отчетный период с 29.05.2020 г. по 04.06.2020 г.

За отчетный период специалистами серологического отдела ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория» проведено исследований на:
 - бруцеллёз крупного рогатого скота – 1864 проб, положительных – 26 проб;
- бруцеллёз мелкого рогатого скота – 154 пробы;
- бруцеллёз свиней – 121 проба;
- бруцеллёз собак – 2 пробы;
- хламидиоз свиней – 128 проб;
- хламидиоз мелкого рогатого скота – 15 проб;
- листериоз мелкого рогатого скота – 1 проба;
- бруцеллёз лошадей – 178 проб;
- сап лошадей – 200 проб;
- случная болезнь лошадей – 10 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 10 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 83 проб, положительных – 5 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 101 проба, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 196  проб, положительных – 56 проб;
- лептоспироз свиней – 130 проб, положительных – 1 проба;
- лейкоз крупного рогатого скота – 1089 проб, положительных – 326 проб.


За отчетный период в отдел химических исследований поступило 47 проб:
* пищевая продукция – 32 пробы;
* вода – 1 проба;
* пат.материал (отравление) – 2 пробы.
Также для радиологических исследований поступило 12 проб.

 За отчетный период выявлено 2 положительных результата.

В 2 пробах патологического материала от пчел обнаружены фосфорорганические пестициды.

Защитить пчел от отравления пестицидами 

Медоносные пчелы обеспечивают опыление 80–95 % цветков энтомофильных растений. На долю диких насекомых-опылителей приходится от 5 до 20 % этой работы. Благодаря пчелам урожайность гречихи, подсолнечника, люцерны, клевера, садовых, овощных, бахчевых и других культур повышается на 50–70 %. Деятельность пчел распространяется и на кормовые культуры, что является основанием говорить о связи пчеловодства с кормопроизводством и, следовательно, животноводством.
В мире спрос на медоносных пчел как опылителей огромен. Однако сейчас вызывает беспокойство их дальнейшая судьба из-за массовой гибели, которой дали определение «коллапс пчелиных семей». Многие пчеловоды впервые столкнулись с таким явлением, как полное отсутствие мертвых пчел в ульях и вокруг них. Таинственное их исчезновение отмечается, как правило, ближе к осени. Пчелиная семья неожиданно пропадает из улья, оставляя медовые запасы, матку и даже невыведенное потомство, которые обречены на гибель.
Имеющиеся сведения о причинах гибели пчел разрозненны и противоречивы: клещ варроа, нозематоз, пестициды, генетически модифицированные культуры и др.
 Учеными были высказаны предположения, что причиной массовой гибели пчел могло стать применение фермерами инсектицидов из группы неоникотиноидов: имидаклоприда, клотианидина, тиаметоксама (относятся к 1-му классу опасности для пчел). Предполагается, что у пчел, потребляющих пыльцу или пергу с остатками перечисленных препаратов, нарушается способность к обучению и запоминанию. В результате они теряют ориентацию в полете, не могут вернуться в улей и гибнут вдали от него. Ученые европейских стран, изучая воздействие пестицидов на здоровье пчел, считают, что одной из главных причин массовой гибели пчел и загрязнения среды их обитания является широкомасштабное применение химических препаратов в сельском хозяйстве. Если раньше эти препараты убивали насекомых «наповал», то теперь они накапливаются в почве и растениях, попадают в ульи в малых дозах вместе с нектаром и пыльцой, снижают естественный иммунитет пчел к заболеваниям, что приводит к их гибели.
Из всех групп пестицидов для пчел особенно губительны инсектициды и акарициды, составляющие 23 % от количества пестицидов, применяемых на территории РФ. Из них 56,4 % относятся к 1-му классу опасности, при применении которых необходимо строгое соблюдение определенного экологического регламента: обработку растений допускается проводить только вечером после захода солнца при скорости ветра 1–2 м/с; обрабатываемый участок не должен находиться ближе 4–5 км от мест размещения пасек; продолжительность изоляции вылета пчел из улья, при всех предпринимаемых мерах сохранения их жизни, составляет от 4 до 6 суток. Ко 2-му классу опасности (среднеопасные) относятся 5,1 % инсектоакарицидов, к 3-му (малоопасные) – 27 %. Гербициды, занимая основное место среди других средств защиты растений, в основном (98,2 %) относятся к малоопасным для пчел препаратам. Однако гербицидами обрабатывают значительно бóльшую площадь и в течение длительного периода (с марта по сентябрь), совпадающего с активной жизнедеятельностью пчелиных семей. В результате массовых и не всегда правильно выполненных обработок сельскохозяйственных культур погибают рабочие особи, семьи, а иногда и целые пасеки.
В период сбора нектара и пыльцы пчелы становятся самым уязвимым звеном в биоценозе. Под действием пестицидов пчелиные семьи теряют силу, снижают продуктивность или гибнут. При отравлении высокотоксичными препаратами они могут погибнуть уже в поле, а затем в улье или на территории пасеки. Имеет место длительное бессимптомное течение токсикоза как летом, так и зимой в случае поедания пчелами меда и перги с сублетальными дозами пестицидов. В таких случаях отмечают различные нарушения пищеварения, нозематоз, гнилец и другие патологии.
За более чем 20-летний период была изучена степень опасности более 200 химических препаратов, установлены сроки их детоксикации на растениях после обработки и изоляции пчел для профилактики их гибели, а также разработаны основы пасечной и лабораторной диагностики химического токсикоза, предложен ряд химических и биологических методов определения остаточных количеств препаратов в пчелах, меде, перге.
Исходя из многолетнего опыта, считается, что класс опасности пестицидов для пчел, особенно инсектицидов, акарицидов и гербицидов, не может устанавливаться по данным лабораторных опытов. Достоверно действие препаратов можно определить только в полевых условиях с использованием пчелиных семей при многократной повторности, так как поведение пестицидов в биоценозе отличается от их действия на пчел в лабораторных условиях.
Также разработаны приемы оказания помощи пчелиным семьям, пострадавшим от отравления. В ходе восстановительной терапии при химическом токсикозе рекомендуется использовать аскорбиновую кислоту, марганцовокислый калий и йод в дозах, хорошо переносимых пчелами.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 758 проб материала, проведено 960 исследований, получено 22 положительных случая.
В поступившей в отдел бактериологии и паразитологии для исследования фекалии кроликов были обнаружены ооцистыэймерий(эймериоз).
Эймериоз (кокцидиоз) кроликов вызывается девятью видами эймерий, из которых наиболее патогенными являются Eimeriastiedae, Е. perforans, Е. media, Е. magna из семейства Eimeriidae. Они паразитируют преимущественно в разных отделах кишечника, а один вид (Е. stiedae) - в желчных протоках печени.
Эймериоз кроликов распространен почти повсеместно. Ооцисты у молодняка обнаруживают с 8-10-дневного возраста. Источником инвазии крольчат являются кормящие матери - носители кокцидий, больные или переболевшие крольчата и взрослые кролики. Резервуаром возбудителей могут быть загрязненные ооцистами помещения, клетки, выгульные дворики, корма, вода, предметы ухода. Ооцисты кокцидий нередко могут заноситься в крольчатники с обувью людей, с металлами, лопатами или другими предметами ухода, а также грызунами, птицами и насекомыми. Распространению кокцидиоза кроликов способствуют: скученное содержание в сырых помещениях с резкими колебаниями температуры, неправильное комплектование групп животных, недоброкачественные корма и резкая смена их. Вспышки кокцидиоза чаще бывают весной или осенью, а на ферме промышленного типа в любое время года.
Инкубационный период от 4 до 12 дней. Один из ранних признаков - резкое снижение веса крольчат. Затем у них появляется вялость, общее угнетение, отказ от корма. Больные лежат на вздутом брюшке при пальпации оно болезненно. Слизистые оболочки анемичные. Появляется понос, испражнения жидкие, со слизью, кровянистые. Частое выделение мочи - полиурия. Крольчата отстают в росте, волосяной покров теряет блеск. Нередко развиваются ринит и конъюнктивит.
Диагноз ставят на основании эпизоотологических, клинических й патологоанатомических данных. Обязательно исследуют также фекальные массы от больных животных, а от павших и узелки печени на наличие кокцидий.
При появлении первых клинических признаков кроликам назначают сульфаниламиды (сульфадимезин или норсульфазол), сульфадиметоксин, сульфапиридазин одновременно с мономицином в дозе 25 ООО ЕД на килограмм массы животного.
Для профилактики заболевания кроликов содержат в клетках с решетчатыми полами в сухих, хорошо вентилируемых помещениях или в открытых вольерах. Ежедневно проводят уборку навоза, его необходимо обрабатывать биотермическим способом. Большое значение в профилактике эймериоза кроликов имеет полноценное кормление. В период отъема молодняка от матерей назначают комплексную химиопрофилактику норсульфазолом или сульфапиридазином в сочетании с мономицином в лечебных дозах.
Резкая смена кормов ведет к расстройству функций пищеварительного канала. Поэтому переход с сухих кормов на сочные (зеленую) массу) в весенне-летний период осуществляют постепенно, в течение 10 дней. В период профилактического карантинирования обрабатывают завезенных кроликов эймериостатиками, контролируя эффективность копрологическими исследованиями. Больных изолируют и лечат.


За отчетный период 29.05.2020-04.06.2020г. в отделе ВСЭ и диагностики проведено исследований: 705 исследований. В ходе исследований было выявлено 39 положительных случаев.
Микробиологический анализ питьевой воды нужен для того, чтобы проверить, есть ли в воде опасные микроорганизмы. В воде могут находиться яйца паразитов, бактерии и вирусы, вызывающие различные инфекционные заболевания. Они попадают в воду либо естественным путем, из природных источников (из других источников воды, в том числе подземных, из почвы, от случайно оказавшихся в воде больных животных, их трупов или продуктов жизнедеятельности и т.д.), либо в результате деятельности человека (например, после неправильной утилизации бытовых отходов или испражнений).
Бактериологическое исследование воды поможет выявить болезнетворных микробов и правильно подобрать способ очистки, чтобы избавиться от них. Бактериологический анализ воды часто проводят в рамках инженерно-экологических изыскания для строительства.
Патогенные микроорганизмы наносят непосредственный вред человеку, так как являются возбудителями многих заболеваний. Бактериологический анализ в лабораторных условиях определит виды вирусов, бактерий или гельминтов и в каком процентном соотношении они присутствуют в воде. Он проводится в испытательных центрах, где можно оценить качество не только природной, но и при необходимости водопроводной воды. Вовремя обнаруженные превышения установленных норм можно нейтрализовать и предотвратить дальнейшее распространение патогенной среды с помощью современных методов обеззараживания.
Микробиологические анализы сточной воды и жидкости, подаваемой через системы водоснабжения или получаемой из колодцев, скважин, необходимы для выявления целого комплекса потенциально опасных веществ. К числу наиболее часто встречающихся примесей можно отнести:

 

  • колиформные бактерии (обычные и термотолерантные);
  • споры сульфитредуцирующей бактериальной флоры;
  • общую микробную массу.

 

Своевременное проведение лабораторных исследований жидкостей, используемых для питья, гигиенических или иных целей, позволяет вовремя выявить источники бактериологической опасности, а также дает возможность обеспечить оптимальную скорость устранения подобных нарушений. Достоверная информация помогает сделать жизнь человека безопаснее.