отчетный период с 03.07.2020 г. по 09.07.2020 г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллёз крупного рогатого скота – 715 проб;
- паратуберкулёз крупного рогатого скота -1 проба;
- хламидиоз крупного рогатого скота - 1 проба;
- бруцеллёз мелкого рогатого скота – 47 проб;
- бруцеллез свиней - 47 проб;
- хламидиоз свиней -51 проб;
- бруцеллез лошадей – 102 пробы;
- сап лошадей - 102 пробы;
- случная болезнь лошадей – 9 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 9 проб;
- лейкоз крупного рогатого скота – 157 проб, положительных – 5 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 84 пробы, положительных – 7 проб;
- лептоспироз свиней – 11 проб, положительных – 1 проба;
- лептоспироз лошадей – 14 проб, положительных – 5 проб.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 116 проб:
* корма – 7 проб;
* пищевая продукция – 93 пробы;
* вода – 4 пробы.
* пат.материал (отравление) – 1 проба.
Также для радиологических исследований поступило 11 проб.
За отчетный период выявлено 2 положительных результата.
- В 2 пробах мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы-2.

Мясокостная мука
Из всех видов кормовых продуктов, вырабатываемых на мясокомбинатах, наибольший удельный вес имеет производство мясокостной муки.
Изготовление мясокостной муки позволяет избавиться от многочисленных отходов и использовать отходы мясной продукции – максимально продуктивно. Оборудование для производства мясокостной муки применяет сразу несколько операций, в числе которых: измельчение, стерилизация и сушка. Содержание питательных элементов может отличаться и зависит в первую очередь от сырья, используемого для ее изготовления. Мясокостная мука представляет собой порошок светло или темно-коричневого цвета со специфическим запахом.
Мясокостная мука используется как витаминно-минеральная добавка при кормлении крупного и мелкого рогатого скота, а также свиней и птицы. Это очень ценный продукт, содержащий очень много белка.
Добавление в корм мясокостной муки способствует:
— повышению питательных свойств корма;
— экономии корма;
— нормализации функции обмена веществ организма животных;
— активации роста;
— повышению иммунитета;
— повышению продуктивности домашней птицы.
Польза мясокостной муки.
Использование мясокостной муки необходимо для:
— гармоничного развития и роста молодого домашнего скота;
— стабилизации и укрепления опорно-двигательной системы старых и слабых животных;
— обеспечения витаминами и минеральными веществами организма собак во время вскармливания щенков;
— в период реабилитации животного после родов или лактации.
Мясокостную муку стоит добавлять в пищу домашних животных постепенно. Рекомендуется смешивать муку с жидкой пищей, кашей или супами, для лучшей усвояемости продукта.
Так как данный продукт имеет достаточно благоприятную среду для размножения многочисленных типов бактерий, то его неправильное хранение приводит к скорой его негодности. Применение испорченной мясокостной муки крайне опасно для здоровья и жизни животных.
Факторами передачи возбудителя служат мясные продукты и субпродукты, полученные от больных рожей свиней, а также корма, вода, почва, навоз , предметы ухода, загрязненные бактериями рожи. В пределах свинарника и небольшого населенного пункта механическими переносчиками бактерий могут быть домашние мухи и осенние мухи-жигалки, питающиеся кровью больных рожей животных. Для рожи характерно выраженная весеннее - летнее - осеняя сезонность и заболеваемость свиней от 3 до 12месяцев.Устойчивость поросят-сосунов связана с наличием у них коллострального иммунитета, передаваемого иммунными свиноматками с молозивом. Естественная устойчивость свиней к роже в значительной степени зависит от условий содержания и полноценности рациона кормления свиней. Высокая внешняя температура и повышенная влажность, плохая вентиляция в свинарнике, резкая смена рациона кормления и другие неблагоприятные факторы снижают устойчивость свиней к роже и способствуют переходу скрытой инфекции у свиней — бактерионосителей в клинические формы болезни.Проводятся общие профилактические мероприятия:
- создание нормальных условий содержания и полноценного кормления;
- систематическая уборка навоза, очистка территории свинарника, помещений и периодическая дезинфекция;
- совместно с Роспотребнадзором в населенном пункте проводятся дератизационные мероприятия по уничтожение грызунов.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1211 исследований, из них 41 положительный случай.
Вирусная диарея крупного рогатого скота (болезнь слизистых оболочек, Bovinevirusdiarrhoea, Mucosaldisease — англ.) - болезнь, характеризующаяся анорексией, диареей, прогрессирующим исхуданием, нередко с лихорадкой, респираторными расстройствами, хромотой, поражением глаз, язвенным воспалением пищеварительного тракта, язвенно-эрозивным стоматитом и ринитом.
Экономический ущерб от вирусной диареи КРС довольно значительный. В неблагополучных хозяйствах наблюдаются высокая летальность (до 10%) и потери продуктивности животных. При скрытом течении болезни могут возникнуть еще большие потери в результате массового поражения и отрицательного влияния на продуктивность и воспроизводство, неэффективных затрат кормов, отставания молодняка в росте и развитии при откорме.
Возбудитель относится к семейству тогавирусов, роду пестивирусов. По физико-химическим, биологическим свойствам вирус диареи очень сходен с относящимися к этому роду вирусами классической чумы свиней, краснухи и др. Известны и используются как эталонные штаммы возбудителя Орегон-С24У, Нью-Йорк, Индиана, различающиеся по культуральным свойствам и вирулентности. Антигенных вариантов вируса диареи, видимо, не существует, хотя имеются сообщения о некоторых серологических различиях полевых штаммов от эталонных (X.Хараламбиев, 1975). Вирус диареи в антигенном отношении сходен с вирусом классической чумы свиней.
Многочисленные попытки использовать эти свойства в серологической диагностике, для перекрестной иммунизации пока не нашли практического применения.
Вирус диареи чувствителен к липидным растворителям, протеазам, кислым и щелочным условиям среды, быстро инактивируется при 56 °С и рН 3. В связи с относительной лабильностью возбудителя для дезинфекции пригодны общепринятые растворы формалина, кислот, щелочей.
В лабораторных условиях вирус диареи культивировать сложно, так как большинство выделенных вариантов при размножении в клеточных культурах не обладает видимым цитопатогенньм действием и даже эталонные штаммы вызывают слабовыраженную деструкцию клеток. Тем не менее к вирусу диареи КРС чувствительны перевиваемые культуры клеток почек эмбрионов крупного рогатого скота, семенников телят и ягнят. Нецитопатогенные варианты регистрируют с помощью иммунофлюоресценции или проверяют накопление вируса инокуляцией культуральной жидкости чувствительным телятам с учетом результатов клинической картины или сероконверсии.
В естественных условиях вирус диареи вызывает типичные клинические признаки болезни только у крупного рогатого скота. Антитела обнаруживаются при серологическом обследовании лосей (J.Thorsen, J. Henderson, 1971). Имеются данные о возможной роли вируса диареи в возникновении естественной инаппарантной инфекции свиней (Е. Carbreyetal., 1976). Установлена родство вируса диареи с возбудителем «пограничной» болезни овец (Borderdisease), распространенной в Англии и Австралии: штаммы вирусов «пограничной» болезни оказались серологически идентичны вирусу диареи и вызывали сходные эмбриопатии у крупного рогатого скота (D.Gybbons, 1974).
Эпизоотологические данные. Источником возбудителя инфекции являются явно и скрыто больные животные. Высокая частота положительного ретроспективного диагноза, по данным серологического обследования, даже в хозяйствах, где болезнь никогда не наблюдалась, а также практически повсеместное обнаружение серопозитивных животных, например, в США и Западной Европе, свидетельствуют о роли скрытого инфекционного процесса в распространении вирусной диареи. Причиной ее вспышек обычно является ввоз скрыто больных животных.
Механизм передачи возбудителя диареи не изучен. Однако, поскольку вирус разрушается при кислых значениях рН среды, он, вероятно, проникает в организм назально-оральным путем и приживляется в зоне не ниже пищеводно-глоточной области и миндалин. Факторами передачи служат контаминированные корма и вода, различные предметы и оборудование. Возбудитель болезни может распространять обслуживающий персонал, птицы, грызуны, насекомые. В условиях промышленного животноводства возможна капельно-пылевая инфекция.
К вирусу восприимчивы 100% животных, однако клинические признаки проявляются в среднем в 60% случаев с летальностью в исключительных случаях до 50%, обычно не выше 10%. Наиболее чувствительны к болезни животные в возрасте от 6 месяцев до 2 лет.
Эпизоотические вспышки остро протекающей вирусной диареи наблюдаются относительно редко с поражением в типичной форме лишь некоторых животных. По данным разных авторов, повторных случаев болезни не отмечено, так как реконвалесценты сохраняют невосприимчивость от 1 до 3—5 лет. В то же время, судя по широкому и регулярному выявлению серопозитивности у скота, болезнь в бессимптомной форме распространяется так же, как и латентные эндогенные вирусные инфекции, присущие промышленному скотоводству. В массовом обострении скрытых инфекций ведущая роль принадлежит стрессовым воздействиям. Характерным является смешанное течение вирусной диареи с болезнями названной группы (адено-, рино-, рео-, корона-, ротавирусные инфекции).
Патогенез вирусной диареи не изучен. Вирус приживляется в области миндалин. Болезнь развивается по типу септицемии, во время лихорадочной реакции и вирусемии, в кровеносной системе вирус связан с лейкоцитами. За счет них формируются очаги размножения вируса и некроза с последующим изъязвлением в различных тканях и органах. Возбудитель выделяется в среду с истечениями из носа, рта, глаз и экскрементами. При бессимптомном течении возможно вирусоносительство более полутора лет.
Как и другие представители рода пестивирусов, возбудитель диареи обладает выраженным тератогенным действием и вызывает нередко гибель плода или врожденные уродства. Даже у клинически здорового потомства имеется вероятность пренатального повреждения иммунной системы и вследствие этого повышение восприимчивости. Врожденная инфекция может широко распространяться; например, в Великобритании, по расчетам, один из шестнадцати плодов инфицирован вирусом диареи (J.Doneetal., 1980).
Существенным элементом патогенеза и осложняющим обстоятельством является иммунодепрессивное действие вируса диареи у взрослых животных за счет поражения иммунокомпетентных клеток. Это проявляется в снижении титров антител против парагриппа-3 после заражения вирусом диареи, несовместимости одновременной вакцинации живыми препаратами против диареи и чумы крупного рогатого скота (X.Хараламбиев, 1975; A. Provost, 1972). Снижение иммунологической реактивности нередко сопровождается осложнениями в результате обострения латентных эндогенных или секундарных инфекций вирусной и бактериальной природы.
Клинические признаки при вспышках остро протекающей вирусной диареи с охватом большинства животных по истечении инкубационного периода от одной до трех недель проявляются в отказе от корма, депрессии, двухфазном повышении температуры до 40—42 °С, лейкопении, гастроэнтерите с непроходящей диареей, серозных, затем слизисто-гнойных истечений из носа, обильном слезо- и слюнотечении с характерным зловонным запахом. Эти симптомы могут наблюдаться в течение 1—4 недель, после чего наступает стадия выздоровления; летальные исходы очень редки. В тяжелых и затяжных случаях при поражении некоторой части животных, обычно с неблагоприятным прогнозом, болезнь сопровождается абортами и хромотой (до 10%), диареей с примесью крови, сильным исхуданием и снижением массы вследствие обезвоживания организма, изъязвлением ротовой полости,., носового зеркала, губ, влагалища, межкопытцевой щели, сухим кашлем, центробежным помутнением роговицы, сильным увеличением лимфоузлов, выпаданием волос и гиперкератозом в области шеи и плеч.
Течение вирусной диареи может быть острым, подострым, хроническим и бессимптомным. Причины характерного для этой болезни разнообразия течения, колебания заболеваемости, летальности обусловлены особенностями биологии возбудителя, присущими пестивирусам. В патогенезе вызываемых ими болезней основным компонентом являются сложные ферментативные расстройства, приводящие к некробиозу и другим патологическим последствиям. Эти механизмы в значительной мере подвержены влиянию индивидуальных особенностей животных, условий содержания и т. п., что и определяет результат инфекции.
Патологоанатомические изменения ограничены главным образом пищеварительным трактом. На всем его протяжении обнаруживают множественные эрозии и язвы. Патологоанатомические признаки — язвенный стоматит и гастрит. Гистологическая картина характеризуется некрозом многослойного плоского эпителия, пейровых бляшек и лимфоидных скоплений.
Диагноз и дифференциальный диагноз по данным эпизоотологического анализа, клиническим и патологоанатомическим признакам практически поставить невозможно ввиду разнообразия проявления вирусной диареи и сходства со многими патологическими явлениями различной этиологии, наблюдаемыми у крупного рогатого скота. Лишь в качестве подозрения следует учитывать быстрое распространение в стаде заболевания, сопровождающегося лихорадкой, диареей, эрозиями в ротовой полости и ранней лейкопенией. Основу диагностики составляют лабораторные методы идентификации вируса, а клинические показатели могут являться лишь подспорьем для ускоренного диагноза их во вторичных случаях.
Для прижизненного выделения вируса диареи в период лихорадки и выраженного клинического течения болезни берут носовые, глоточные смывы, фекалии, кровь, а из патологического материала— кусочки пораженных отделов пищеварительного тракта, брыжеечных и заглоточных лимфоузлов. Материалом после осветления и обработки антибиотиками заражают культуру клеток, восприимчивых телят или используют как антиген в реакциях диффузионной преципитации, связывания комплемента и наиболее чувствительной и применяемой чаще всего — реакции нейтрализации с эталонными антисыворотками. Для характеристики истинного распространения возбудителя и бессимптомных форм течения болезни ретроспективный диагноз ставят на основании данных реакции нейтрализации эталонного цитопатогенного штамма вируса (обычно Орегон-С24У) и с исследуемыми сыворотками. Рекомендуется брать парные сыворотки, полученные с интервалом в 1 неделю.
При дифференциации вирусной диареи необходимо исключить чуму крупного рогатого скота, инфекционный ринотрахеит, злокачественную катаральную горячку, паратуберкулезный энтерит. Кроме перечисленных болезней, сходные симптомы наблюдаются при эфемерной лихорадке, ящуре, транспортной лихорадке — парагриппе-3, болезнях Ибараки и Акабане, диареях молодняка корона-, ротавирусной природы, некро- и колибактериозе, гиперкератозе, алиментарных отравлениях. Необходимо учитывать вероятность смешанного течения вирусной диареи с пневмоэнтеритамивирусобактериальной этиологии.
Иммунитет и средства специфической профилактики. Средства специфической профилактики вирусной диареи применяют для активной и пассивной иммунизации. Выпускаются живые препараты модифицированных штаммов возбудителя и убитые вакцины. Большинство живых вакцин в полевых условиях обладает определеннойреактогенностыо, вызывает осложнения в виде общих реакций (до 10% и более), возможно неблагоприятное воздействие на половую сферу и тератогенный эффект.
В целом специфическую профилактику вирусной диареи крупного рогатого скота применяют ограниченно. Живые вакцины используют для прививок молодняка или коров до покрытия, исключая неблагоприятное воздействие на плод. Обычно убитые вакцины двукратно вводят коровам во второй половине беременности. С учетом преимуществ и высокой иммуногенной активности, сравнимой с таковой у живых вакцин, их целесообразно также применять крупному рогатому скоту всех возрастных групп. Вакцины против вирусной диареи в большинстве случаев используют в ассоциации с препаратами против инфекционного ринотрахеита, парагриппа-3, рео-, аденовирусной и хламидийной инфекций, лептоспироза, пастереллеза в двух-, трех- и поливалентных сочетаниях. Например, в Великобритании фирма «КруксВетеринари» выпускает пятивалентный инактивированный препарат против диареи, парагриппа-3, инфекционногоринотрахеита, адено-3 и реовирусной инфекций.
При удачно выбранной схеме двукратной вакцинации иммунитет у животных сохраняется до 5 лет. У новорожденных телят он может быть различным, охватывать более 70% животных и длиться от 3,5 месяца до года в зависимости от того, переданы ли антитела пассивно, либо произошло внутриутробное или неонатальное образование иммунитета (В. В. Гуненков и др., 1975).
В целях пассивной иммунизации эффективна гипериммунная сыворотка с высоким титром антител. Используют ее для лечения в профилактики вирусной диареи у новорожденных телят, иногда в поливалентном сочетании.
Профилактика и меры борьбы основываются на предотвращении контактов здоровых животных с больными и предупреждении распространения возбудителя факторами передачи. Истинная опасность серопозитивных животных неизвестна, но они считаются потенциальными вирусоносителями и не должны смешиваться со здоровым скотом. Явно больных животных в тяжелых случаях либо уничтожают, либо индивидуально подвергают симптоматическому лечению от бактериальных осложнений, кахексии, диареи и обезвоживания.
Неблагополучные стада независимо от клинического проявления болезни содержат изолированно. Вакцинация целесообразна в случае первичного возникновения болезни. В неблагополучных зонах молодняк следует иммунизировать до постановки на откорм.
отчетный период с 26.06.2020 г. по 02.07.2020 г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллёз крупного рогатого скота – 746 проб;
- бруцеллёз мелкого рогатого скота – 135 проб;
- бруцеллез свиней - 51 проба;
- хламидиоз свиней - 57 проб;
- бруцеллез лошадей – 62 пробы;
- сап лошадей - 60 проб;
- лейкоз крупного рогатого скота – 1035 проб, положительных - 170 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 144 пробы, положительных –3 пробы;
- лептоспироз свиней – 33 пробы, положительных – 4 пробы;
- лептоспироз лошадей – 72 проб, положительных – 36 проб.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 115 проб материала, проведено 248 исследований, выявлено 6 положительных случаев.
В поступившей в отдел пробе пчел и расплода были обнаружены клещи варроа (Varroa jacobsoni).
Варроатоз пчел - это инвазионная болезнь пчел, вызываемая клещом,паразитирующим на теле пчел, трутней, маток, а также на трутневом и реже пчелином расплоде.
Взрослые клещи — самки и самцы формируются через трое суток из дейтонимф. Нимфы имеют тонкий покров и стекловидно-белесый вид. Наличие у них колюще-сосущего аппарата позволяет питаться гемолимфой расплода. К моменту выхода пчелы из ячейки там уже накапливаются оплодотворенные самки клеща. Они вместе с пчелами выходят наружу и расселяются на пчелах, матках, трутнях; находясь на их теле, питаются гемолимфой, прокалывая ротовыми органами сочленение между головой и грудью, грудью и брюшком, а также между тремя первыми сегментами брюшка. Самцы варроа и молодь клеща живут только на трутневом и пчелином расплоде.Возбудитель — клещ — Varroa Jacobsoni. Окраска клеща коричневатая. Тело самки уплощенное, поперечно-овальное, размером 1,2х1,7 мм, у самца тело округлое, размером 0,85-0,8 мм. Клещ размножается половым путем. Перед запечатыванием трутневого или пчелиного расплода оплодотворенная самка (или несколько самок) проникает в ячейку и остается там на печатном расплоде под коконом. Самки питаются гемолимфой личинок и куколок и откладывают яйца. В течение суток в яйце формируется личинка клеща с тремя парами ножек, а через двое суток — восьминогая нимфа (протонимфа), которая за такой же срок превращается во вторую нимфу (дейтонимфу).
Взрослые клещи — самки и самцы формируются через трое суток из дейтонимф. Нимфы имеют тонкий покров и стекловидно-белесый вид. Наличие у них колюще-сосущего аппарата позволяет питаться гемолимфой расплода. К моменту выхода пчелы из ячейки там уже накапливаются оплодотворенные самки клеща. Они вместе с пчелами выходят наружу и расселяются на пчелах, матках, трутнях; находясь на их теле, питаются гемолимфой, прокалывая ротовыми органами сочленение между головой и грудью, грудью и брюшком, а также между тремя первыми сегментами брюшка. Самцы варроа и молодь клеща живут только на трутневом и пчелином расплоде.
Источником инвазии являются больные пчелиные семьи и рои от больных семей. Расселение возбудителя внутри семьи и передача его другим семьям осуществляется пчелами, трутнями, а также матками, на теле которых находятся самки клеща. Пчелы и трутни; попадая в здоровую семью, вносят туда клещей. Пчелиные семьи заражаются также при подселении их пчелиным расплодом от больных семей. Большую опасность для распространения варроатоза представляет срезанный от больных семей трутневой расплод, который, находясь в открытом виде, оказывается доступным для пчел. Способствуют распространению болезни бесконтрольные перевозки пчел, пересылка пакетов и пчелиных маток из неблагополучных по варроатозу хозяйств в благополучные. Болезнь может проявляться в любое время года.
За отчетный период в отдел химических исследований поступила 31 проба:
* корма – 4 пробы;
* пищевая продукция – 16 проб;
* вода – 9 проб.
Также для радиологических исследований поступило 2 пробы.
За отчетный период выявлено 8 положительных результатов.
- В 3 пробах питьевой воды выявлены содержание хлор-иона выше нормы – 2, повышенная жесткость – 3.
- В 3 пробах мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы-3.

Зола в составе мясокостной муки
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1655 исследований, из них 1 положительный случай.
Инфекционные заболевания весьма часто встречаются в ветеринарной практике. Для владельца животного важно вовремя обратить внимание на симптомы недомогания питомца. Для большинства инфекционных заболеваний эти симптомы неспецифичны: угнетение, отказ от корма, повышенная температура тела, рвота, понос; при некоторых заболеваниях встречается хромота и опухание суставов; возможно изменение цвета мочи.
Для ветеринарного врача, к которому приводят заболевшее животное, важно составить список дифференциальных диагнозов и исключить (или подтвердить) их специальными методами диагностики. Однако стоит помнить, что выбор диагностического метода будет зависеть от вида возбудителя, его локализации и стадии заболевания. Методика, применимая для диагностики одной инфекции, совершенно неприемлема для диагностики другой.
При подозрении на инфекционную болезнь в хозяйстве основная задача врача-эпизоотолога — своевременно установить диагноз, используя комплексный метод диагностики. В диагностике инфекционных заболеваний широко используется метод ИФА.
ИФА или ELISA (отангл. enzyme-linkedimmunosorbentassay) — лабораторный иммунологический метод качественного определения и количественного измерения АГ.
ИФА также основан на учете реакции АГ—АТ, причем в качестве метки, позволяющей обнаружить иммунный комплекс, используют ферменты, например пероксидазу. В основе ИФА лежит принцип взаимодействия иммуносорбента (АГ возбудителя инфекции) с выявляемыми АТ соединения комплекса АГ—АТ с иммуноглобулинами, содержащими ферментную метку.
Иммуноглобулины, применяемые в таких тест-системах, так называемыйконъюгат, могут быть получены на основе антивидовых АТ (например, кроличьи АТ против иммуноглобулинов человека) или на основе АТ, направленных против человеческих иммуноглобулинов определенного класса (М, G, А).
В зависимости от того какие АТ использованы, тест-система будет выявлять в исследуемом образце или специфические АТ независимо от их класса, или АТ лишь определенного класса (например, только иммуноглобулин G или только иммуноглобулин М).
Существует несколько методов постановки реакции, однако в настоящее время используется в основном следующая схема.
Схема проведения ИФА (по Бургасовой и Безденежных,1969): а — АТ против АГ сорбированы на стенках пробирки; 6 — добавление исследуемой сыворотки к искомым АГ, которые взаимодействуют с АТ и фиксируются на стенках пробирки; в — введение АТ к данному АГ, меченных ферментом (пероксидазой), которые также фиксируются на стенках пробирки; г—добавление перекиси водорода и хромогена, который под действием кислорода, выделяющегося при разложении Н202 пероксидазой, изменяет свой цвет на желтый
Сначала на стенках полистироловых пробирок сорбируют АТ против определенного АГ. В эту же пробирку вносят исследуемую сыворотку (или другой биологический субстрат). Если там содержатся искомые АГ, то они взаимодействуют с АТ и вместе с ними фиксируются на стенках пробирки. После этого в пробирку вводят АТ к данному АГ, меченные ферментом, которые также присоединяются к образовавшемуся иммунному комплексу и остаются на стенках пробирки. Для обнаружения и количественной оценки этих комплексов в пробирку добавляют перекись водорода (Н202) и хромогены. Фиксированный к стенке пробирки фермент (пероксидазу) разлагает Н202 с выделением кислорода. Последний окисляет хромоген, который приобретает желтый цвет. Интенсивность окрашивания и соответственно количество искомого АГ оценивают спектрофотометрически или визуально.
отчетный период с 12.06.2020 г. по 18.06.2020 г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллёз крупного рогатого скота – 303 пробы;
- бруцеллёз мелкого рогатого скота – 90 проб;
- бруцеллез свиней - 190 проб;
- хламидиоз свиней - 190 проб;
- бруцеллез лошадей – 24 пробы;
- сап лошадей - 15 проб;
- случная болезнь лошадей – 6 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 6 проб;
- лейкоз крупного рогатого скота –207 проб, положительных – 16 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 228 проб, положительных – 70 проб;
- лептоспироз свиней – 310 проб, положительных – 18 проб;
- лептоспироз лошадей – 42 пробы, положительных – 5 проб;
- лептоспироз пони – 2 пробы, положительных – нет;
- лептоспироз мелкого рогатого скота - 18 проб, положительных – нет.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 16 проб:
* корма – 7 проб;
* пищевая продукция – 8 проб.
Также для радиологических исследований поступила 1 проба.
За отчетный период положительных результатов не выявлено.

Сливочное масло: польза и вред для организма
Сливочное масло является популярным продуктом, который активно применяется в области кулинарии. Этот продукт имеет животное происхождение, его получают путем переработки сливок из натурального коровьего молока. Именно настоящая продукция обладает прекрасными вкусовыми качествами, содержит множество питательных компонентов и витаминов, которые имеют важное значение для организма человека. К сожалению, натуральный продукт пользуется низким спросом, а во многих магазинах встречается множество искусственных заменителей, и это очень плохо. Многие диетологи советуют регулярно употреблять именно натуральный продукт из настоящего молока крупнорогатого скота.
Виды сливочного масла:
– Несоленое;
– Соленое;
– Любительское;
– С наполнителями (шоколадное, фруктовое и так далее).
Состав:
Помимо молочного жира в составе продукта имеются другие питательные и полезные компоненты. Именно они делают его настоящим кладом для здоровья человека. Среди основных витаминов, которые имеются в основе, стоит выделить:
– Витамин А;
– Витамин Е;
– Группа витаминов В;
– Витамины Д, К, РР.
Общая польза
– Противораковые свойства;
– Влияет на настроение;
– Польза для глаз;
– Польза для костей;
– Обеспечивает жизненно важными витаминами;
– Снижает риск возникновения сердечно-сосудистых заболеваний;
– Источник жирорастворимых витаминов;
– Укрепляет иммунитет;
– Помогает поддерживать здоровье желудочно-кишечного тракта.
Вред и противопоказания
Хоть сливочное масло считается очень полезным продуктом, у него есть противопоказания. Его не следует употреблять людям:
– с аллергиями;
– при непереносимости молочных продуктов;
– с повышенным уровнем содержания холестерина в организме;
– при заболеваниях сердца или сосудов;
– с ожирением;
– со склонностью к появлению сыпи.
Стоит заметить, что полезные свойства имеет лишь натуральное сливочное масло, и только если употреблять его в допустимых количествах. Из-за высокого уровня содержания холестерина неумеренное потребление масла может повлечь за собой возникновение атеросклероза. Людям с болезнями сердца и высоким кровяным давлением необходимо ограничить употребление масла или даже полностью отказаться от него.
Браулез-инвазионная болезнь пчелиной семьи, вызывающая поражение маток, рабочих пчел, трутней, сопровождающаяся повреждением сотов и нарушением питания пчел, их беспокойством, ослаблением и, как следствие, снижением продуктивности пчелиной семьи.Основным источником браулеза являются больные пчелиные семьи. Во время перестановки сотов, формирования отводков, усиления слабых семей, подсадке маток, браулы переносятся от больной пчелиной семьи в здоровую. В пчелином гнезде передача инвазии происходит при непосредственном контакте. Являясь очень подвижными, браулы легко переползают с пораженных пчел на здоровые. Браулы паразитируют только на пчелах и осах, не вызывая заболевания других насекомых, человека и животных.
Диагноз на браулез ставится на основании визуального обнаружения двух или более браул на матке и единичных особей на рабочих пчелах. От каждой пчелиной семьи пчеловод отбирает пробы живых пчел и по сопроводительному письму ветврача, обслуживающего данную местность, направляет в ветлабораторию.При установлении браулеза весной или в начале летнего сезона пчеловод проводит лечение пчелиных семей до наступления главного медосбора, или же в августе месяце, после того, как главный медосбор закончится.
В качестве лечебных препаратов при браулезе используют фенотиазин, фольбекс, табачный дым, нафталин. Из вышеуказанных препаратов более эфективным является фенотиазин.Применение фенотиазина во время медосбора запрещено.
Применяя лечение, через каждые 10 дней пчеловод распечатывает восковые крышечки сотов, собирает их и перетапливает на воск с целью уничтожения яиц и личинок браул. Соты, свободные от расплода, можно обрабатывать сероуглеродом (50г серы на 1 м3), 3 раза через 10дней. Серу во время обработки пчеловод помещает в металлическую банку, поджигает и ставит на дно улья или плотного ящика, в котором подвешены рамки с сотами. Ульи можно использовать на пасеке без дезинфекции через неделю после пересадки из них больных семей.
Ограничения с пасеки по браулезу снимают после ликвидации заболевания и выполнения требований п.п. 3.12-3.13 «Инстркции о мероприятиях по предупреждению и ликвидации болезней, отравлений и основных вредителей пчел» от 17 августа 1998г. №13-4-2/1362.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1219 исследований. В ходе исследований было выявлено 3 положительных случая.
Опасны ли дрожжи в молочных продуктах?
Нередко выявляются продукты, в которых количество дрожжей превышает допустимый безопасный уровень.

Дрожжи — микроорганизмы,широко распространенные в природе.
Есть технически полезные дрожжи, а есть такие, которые вызывают порчу продукции или заболевания.
В молочной продукции дрожжи – нормальные обитатели. Они могут присутствовать в любых продуктах из молока. Но их особенность заключается в том, что для жизнедеятельности им необходима кислая среда. В продуктах, в которых кислоты мало они развиваться не смогут. Вторая особенность – для жизнедеятельности им необходим кислород. Для некоторых микробов кислород токсичен, а для дрожжей (и плесеней) – необходим.
Дрожжи являются микроорганизмами порчи. То есть вызывают брожение продукта, вздутие, изменение вкуса (продукт становится островатым на вкус), изменение запаха за счет частичного разложения белка.
Как и для других групп микроорганизмов в пищевой продукции установлены максимальные пределы для дрожжей. Их количество определяется ТР ТС 033/2013, приложение 8. Для каждой группы молочных продуктов установлены свои нормы.
Экспертизы нередко выявляют превышение по показателю уровня дрожжей. О чем это говорит?
О неблагополучном санитарном состоянии производства.
Значит при мойке оборудования не добились достаточной чистоты, или в цеху грязный воздух, или режимы прогрева молока были недостаточны для уничтожения дрожжей. В любом случае превышение по показателю дрожжи говорит о том, что продукт быстрее испортится, что у него будет измененный вкус. И скорее всего такой продукт вызовет вздутие живота, расстройство желудка, изменит баланс микрофлоры, что очень важно для людей с проявлениями дисбактериоза.
Где дрожжи должны быть обязательно
Но не справедливо говорить о дрожжахкак только о микроорганизме порчи. Однако есть и исключение. Один кисломолочный продукт.Это кефир!
В нем используются специальные молочные дрожжи вместе с молочнокислыми микроорганизмами. К сожалению, сейчас производители уходят от технологии настоящего кефира в пользу кефирных напитков. Но и для кефирных напитков обязательным является наличие молочных дрожжей.
Согласно Техническому Регламенту «О качестве и безопасности молока и молочных продуктов», в кефире должно быть не менее 1000 клеток дрожжей в 1 грамме. На упаковках обычно пишут «не менее 1·104 КОЕ/г».
И это совсем другие дрожжи! Они полезные, вырабатывают витамины группы В, способствуют высвобождению некоторых аминокислот, часть из которых незаменимы для организма человека.
По действующему законодательству может не хватать дрожжей, и это говорит, что перед вами не кефир. Но превышение это даже хорошо, значит, что молочные дрожжи развились в нужном количестве, и кефир должен иметь те самые классические приятные вкусовые характеристики!
Когда стоит обращать внимание на показатель уровня дрожжей
Если вы обратили внимание на показатель превышения дрожжей в других молочных продуктах – сразу смотрите на еще два показателя «плесени» и «БГКП». Обычно если санитарное состояние производство неблагополучно, то эти два показателя также повышены.
«Плесени» это плесневые грибы, их повышенное количество говорит о грязном воздухе производственных помещений. «БГКП» это кишечная палочка (расшифровывается «бактерии группы кишечных палочек»). Значит, что или сотрудники не моют руки, или используется грязная вода, или недостаточно безопасное сырье.
Если же превышение касается исключительно дрожжей, то стоит ознакомиться с протоколами и нормативом (он обычно также указан в протоколе). Исследование по показателю «дрожжи» в молочных продуктах несколько специфическое. И если, например, норматив не более 50, а в протоколе превышение всего на 2-3 единицы, то скорее всего на исследование попала неудачная партия, которую, возможно транспортировали или хранили в ненадлежащих условиях. Дрожжи очень быстро развиваются. И даже непродолжительное хранение пачки творога без холодильника может привести к резкому скачку роста дрожжей.

отчетный период с 19.06.2020 г. по 25.06.2020 г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 1137 проб, положительных – 18 проб;
- паратуберкулез крупного рогатого скота – 30 проб;
- хламидиоз крупного рогатого скота – 30 проб;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 783 пробы;
- хламидиоз мелкого рогатого скота – 35 проб;
- листериоз мелкого рогатого скота – 35 проб;
- инфекционный эпидидимит мелкого рогатого скота – 35 проб;
- бруцеллез свиней – 247 проб;
- хламидиоз свиней – 240 проб;
- бруцеллез лошадей – 115 проб;
- сап лошадей – 112 проб;
- случная болезнь лошадей – 74 пробы;
- инфекционная анемия лошадей – 74 пробы;
- бруцеллез пони – 2 пробы;
- сап пони – 2 пробы;
- бруцеллез собак – 4 пробы, положительных – 1 проба;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 46 проб, положительных –4 пробы;
- лептоспироз лошадей – 60 проб, положительных – 22 пробы;
- лептоспироз свиней – 171 проба, положительных нет;
- лейкоз крупного рогатого скота – 496 проб, положительных – 50 проб.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 35 проб:
* корма – 14 проб;
* пищевая продукция – 10 проб;
* вода – 3 пробы.
Также для радиологических исследований поступило 8 проб.
За отчетный период выявлено 4 положительных результата.
- В 1 пробе мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы-1.
- В 2 пробах питьевой воды выявлены содержание хлор-иона выше нормы – 1, повышенная жесткость – 2.

Жесткость воды: воздействие на здоровье и сантехнику
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 525 исследований, из них 1 положительный случай.
Органолептическая оценка качества пищевой продукции
Методические указания разработаны на основании нормативно – технической и технологической документации, исследований в данной области, а также отечественного и зарубежного опыта оценки качества пищевых продуктов.
Методические указания устанавливают порядок организации, проведения и оформления результатов органолептического анализа продукции общественного питания.
Методика проведения органолептического анализа продукции является обязательной и единой для использования на предприятиях общественного питания, в том числе службой контроля качества для специалистов пищевых лабораторий, осуществляющих контроль качества продукции общественного питания, а также для других организаций, в том числе территориальных органов Госстандарта, Госсаннадзора и правоохранительных органов.
Методика проведения органолептического анализа продукции устанавливает основные требования к помещению, используемым приборам, к материалам и специалистам.
Общие положения метода.
Органолептический анализ представляет собой исследование качества продукции с помощью органов чувств – зрения, обоняния, вкуса, осязания.
При соблюдении научно-обоснованных правил результаты органолептической оценки качества продукции по точности и воспроизводимости равноценны результатам, полученным при использовании инструментальных методов контроля.
Благодаря данному методу анализа можно быстро и просто оценить качество сырья, полуфабрикатов и кулинарной продукции, обнаружить нарушения рецептуры, технологии приготовления .
Точность, воспроизводимость и возможность сравнения результатов органолептического анализа зависит от выполнения определенных требований, а именно:
- Порядок и условия проведения анализа;
- Квалификация и навыка специалистов;
- Системы оценки результатов анализа.
Как упоминалось ранее у продуктов существуют показатели качества, выбор этих показателей при органолептическом анализе зависит от вида продукции и ее особенностей. Основными показателями данного анализа являются : внешний вид, цвет, запах, консистенция, вкус.
Внешний вид - комплексный показатель, который характеризует общее зрительное впечатление от изделия, и включает в себя ряд единичных показателей, как форма, состояние поверхности, однородность по размеру, и т.д
Цвет (окраска) – показатель внешнего вида, характеризующий впечатление, вызванное отраженными световыми лучами видимого цвета.
Запах – показатель качества, определяемый с помощью органов обоняния. Интенсивность запаха зависит от количества летучих веществ, выделяемых из продуктов и их химической природы.
Консистенция – показатель качества продуктов питания, который характеризует сумму свойств продукта, воспроизводимых зрительно и осязательно.
При оценке консистенции определяют:
- Агрегатное состояние (жидкое, твердое и т.д.);
- Степень его однородности (однородная, хлопьевидная, творожистая и т.д.);
- Механические свойства (хрупкость, вязкость, упругость, пластичность).
Вкус - важнейший показатель качества продукции, оказывающий решающее влияние на оценку ее качества.
Вкус вызывают вещества, растворимые в воде или слюне. На вкусовые ощущения оказывают влияние консистенция и запах блюд и изделий.
При оценке вкуса характеризуют его качественные признаки (горький, кислый, сладкий, соленый вкус) и интенсивность.
Аналитические методы органолептического анализа основаны на количественной оценке показателей качества и позволяют установить корреляцию между отдельными признаками. К аналитическим относят методы парного сравнения, треугольный, дуо-трио, ранговый, балловый и др.
Среди аналитических методов можно выделить группы качественных и количественных различительных тестов.
Методы качественных различий позволяют ответить на вопрос, есть ли разница между оцениваемыми образцами по одному из показателей качества (вкусу, запаху, консистенции, внешнему виду) или общему впечатлению о качестве, но не отвечают на вопрос, какова разница между образцами. К этой группе относятся методы сравнения: парного, треугольного, два из трех (дуо-трио), два из пяти. Они основаны на сравнении двух подобных образцов со слабо выраженными различиями. Образцы могут быть представлены в виде пары (парный метод), в виде проб из трех образцов (два из которых идентичны) или в виде проб из пяти образцов (один образец повторяется в пробе два раза, другой - три раза). Пробы должны быть закодированы. Методы применяют в тех случаях, когда следует убедиться, имеются ли различия между двумя образцами продукта. Эти тесты применяют также при отборе дегустаторов.
К качественным различительным тестам относятся методы индекса разбавления и метод scoring. Эти методы позволяют количественно оценить интенсивность определенного свойства или уровень качества продукта в целом.
Метод индекса разбавлений предназначен для определения интенсивности запаха, вкуса, окраски продукта по величине предельного разбавления. Метод состоит в том, что жидкий продукт подвергают ряду возрастающих разбавлений до получения концентрации, при которой отдельные показатели не улавливаются органолептически. Показатель (индекс) вкуса, запаха, окраски выражается числом разбавлений или процентным содержанием исходного вещества в растворе.
Метод scoring( с англ. отсчет очков) основан на использовании шкал графических и словесных. Дегустатору предлагают два образца продукта, для которого оцениваемая характеристика имеет минимальное и максимальное значение, и один образец, для которого интенсивность характеристики не известна. При сравнении третьего образца с двумя первыми оценивается относительное значение характеристики и отмечается на шкале перпендикулярным штрихом с учетом расстояния от обоих концов.
Метод scoring (баллов) позволяет количественно оценивать качественные признаки продуктов и открывает большие возможности для изучения корреляции между органолептическими свойствами продуктов и объективными параметрами, измеряемыми инструментальными методами.
Следует отметить, однако, что наиболее объективную информацию можно получить, только используя измерительные методы. По сравнению с органолептическим анализом они более длительные и сложные, но лишены субъективности эксперта.

отчетный период с 04.06.2020 г. по 11.06.2020.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллёз крупного рогатого скота – 1069 проб;
- бруцеллёз мелкого рогатого скота – 399 проб;
- бруцеллез свиней - 52 пробы;
- хламидиоз свиней -82 пробы;
- бруцеллез лошадей – 17 проб;
- сап лошадей - 8 проб;
- случная болезнь лошадей –4 пробы;
- инфекционная анемия лошадей – 4 пробы;
- лейкоз крупного рогатого скота –552 пробы, положительных – 102 пробы;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 116 проб, положительных –2 пробы;
- лептоспироз свиней – 52 пробы, положительных –нет;
- лептоспироз лошадей –17 проб, положительных – 14 проб;
- лептоспироз пони – 1 проб, положительных – 1 проба.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 36 проб:
* корма – 5 проб;
* пищевая продукция – 22 пробы;
* вода – 3 пробы.
Также для радиологических исследований поступило 6 проб.
За отчетный период выявлено 4 положительных результата.
- В 1 пробе мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы-1.
- В 2 пробах питьевой воды выявлены содержание хлор-иона выше нормы – 2, повышенная жесткость выше нормы – 1.

Хлориды - соединения хлора с другими элементами. Хлориды обладают высокой растворимостью и поэтому присутствуют во всех природных водах в основном в виде кальциевых, натриевых и магниевых солей. Их попаданию в воду способствует вымывание поваренной соли и прочих хлористых соединений из пластов пород вулканического происхождения. Огромное число хлоридов содержится в морях и океанах. Посредством атмосферного круговорота воды, осадков и с подземными течениями соли попадают во все остальные водоёмы. Однако немало хлоридов поступает в воду с промышленными и хозяйственно-бытовыми стоками. Повышенная концентрация хлоридов даёт воде солёный вкус и делает её непригодной для питья, хозяйственных нужд и использования в технических целях.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1221 проба материала, проведено 1601 исследование, получено 40 положительных случаев.
Аэромоноз – это бактериальная инфекция, которая также известна под названием геморрагическая септицемия или «краснуха».Она быстро передаётся от одной особи к другой и прогрессирует с большой скоростью, поэтому важно вовремя определить болезнь и начать лечение, чтобы не допустить летального исхода и снизить количество возможных осложнений.Возбудителем заболевания является бактерия аэромонаспунктата. Наиболее подвержены данному недугу такие рыбы, как барбусы, данио, карпы, плотва и.т.д. Диагноз: ставится на основании эпизоотологических, клинических и патологоанатомических данных и результатов бактериологического исследования (выделения вирулентной культуры возбудителя, биопроба на здоровых карпах).
Причинами аэромоноза являются:
1. В открытом водоёме краснуха возникает в результате большого количества рыб. Из-за того, что пруд не содержится в надлежащей чистоте или же «бактерии», не успевают перерабатывать продукты жизнедеятельности его обитателей, вода становится грязной;
2. В аквариумах в большинстве случаев заражение происходит из-за больных рыб. При этом другие особи даже могут не контактировать с больным животным – достаточно находиться с ним в одной воде. Ведь источником бактерии служат выделения этих рыб или же их останки (например, чешуя);
3. Если в аквариуме не наблюдается больных рыб, то заражение может произойти из-за корма, грунта или почвы в том случае, если они привезены с естественного водоёма.
Аэромоноз – крайне опасное заболевание, которое очень трудно поддаётся лечению. Поэтому зачастую спасти можно только внешне здоровых рыб, у которых начались едва уловимые изменения в поведении. В том случае, если у животного наблюдаются симптомы (а особенно, появление красных пятен и ерошение чешуи), то от такой рыбы лучше избавиться, поскольку лечение будет неэффективно. Лечение рекомендуется совершать в общем аквариуме. Такие меры помогут вылечить больное животное и провести профилактику для здоровых рыб. Терапию проводят медикаментозно.
Для профилактики аэромоноза не существует особых правил. Все рекомендации, которых следует придерживаться, основаны на соблюдении санитарно – гигиенических норм в месте обитания рыб:
- Частая смена воды и тщательная обработка предметов интерьера;
- Контроль за происхождением почвы, грунта и пищи;
- Внимательное наблюдение за поведением рыб;
- Хорошая аэрация.
Важно понимать, что большая часть заболеваний у рыб возникает в результате плохих условий их нахождения и недостаточного контроля со стороны хозяина. Поэтому, чтобы сохранить обитателей водоемов здоровыми, а сами места обитания рыб красивыми, нужно тщательно за ним ухаживать и не пропускать первые подозрительные сигналы.
За отчетный период 05.06.2020-11.06.2020г. в отделе ВСЭ и диагностики проведено исследований:492 исследования. В ходе исследований было выявлено 13 положительных случаев. В 6 пробах сыворотки крови выявлены антитела к цирковирусу свиней 2 типа.
Цирковирусная инфекция свиней (цирковироз свиней, синдром послеотъемногомультисистемного истощения, СПМИ) – инфекционная болезнь свиней, главным образом поросят-отъёмышей, вызываемая цирковирусом и характеризующаяся отставанием в росте и развитии, поражением кожи, развитием респираторного синдрома.
Возбудитель. Возбудитель – ДНК-содержащий вирус рода Circovirus из семейства Circoviridae (данное семейство состоит из одного рода Circovirus). Цирковирус свиней, вызывающий у поросят СПМИ, обозначают как ЦВС типа 2, а цирковироз свиней, выделенный в 1974г. как нецитопатогенныйконтаминант перевиваемой культуры клеток почек поросят, как ЦВС типа 1. Геном вируса представлен односпиральной кольцевой молекулой ДНК. Вирус культивируется в культуре тканей свиней, а также клетках Vero, не вызывая ЦПД. Возбудитель цирковироза продуцирует образование вируснейтрализующих антител, обладает иммунодепрессивным действием. Он поражает иммунокомпетентные органы и клетки организма, размножаясь в них. Цирковирусыустойчивы к растворителям липидов (эфиру, хлороформу, этанолу и др.); к действию высоких температур – стабильны при 60С в течение 30минут; к различным детергентам и дезинфектантам.
Эпизоотологические данные. Болезнь распространена в странах с развитым свиноводством (Германии, Канаде, США, Ирландии, Франции, Испании). В настоящее время антитела к ЦВС-2 обнаружены у свиней практически во всех хозяйствах, а число серопозитивных животных может достигать 100%. Чаще заболевают поросята 6-14-недельного возраста, реже месячного и 4-6-месячного возраста. Источник возбудителя инфекции – больные или латентно инфицированные свиньи различных возрастных групп, выделяющие вирус с фекалиями, мочой, слюной, спермой, истечениями из носа и глаз. Основной путь передачи инфекции – респираторный, но не исключена вертикальная передача вируса от свиноматки плодам. Активизирует инфекционный процесс иммунизация поросят (особенно живыми вакцинами), а также ассоциированная инфекция. Цирковирусная инфекция не поражает животных, находящихся в отдельных боксах. Заболеваемость ЦВС составляет 5-20%, в отдельных случаях 50-70%. Летальность- 70-80%.
Патогенез. Попадая в организм животного, вирус размножается, в основном, в клетках лимфоидной ткани (тимусе, селезенке, л/узлах), а также слизистой оболочке носа, легких; тонком кишечнике, печени, почках, поджелудочной железе и ассоциируется с макрофагами/моноцитами, гистиоцитами, тимусными макрофагами. Это приводит к иммунодепрессии, присоединению вторичной инфекции и гибели поросят.
Клинические признаки. Инкубационный период составляет 3-4 недели. Основные клинические признаки – отставание в росте и истощение. Также наблюдают угнетение, одышку, диарею, цианоз ушей, анемичность и желтушность кожи, дерматит, иногда отмечают атаксию, парез конечностей, врожденный тремор, внезапную гибель поросят. В некоторых случаях болезнь протекает латентно.
Патологоанатомические изменения. Трупы истощены, кожа белого или желтого цвета. Л/узлы увеличены в 3-5 раз, на разрезе белые и сочные. Легкие плотные, с участками красного цвета, мясистой консистенции. Почки увеличены, серого цвета, с кровоизлияниями в корковом слое, есть признаки нефрита. Печень с признаками гепатита, имеет пестрый или мозаичный вид. Селезенка несколько увеличена, мясистой консистенции. В желудке и кишечнике бывают язвы. При гистологическом исследовании отмечают увеличение количества макрофагов и уменьшение лимфоцитов в лимфоидных органах, а также интерстициальную пневмонию. В макрофагах воспалительных очагов обнаруживают округлой формы базофильные тельца-включения, представляюшие собой скопления ЦВС-2.
Диагноз. Предварительный диагноз ставят комплексно, окончательный устанавливают на основании выделения вируса в первичных культурах клеток свиной почки. Для уточнения диагноза на ЦВС проводят идентификацию вируса, выявляют специфические антитела в РН, непрямойиммунофлюоресценции, ИФА. Для обнаружения ЦВС-2 используют тест-систему ЦВС для определения цирковируса свиней. Необходимо СПМИ дифференцировать от репродуктивно-респираторного синдрома, гемофилезной плевропневмонии, пневмоний, вызванных микоплазмами, хламидиями, сальмонеллами, стрептококками, болезни Ауески, лептоспироза.
Лечение. За рубежом разрабатывается сыворотка крови взрослых свиней, содержащая антитела к ЦВС-2 для лечения и профилактики СПМИ. По предварительным данным, её введение 3-4 месячным поросятам снижает риск заражения цирковирусом в несколько раз, а применение сыворотки в начальной стадии заболевания способствует выздоровлению до 50% иммунизированных животных.
Иммунитет изучен недостаточно, у свиней - реконвалесцентов образуются вируснейтрализующие антитела.
Профилактика и меры борьбы. Основные меры профилактики заболевания направлены на недопущение заноса возбудителя инфекции из неблагополучных хозяйств, обеспечение нормального физиологического статуса и высокой резистентности животных, осуществлении строгого контроля за наличием микотоксинов в кормах. В случае установления в хозяйстве цирковирусной инфекции рекомендуется замена трехфазной системы выращивания свиней на двухфазную. При этом поросят после отъема оставляют в станках до следующего опороса, а в 3-4- месячном возрасте переводят в помещение для откорма. В небольших хозяйствах следует проводить туровые опоросы, разрыв между турами должен быть не менее 3 месяцев. Не рекомендуется вакцинировать поросят 8-13-недельного возраста какими-либо вакцинами (особенно живыми). При массовой заболеваемости поросят и их гибели необходимо применять сыворотку реконвалесцентов (свиней откорма). Можно использовать тканевую инактивированную вакцину, изготовленную из «местного» материала. Однако, учитывая высокую устойчивость вируса цирковироза к инактивации, необходимо строго контролировать технологический процесс во избежание перезаражения поголовья свиней некачественным препаратом.




