Отчетный период с 13.02.2026г. по 19.02.2026г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 422 пробы сыворотки крови животных, проведено 731 исследование. Выявлено: 8 положительно реагирующих проб по лептоспирозу свиней и 2 положительно реагирующие пробы по лептоспирозу лошадей.

Лептоспироз (Leptospirosis, инфекционная желтуха, собачья лихорадка, болезнь Васильева–Вейля) — инфекционная, природно-очаговая болезнь многих видов животных и птиц, проявляющаяся лихорадкой, гемоглобинурией (гематурией), желтушным окрашиванием и некрозами слизистых оболочек и кожи, атонией желудочно-кишечного тракта, абортами, рождением нежизнеспособного потомства, снижением продуктивности животных.
Возбудитель был выявлен А. Вейлем в 1886 году и Н. П. Васильевым в 1888 году. Возбудители лептоспироза — лептоспиры, принадлежащие к семейству спирохет, которые занимают промежуточное положение между бактериями и простейшими. Лептоспира состоит из тонкой осевой нити, которую окружает цитоплазматическая спираль. Длина лептоспир колеблется от 5 до 20, толщина — от 0,1 до 0,2 микрон. Концы лептоспир крючкообразно загнуты и имеют пуговчатое утолщение. У отдельных лептоспир наблюдаются и безкрючковые формы.  Размножаются лептоспиры путем поперечного деления материнской клетки на две или три части.
Лептоспиры отличаются большим разнообразием серотипов, разделенных на 19 серогрупп. У сельскохозяйственных животных выделено 7 серогрупп.
Лептоспироз сезонная болезнь. В умеренном климате пик заболеваемости приходится на лето и первую половину осени.
На территории РФ возбудителями лептоспироза сельскохозяйственных животных и собак являются лептоспиры серогрупп: Grippotyphosa, Pomona, Tarassovi, Sejroe, Hebdomadis, Icterohaemorrhagiae, Canicola; в природных очагах установлена циркуляция лептоспир серогрупп: Grippotyphosa, Pomona, Sejroe, Javanica, Icterohaemorrhagiae, Bataviae, Australis, Autumnalis.
К лептоспирозу восприимчивы все сельскохозяйственные животные (крупный и мелкий рогатый скот, лошади, овцы, свиньи), домашние (собаки, кошки), дикие плотоядные (лисицы, волки, шакалы), пушные звери (норки, песцы), грызуны (нутрии, мыши, полевки, крысы), хищные, домашние и дикие птицы.
Основной источник инфекции — мыши, крысы, ежи, землеройки. Грызуны являются пожизненными носителями и основными резервуарами инфекции. Вторичными носителями лептоспир являются КРС, МРС, свиньи, собаки/лисицы.
В ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проводит исследования по ГОСТ 25386-91 «Животные сельскохозяйственные. Методы лабораторной диагностики лептоспироза» п. 2.3.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 37 проб, проведено 215 исследований.

Определение числа падения в муке пшеничной 

Число падения — это показатель, характеризующий активность зерновой альфа-амилазы в зерне и муке из мягкой пшеницы, а также в зерне и муке из твердой пшеницы. Показатель измеряется в секундах.
Этот показатель зависит от фермента альфа-амилазы: чем выше его активность, тем ниже число падения. Активность фермента означает, что происходит процесс прорастания зерна, на который затрачивается энергия. Поэтому показатель числа падения необходим для определения хлебопекарных качеств пшеницы.
Оптимальные значения числа падения зависят от назначения муки и требований переработки. В среднем:
- более 250 сек. – отличное качество;
- 200–250 сек. – допустимо;
- менее 180 сек. – сигнал о снижении качества.
Значения ниже 150 сек. часто указывают на прорастание зерна – такие партии, как правило, бракуются.
Число падения напрямую влияет на качество хлеба: чем ниже число падения от стандартных показателей, то хлеб из такой муки будет отходить от корки и иметь кисловатый вкус. Ярко выраженный запах солода и неустойчивая форма изделия – это тоже характеристики хлеба из некачественной муки с низким показателем числа падения.
В отделе химических исследований ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория» определение числа падения проводится по ГОСТ 27676-88 «Зерно и продукты его переработки. Метод определения числа падения». Принцип метода заключается в определении времени свободного падения шток-мешалки в клейстеризованной водно-мучной суспензии.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 114 проб материала, проведено 134 исследования, положительных случаев не выявлено.

Материал для исследования на сальмонеллез.

Для посмертной диагностики сальмонеллезов в лабораторию направляют свежие трупы мелких животных и птиц; от трупов крупных животных - паренхиматозные органы или части их (печень с желчным пузырем и лимфатическими узлами, селезенку, почку), мезентериальные лимфатические узлы, трубчатую кость; при подозрении на хроническую форму от свиней, кроме того, направляют слепую кишку с содержимым, и от телят - измененные участки легких; в случае аборта - свежий плод.
Материал для исследования следует брать в возможно более ранние сроки после гибели животного (не позднее 12 часов). Не рекомендуется брать материал от животных, подвергавшихся лечению антибиотиками.
Трупы направляют в лабораторию в водонепроницаемой таре. Пробы органов доставляют в чистой, по возможности стерильной посуде (кишечник отдельно от других органов) в свежем виде; при невозможности быстрой доставки материал консервируют 30% -ным водным раствором глицерина.
Для прижизненной диагностики в лабораторию направляют фекалии, кровь, истечения из матки при абортах, а для серологического исследования по РА - сыворотку крови.
Период бактериемии при сальмонеллезах очень короткий, поэтому кровь для прижизненной диагностики необходимо брать в наиболее ранние сроки заболевания (на 1 - 4-й день). Кровь берут стерильным шприцем из яремной вены больного животного (теленка) в количестве 5 - 10 мл. Посев на среды целесообразно проводить сразу же после взятия крови.
Для обнаружения сальмонелл пробы фекалий отбирают после дефекации из последней порции. При наличии в фекалиях крови, слизи, гноя, пленок их необходимо включить в пробу. Можно брать фекалии непосредственно из прямой кишки с помощью стерильной стеклянной ректальной трубки (трубки Цимана) или деревянной палочки с ватным или марлевым тампоном на конце. Отобранные пробы помещают в стерильную посуду.
При невозможности посева в течение 3-4 часов фекалии помещают в пробирку с консервирующим раствором. В качестве консерванта применяют глицериновую смесь или буферный раствор фосфорнокислых солей (pH 8,0). В пробирку наливают 5 мл консерванта, количество же помещенных фекалий должно составлять 1/3 объема консерванта.
Исследование фекалий следует начинать в возможно более ранние сроки. Лишь в исключительных случаях допускается хранение материала не более суток в холодильнике при 2 - 6°С.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 381 исследование.

Антибиотики в молоке могут присутствовать в остаточных количествах, которые попадают из-за применения препаратов в ветеринарии:
-лечение животных антибиотиками;
-применение антибиотиков в кормах для животных;
-неправильная обработка вымени (используемое средство может попасть в молоко);
-нарушение в очистке доильного оборудования (используемое средство может попасть в молоко).
В молоке, которое поступает в продажу, может сохраняться до 90–100% антибиотиков, присутствовавших в нём на момент дойки. Это связано с тем, что антибактериальные вещества практически не разрушаются и не переходят в другие формы при стерилизации и пастеризации.
Остаточные количества антибиотиков в молоке могут нанести вред здоровью человека и производству молочных продуктов:
-аллергические реакции;
-кумулятивное накопление в органах и тканях;
-появление устойчивости штаммов микроорганизмов к антибиотикам;
-нарушение технологического процесса (антибиотики подавляют развитие бактерий, применяемых при производстве кисломолочных продуктов, и нарушают сычужное свёртывание молока при производстве творога и сыра).
В лаборатории для определения остатков антибиотиков в молоке используют экспресс-тест 4 Sensor, основанный на иммунологическом методе (реакции комплексообразования антибиотиков в молоке со специфическими белковыми рецепторами, меченными коллоидным золотом, в микролунках диагностического набора). Данным набором определяются β-лактамы (пенициллин и цефалоспорин), тетрациклин, левомицетин (хлорамфеникол), стрептомицин.
Тест подходит для работы с сырым, пастеризованном, стерилизованном и предварительно восстановленным сухим молоком, и сывороткой.  Введён в ГОСТ 32219-2013 «Молоко и молочные продукты. Иммуноферментные методы определения наличия антибиотиков».
Микропробирки извлекают из пенала и помещают в термостат с температурой (40 ± 3) °С. В каждую микропробирку пипеткой с наконечником вносят 0.2 см3 анализируемого продукта, перемешивают и выдерживают в термостате в течение 5 мин.  В этот период реактив из микролунки смешивается с пробой молока. Если присутствуют антибиотики, то образуется комплекс из рецептора и анализируемого антибиотика.
Далее в микропробирки помещают индикаторные полоски хроматографической бумаги и выдерживают в термостате при температуре (40 ± 3) °С в течение 5 мин. После погружения в молоко, жидкость начинает мигрировать по тест-полоске и проходит через измерительные линии.
По истечении времени индикаторные полоски хроматографической бумаги извлекают из микропробирок и считывают результат. Если проба не содержит антибиотиков, линии окрасятся в насыщенный красный цвет, если антибиотики присутствуют- тестовая линия слабее контрольной.