).
Показатели качества определяются сначала на целом (неразрезанном), а затем — на разрезанном продукте.
Условия проведения. Для органолептической оценки требуется специальное помещение с приточно-вытяжной вентиляцией.
Дегустаторы. Оценку проводят специалисты — дегустаторы, имеющие опыт работы с мясной продукцией. Они работают индивидуально и в составе дегустационной комиссии.
Методы оценки. Могут использоваться балльные системы (например, 5- или 9-балльные шкалы), описательный метод или ранговый метод (образцы располагают в ряд в порядке возрастания или убывания интенсивности какого-либо свойства).
Вакуумная упаковка способствует сохранению органолептических характеристик мяса дольше, предотвращая его высыхание и потерю аромата. Преимущества вакуумной упаковки:
1. Предотвращение окисления жиров. Создаётся безвоздушная среда, где процессы окисления останавливаются.
2. Сохранение естественного цвета. Процесс вакуумирования помогает сохранить привлекательный цвет мяса, что важно для его товарного вида.
3. Продление срока хранения. Охлаждённое мясо в вакуумной упаковке может оставаться свежим и безопасным для употребления до 2 недель в условиях промышленного холодильника. Сохраняется упругость мышечной ткани, отсутствуют признаки ослизнения.
Нормативные документы, регулирующие органолептическую оценку мяса:
ГОСТ 9959-2015 «Мясо и мясные продукты. Общие условия проведения органолептической оценки». ГОСТ 7269-2015 «Мясо. Методы отбора образцов и органолептические методы определения свежести». При проведении органолептических испытаний необходимо соблюдать требования безопасности и следовать установленным стандартам.
Отчетный период с 17.04.2026г. по 23.04.2026г.
За отчетный период в серологический отдел поступило 4616 проб сыворотки крови животных, проведено 10506 исследований. Выявлено: 150 серо-позитивных проб по лейкозу, 1 положительно-реагирующая проба по лептоспирозу у крупного рогатого скота, 19 положительно-реагирующих проб по лептоспирозу мелкого рогатого скота, 13 положительно-реагирующих проб по лептоспирозу у лошадей.
Сап – это контагиозное зоонозное, преимущественно хронически протекающее инфекционное заболевание, вызываемое бактерией Burkholderia mallei и протекающее по типу септикопиемии с образованием специфических гранулем и абсцессов (сапных узелков) и проявляющееся язвенным ринитом и лимфаденитом, гнойно-некротическими поражениями кожи.
В основном сап поражает лошадей, мулов, верблюдов и ослов. Заболевание может передаваться животным семейства кошачьих, бурым и серым медведям, а также человеку.
Впервые сап описал Аристотель в древней Греции в 4 веке до н.э. Долгое время сущность болезни оставалась неясной, из-за чего ее смешивали с мытом и эпизоотическим лимфангоитом.
В 1882 г. Ф. Леффлер и А. Шютц (Германия) открыли возбудителя болезни. В 1891 г.отечественные ветеринарные врачи Х.И. Гельман и О.И. Кальнинг изготовили из сапных культур диагностический препарат маллеин. Предлагали подкожный метод маллеинизации. И уже в 1907 г. К. М. Хороманским предложен глазной метод маллеинизации. Также в 1907г. А. Шютц и Шуберт предложили использовать для диагностики сапа РСК (реакция связывания комплемента).
До разработки методов специфической диагностики болезнь была широко распространена среди конского состава многих европейских и азиатских государств. До революции и в 1917-1924 гг. сап был широко распространен в России.
В 1924 г. доктор ветеринарной медицины С.Н. Вышелесский внедрил новый научно-обоснованный метод борьбы с сапом лошадей (клинический осмотр, ольфтальмомаллеинизация, РСК). Благодаря разработке противосапных мероприятий в первые годы Советской власти началась активная борьба по ликвидации сапа. В 1931 г. были созданы пункты концентрации лошадей-маллеинщиков. В результате этих мер сап был ликвидирован в СССР к 1940 г.
В последние годы болезнь регистрировалась в Монголии, Пакистане, Китае, Индии, Индонезии, Юго-Восточной Азии и других регионах. Поэтому в настоящее время опасность заноса инфекции в Россию из неблагополучных стран полностью не устранена.
Экономический ущерб. Сап в случае его появления наносит коневодству страны, а также отдельным коневодческим хозяйствам большой экономический ущерб. Отсутствие способов лечения больных лошадей и опасность данной инфекции для людей вынуждают уничтожать всех заболевших животных. К примеру, в России за период с 1908 по 1912 гг. было убито 100760 лошадей, больных сапом. Дополнительно большие расходы вызывают карантинные мероприятия.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 28 проб, проведено 149 исследований.
В одной пробе молока сырого коровьего кислотность - 1 выше нормы.
Кислотность – один из важнейших показателей качества молока, характеризующий свежесть молока, его пригодность к дальнейшей переработке и пастеризации, а также его сорт.
На кислотность влияет несколько факторов:
1) особенности животных (возраст, порода, наличие мастита, условия выпаса скота, рацион питания);
2) лактационный период (кислотность повышается после отела и понижается перед концом лактации);
3) соблюдение санитарно-гигиенических норм (кислотность повышается, если в молоке содержатся микроорганизмы).
Чем ниже показатель кислотности, тем более свежим является молоко. Молоко с высоким показателем кислотности при нагревании сворачивается быстрее, поэтому подлежит переработке на кисломолочные продукты. Такое молоко целесообразно перерабатывать в сыры, так как оно быстрее свертывается сычужным ферментом.
Активная кислотность характеризует количество ионов водорода и выражается в pH. Однако, согласно требованиям ГОСТ, для молока необходимо определять титруемую кислотность, которая выражается в градусах Тернера. Ее определяют путем титрования 100 мл молока раствором щелочи в присутствии индикатора фенолфталеина.
В отделе химических исследований кислотность определяется согласно ГОСТ 54669-2011 Молоко и продукты переработки молока. Методы определения кислотности, п. 7. Метод базируется на титровании молока раствором щелочи (гидроксидом натрия или калия) в присутствии индикатора фенолфталеина.
Необходимо отмерить 10 мл молока и добавить 20 мл дистиллированной воды и 3 капли 1%-ого раствора фенолфталеина. Вода необходима для того, чтобы отчетливее увидеть розовый оттенок при титровании. Получившуюся смесь перемешивают и титруют раствором 0,1н едкого натра до появления слабо-розового окрашивания, не исчезающего в течение 1 мин. Результат анализа получают путем расчета количества ушедшей на титрование щелочи, умноженного на 10.
Если молоко выдоено только что, оно имеет показатель кислотности 16-18 ºТ. Кислотность повышается уже через два часа, если молоко не подвергалось охлаждению. По мере развития микроорганизмов, происходит процесс сбраживания, соответственно, кислотность также повышается.
Повышение кислотности приводит к тому, что белки становятся менее устойчивыми к нагреванию, поэтому молоко с кислотностью 21 ºТ является несортовым, а при кислотности 22 ºТ уже находится на грани свежего и кислого и не подлежит сдаче на молочные заводы.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 624 пробы материала, проведено 655 исследований, выявлено 4 положительных случая.
ГОСТ 26503-85. Животные сельскохозяйственные.
Методы лабораторной диагностики клостридиозов. Метод отбора проб.
Для диагностических исследований при подозрении на инфекционные болезни клостридиальной этиологии направляют в лабораторию свежие трупы ягнят, поросят, птиц и пушных зверей в целом виде. От трупов телят и взрослых животных отбирают кусочки паренхиматозных органов (печень, селезенка, почки), кровь из сердца, неоткрытую трубчатую кость.
При подозрении на инфекционную энтеротоксемию животных и анаэробную дизентерию ягнят дополнительно берут отрезок тонкого отдела кишечника с содержимым, концы которого перевязывают шпагатом. При подозрении на ботулизм отбирают пробы кормов, содержимого желудка и кровь от больных животных. При подозрении на столбняк - раневой экссудат и кусочки ткани из глубины раны. При подозрении на эмфизематозный карбункул - кусочки пораженных мышц и отечный экссудат. При подозрении на некротический гепатит - кусочки печени с некротическими участками. При подозрении на брадзот - измененные участки сычуга и инфильтрат подкожной клетчатки. При подозрении на злокачественный отек - тканевой экссудат, кусочки пораженных мышц, и тканей, а при поражении половых органов - истечение из влагалища и кусочки органов.
Содержимое желудка и кишечника направляют в лабораторию после консервирования хлороформом (одна капля на 10 см3 патологического материала). Допускается пересылать неконсервированный патологический материал, а также консервированный в стерильном 30 - 40 % - ном растворе глицерина.
Отобранные пробы должны быть доставлены в лабораторию не позднее чем через 4 часа с момента гибели животного, а консервированные - в течение 1-2 суток.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 775 исследований.
Мастит животных – воспаление молочной железы, возникающее в ответ на действие болезнетворных факторов. Характеризуется патологическими изменениями как в тканях, так и в секрете молочной железы. Маститы наблюдаются у всех сельскохозяйственных животных, в любое время года. Мастит – одна из основных болезней, обусловливающая выбраковку коров. Кроме того, молоко коров, больных маститом, претерпевает значительные физико-химические изменения, вследствие чего становится непригодным для использования или малоценным продуктом питания.
Маститы могут возникать под влиянием разных факторов, действие которых проявляется в сочетании с многочисленными предрасполагающим к заболеванию условиями. В соответствии с этиологией все маститы можно разделить на две основные группы: инфекционные, возникающие в результате воздействия микроорганизмов на молочную железу, и неинфекционные, появляющиеся при физической и химической травме вымени, неправильном доении.
К предрасполагающим условиям развития маститов относятся нарушения зоотехнических норм (содержание, кормление, гигиена доения), общие заболевания животных, гормональные нарушения, наследственная предрасположенность, неисправная доильная аппаратура, непригодность отдельных животных к машинному доению. Маститы чаще встречаются у самок в возрасте старше 5 лет в период раздоя и запуска.
Важное значение в возникновении и развитии маститов имеют микроорганизмы. В подавляющем большинстве случаев бактерии или служат непосредственными возбудителями маститов, или осложняют их течение. Наиболее часто при маститах выделяют агалактийный и дисгалактийный стрептококки, золотистый стафилококк, кишечную и синегнойную палочки.
К неинфекционным причинам маститов относят травмы тканей вымени, трещины кожи и сосков, ранения и другие воздействия физических и химических факторов: раздражение тканей вымени кислотами и щелочами, острораздражающими мазями при втирании, ожоги, обморожения.
Причиной маститов может быть также неправильный запуск коров. Если доение прекращают при довольно большом удое, то в вымени появляются изменения, характерные для воспалительного процесса: уплотнения, краснота, болезненность, свернувшееся молоко.
К маститам предрасполагает также высокая молочная продуктивность животных, т. к. у высокомолочных коров более интенсивный обмен веществ, кроме того, их ткани вымени больше подвержены влиянию неблагоприятных факторов внешней среды и более чувствительны к раздражениям при доении. С возрастом предрасположенность к маститам увеличивается.
Отчетный период с 03.04.2026г. по 09.04.2026г.
ИНАН характеризуется сверхострым, подострым, хроническим и бессимптомным течением.Восприимчивые животные, больные ИНАН, остаются вирусоносителями пожизненно.
Возбудителем ИНАН является РНК-содержащий вирус семейства Retroviridae подсемейства Orthoretrovirinae рода Lentivirus.
Возбудитель устойчив к физико-химическим воздействиям. В моче, навозе возбудитель сохраняется до 75 суток, в кормах - до 270 суток.
Инкубационный период болезни составляет от 7 до 90 суток.
Передача возбудителя осуществляется трансмиссивным, ятрогенным, внутриутробным, половым, контактным и алиментарным путями.
В целях предотвращения возникновения и распространения ИНАН юридические лица, физические лица, являющиеся собственниками (владельцами) восприимчивых животных, обязаны:
- предоставлять по требованиям специалистов органов и организаций, входящих в систему Государственной ветеринарной службы Российской Федерации восприимчивых животных для осмотра;
- извещать в течение 24 часов специалистов госветслужбы о случаях заболевания или гибели восприимчивых животных, а также об изменениях в их поведении, указывающих на возможное заболевание;
- принимать меры по изоляции подозреваемых в заболевании восприимчивых животных, а также обеспечить изоляцию трупов восприимчивых животных;
- выполнять требования специалистов госветслужбы о проведении в личном подсобном хозяйстве, крестьянском-фермерском хозяйстве, хозяйстве индивидуального предпринимателя, организациях, в которых содержатся восприимчивые животные, противоэпизоотических мероприятий;
- соблюдать условия, запреты, ограничения в связи со статусом региона, на территории которого расположено хозяйство.
Комплектование хозяйств должно осуществляться здоровыми восприимчивыми животными из хозяйств, в которых отсутствовали случаи заболевания ИНАН в течение 90 календарных дней до дня вывоза-отправки из хозяйства. Поступившие в хозяйство восприимчивые животные должны содержаться обособленно от других восприимчивых животных в течение 30 календарных дней со дня ввоза с целью выявления клинических признаков, характерных для ИНАН.
От восприимчивых животных 6 месяцев и старше, используемых для племенных и рабоче-пользовательских целей, осуществляется отбор проб крови для лабораторных исследований не более чем за 30 календарных дней до дня вывоза-отправки из хозяйства. от спортивных лошадей - не более чем за 90 календарных дней до дня вывоза-отправки из хозяйства. Проводиться отбор проб крови для серологических исследований от восприимчивых животных старше 6-месячного возраста – 1 раз в год. В ГБУ «Оренбургская областная облветлаборатория» проводят реакцию диффузной преципитации (РДП) по Инструкции по применению набора инфекционной анемии лошадей.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 30 проб, проведено 154 исследований.
Определение жира в молоке и молочных продуктах
Содержание жира – один из основных показателей качества молока и молочных продуктов. Необходимо проводить анализ данного параметра, чтобы определить пищевую ценность продукта и исключить фальсификацию.
В отделе химических исследований для контроля жира в молоке и молочных продуктах используют кислотный метод.
Сущность метода. Еще одно название данного метода – метод Гербера. Его особенность заключается в том, что жир выделяется в градуированную часть жиромера под действием концентрированной серной кислоты и изоамилового спирта с последующим центрифугированием.
Ход анализа. В два чистых и сухих жиромера (бутирометра) добавляют пипеткой по 10 см3 серной кислоты, а затем по стенке вливают 10,77 см3 молока. После этого добавляют 1 см3 изоамилового спирта из автоматической пипетки. Необходимо следить, чтобы горло жиромера оставалось сухим. 
Уровень смеси должен быть установлен на 1-2 мм ниже горловины, поэтому допускается добавление дистиллированной воды. Жиромер закрывают пробкой и встряхивают до полного перемешивания содержимого. Затем жиромер помещают на 5 минут в водяную баню при температуре 65 ℃ (±2 ℃). После водяной бани жиромеры устанавливают в центрифугу симметрично друг напротив друга и оставляют центрифугировать на 5 минут. Затем снова помещают в водяную баню при такой же температуре на 5 минут. После этого жиромеры достают из водяной бани и производят отсчет жира по шкале. При отсчете жиромер держат вертикально, граница жира должна находиться на уровне глаз. Движением пробки устанавливают нижнюю границу столбика жира на нулевом или целом делении шкалы жиромера. От него отсчитывают число делений до нижней точки мениска столбика жира с точностью до наименьшего деления шкалы жиромера.
Граница раздела жира и кислоты должна быть резкой, а столбик жира прозрачным. При наличии «кольца» (пробки) буроватого или темно-желтого цвета, различных примесей в столбике жира или размытой нижней границы измерение проводят повторно.
За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1510 проб материала, проведено 1557 исследований, выявлено 8 положительных случаев.
Бактериологическое исследование колибактериоза.
Пятый день: проводят окончательный учёт результатов изучения ферментативных свойств культур, предварительный учёт результатов биопробы и определение серогрупповой принадлежности культур эшерихий с поливалентными и моновалентными О-колисыворотками в реакции агглютинации (РА) на стекле (в случае необходимости).
Для РА используют 2-3 культуры эшерихий на скошенном МПА, которые не агглютинировали с колисывороткой О157. С этих культур готовят суспензии в 0,85%-ном растворе хлорида натрия, переливают ещё в чистые сухие пробирки, устанавливают концентрацию бактерий 2-3 млрд микробных клеток/см 3, а затем часть суспензии (1,5-2 см 3) переливают ещё в одну чистую сухую пробирку. Пробирки с суспензиями одних и тех же культур бактерий маркируют одноименными номерами, после чего их подвергают термической обработке: прогреванию в водяной бане (100°С) в течение 1 часа (большую часть суспензии) и автоклавированию (меньшую часть суспензии) при 1 атм (121°С) в течение 2 часов с целью разрушения поверхностного термостабильного А-антигена, содержащегося у некоторых штаммов эшерихий серогрупп О8, О9, О101. РА с колисыворотками этих серогрупп ставят с прогретыми при 100°С и автоклавированными антигенами.
Шестой день: проводят предварительный учёт результатов биопробы, постановку пробирочной РА с антигенами эшерихий, давшими положительную реакцию в РА на стекле.
Седьмой день: окончательный учёт результатов определения патогенных свойств культур эшерихий в биопробе на мышах или цыплятах и серогрупповой типизации культур в пробирочной РА. Культуры, отнесённые к одной из патогенных серогрупп или вызывающие гибель двух и более мышей или цыплят, считают патогенными и признают возбудителями колибактериоза.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 505 исследований.
Репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС) - контагиозная вирусная болезнь свиней, характеризующаяся массовыми абортами свиноматок в конце срока супоросности, рождением нежизнеспособных поросят и поражением дыхательной системы. Возбудителем является РНК-содержащий вирус рода Arterivirus семейства Arteriviridae. Существует два основных генотипа вируса, различающихся по антигенам: 1тип (европейский) и 2 тип (североамериканский).
Характерные клинические признаками: угнетенное состояние, отказ от корма, повышение температуры тела, конъюнктивит, отек век, потеря зрения, поражение органов дыхания, цианоз ушей, хвоста, молочных желез, вульвы, поздние аборты, преждевременные опоросы или задержка опороса, рождение нежизнеспособного молодняка, молодняка с признаками уродства, гибель поросят на 2-7 сутки жизни, гибель поросят-отъемышей с признаками пневмонии и диареи. У хряков ухудшается качество спермы.
При возникновении подозрения на РРСС отбираются пробы биологического и (или) патологического материала: смывы из носа, носоглотки, плазма, сыворотка крови, ткани и органы павших животных (миндалины, селезенка, легкие и др.), сперма, плацента и плодовые оболочки от абортировавших животных или аборт плоды целиком, продукты питания (фарш, колбаса и т.п.).
Для исследования методом ПЦР используют следующий материал:
• Плазма крови, сыворотка крови. Кровь забирается в пробирку с антикоагулянтом (ЭДТА), закрытую пробирку с кровью несколько раз, переворачивают. Для получения сыворотки забирают кровь в пробирку без антикоагулянта.
• Мазки со слизистой носа и носоглотки берут сухими ватными зондами. Зонд с материалом помещают для транспортировки в пробирки со стерильным физиологическим раствором (конец отламывают, что бы, пробирку можно было закрыть).
• Сперму в объеме не менее 2 мл, в стерильную посуду.
• Плацента и плодовые оболочки от абортировавших животных берут на исследование целиком
• Фрагменты тканей и органов павших животных (миндалины, селезенка, легкие, печень и др.) отбирают в стерильный контейнер.
• Продукты питания (фарш, мясные полуфабрикаты, сосиски, колбасу ит.п.) отбирают в стерильные контейнеры
Пробы отобранного материала охлаждаются, при транспортировке помещаются в термос со льдом или охладителем.
Для серологического исследования (ИФА) направляют в пробирках сыворотку без признаков гемолиза и бактериальной контаминации. Допускается однократное замораживание сыворотки крови.
ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проводит исследование материала методами полимеразной цепной реакции и иммуноферментного анализа.
