отчетный период с 06.11.2020 г. по 12.11.2020 г.
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 1649 проб;
- паратуберкулез крупного рогатого скота – 68 проб;
- хламидиоз крупного рогатого скота – 102 пробы, положительных - 1;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 624 пробы;
- бруцеллез свиней – 99 проб;
- хламидиоз свиней – 99 проб;
- бруцеллез лошадей – 63 пробы;
- сап лошадей – 45 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 24 пробы;
- случная болезнь лошадей – 24 пробы;
- бруцеллез собак – 1 проба;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 226 проб, положительных - 6;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 49 проб, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 152 пробы, положительных - 3;
- лептоспироз лошадей – 41 проба, положительных-2;
- лейкоз крупного рогатого скота – 964 пробы, положительных – 130 проб.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 56 проб:
* корма – 11 проб;
* пищевая продукция – 31 проба;
* вода – 5 проб;
* дез. растворы – 1 проба.
Также для радиологических исследований поступила 8 проб.
За отчетный период выявлено 18 положительных результатов.
1. Установлено несоответствие крови по 18 биохимическим показателям:
ниже нормы – 15: щелочной резерв – 3; общий кальций – 2; неорганический фосфор – 2; альбумины – 3; альфа-глобулины – 2; бета-глобулины – 3.
выше нормы – 3: гамма-глобулины – 3.
Лошадиная кровь. Определение содержания неорганического фосфора.
Количество крови, а в некоторой степени и ее состав, зависит от физиологического состояния организма, возраста, пола, условий кормления животного, даже времени года
Неорганический фосфор содержится в основном в костной, а также в мышечной и нервной тканях, крови. Входит в состав фосфатного буфера крови, участвует в регуляции кислотно-щелочного равновесия, а также в углеводном, жировом и белковых обменах.Определение неорганического фосфора в сыворотке крови с ванадат-молибденовым реактивом проводят по Методам ветеринарной клинической лабораторной диагностики (Справочник под редакцией И.П. Кондрахина).
В основе метода лежит то, что фосфор в безбелковом фильтрате дает лимонно-желтое окрашивание с ванадат-молибденовым реактивом. Степень окраски измеряют на фотоэлектроколориметре «КФК-3-01-«ЗОМЗ».
Нормативное значение неорганического фосфора в крови КРС составляет от 4,2 до 5,5 мг%.
Комплексный физико-химический анализ является своеобразным индикатором процессов, происходящих в организме. Стоит отметить, что именно биохимические исследования не способны в полной мере отразить состояние животного. Однако, именно они могут стать первоначальной стадией выявления многих болезней и отклонений в организме животного и последующих бактериологических, гематологических, токсикологических исследований.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступила 1491 проба материала, проведено 1922 исследования, получено 10 положительных результатов.
Бешенство животных - вирусное заболевание, характеризующееся тяжелым поражением периферической, нервной системы. Болезнь неизбежно приведет к летальному исходу. Относится к природно-очаговым, периодичным вирусным заболеваниям. Инфекции подвержены все виды теплокровных, домашних, с/х животных (КРС, лошади, овцы, свиньи), а также большинство видов птиц и человек.
Болезнь провоцирует РНК-содержащий пулевидный вирус сем. Rhabdoviridae (рабдовирусы). Существует четыре серотипа возбудителя, которые широко распространены в окружающей среде. Вирус бешенства устойчив к воздействию внешних факторов во внешней среды, некоторым химическим дезсредствам, низким температурам. При благоприятных условиях может сохраняться в трупах животных от нескольких месяцев до нескольких лет. Моментально погибает при температуре 100 градусов.
Проникнув в организм животных, вирус бешенства локализуется изначально в слюнных железах, лимфатических узлах, после чего с кровотоком проникает в другие органы, в частности, в спинной, головной мозг (аммоновы рога, мозжечок), вызывая необратимые изменения в функционировании ЦНС.Резервуаром опасного вируса в естественной среде являются дикие животные: волки, лисицы, шакалы, еноты, песцы, енотовидные собаки, летучие мыши, грызуны (полевки, крысы), ежи, другие виды домашних плотоядных. Локализация природных очагов инфекции соответствует особенностям расселения диких животных, которые склонны к дальним миграциям.
С учетом характера резервуара возбудителя бешенства различают эпизоотии данной инфекции городского и природного типов. В черте города инфекцию распространяют бездомные кошки, собаки, латентные вирусоносители.
Заражение вирусом бешенства с/х, домашних животных происходит при непосредственном контакте с инфицированной особью. Вирус бешенства передается через укус. Возбудитель проникает в организм через поврежденные слизистые, кожные покровы. Заражение животных смертельно опасной инфекцией возможно аэрогенным (воздушно-капельным), алиментарным путем.
Во внешнюю среду вирус бешенства выделяется преимущественно со слюной, истечениями из носа, глаз.
Для бешенства животных характерна периодичность, сезонность. Наиболее часто вспышки бешенства данного заболевания регистрируют осенью, ранней весной, а также в зимний период. В группу риска попадают не вакцинированные животные, ослабленные, истощенные особи, молодняк, содержащийся в неблагоприятных условиях.
Симптомы, течение болезни: С момента инфицирования характерные признаки бешенства у животных могут проявиться через 3–-6 дней до пяти-восьми5–8 недель, что зависит от общего физиологического состояния, количества вируса в организме инфицированных особей, вирулентности возбудителя, состояния иммунной системы. В некоторых случаях при бешенстве животных первые проявления могут возникнуть через год после заражения. При этом зараженные инфицированные особи являются скрытыми вирусоносителями, представляя реальную опасность для здоровых особей.
Бешенство у домашних животных может протекать в буйной, тихой, паралитической, абортивной, атипичной формах, каждая из которых имеет свою характерную симптоматику.При буйной форме животные постоянно расчесывают, вылизывают, выгрызают место укуса., на теле появляются расчесы, ранки, царапины. Больные животные начинают поедать несъедобные предметы (землю, древесину, камни, собственные испражнения). Постепенно развивается паралич мышечных структур глотки, что приводит к затрудненному глотанию. Животные отказываются от корма, воды. Отмечают обильную саливацию, нарушение координации движений, иногда, косоглазие. Ухудшается состояние шерстного покрова.
При переходе инфекции в стадию возбуждения, которая продолжается около трех3-–четырех4 суток, симптоматика становится более выраженной. Животные выглядят возбужденными, неадекватно реагируют на внешние раздражители, становятся агрессивными. Собаки не узнают своих хозяев, проявляют бесконтрольную агрессию. Приступы буйства. Паралитическая (тихая) форма бешенства. При данной форме вирусного заболевания возбуждение выражено слабо или может полностью отсутствовать. Животные не проявляют агрессии, выглядят угнетенными, апатичными. Характерный признак тихой формы бешенства —– обильная саливация, расширенные зрачки, отвисание нижней челюсти, паралич глотки, языка. Глотание затруднено.Атипичная форма бешенства. При данной форме инфекции стадия возбуждения полностью отсутствует. В начале болезни возможно незначительное повышение температуры. Аппетит понижен. Животные отказываются от пищи, воды, что приводит к быстрой потере веса. Отмечают нарушения в работе органов пищеварительной системы. Присутствуют симптомы геморрагического гастроэнтерита.
Диагноз ставят после проведения комплексного осмотра, учитывая общую симптоматику, эпизоотологическую обстановку по бешенству в регионе, и по результатам лабораторных исследований.
Лечения от бешенства на сегодняшний день не существует, поэтому болезнь в 100% случаях заканчивается летальным исходом.
За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики поступило 509 проб, проведено 825 исследований.В ходе исследований было выявлено 75 положительных случаев (лейкоз ИФА).
Лейкоз крупного рогатого скота — это хроническая инфекционная, медленно протекающая болезнь опухолевой природы. Болезнь сопровождается поражением органов кроветворной системы, появлением повышенного количества лимфоцитов в крови, иногда опухолеобразным поражением органов и тканей организма.
Возбудитель — вирус лейкоза крупного рогатого скота. Во внешней среде — малоустойчив. Кипячение убивает вирус мгновенно.
Источник инфекции является зараженное животное на всех стадиях течения болезни.
Передача вируса происходит через кровь, молоко, биологические жидкости, предметы, содержащие лимфоидные клетки животного, а также сперму больных лейкозом быков. Заражение телят происходит после рождения — через молоко. Заразившись однажды, животное остается инфицированным пожизненно.
Распространению заболевания способствует совместное содержание и пастьба здоровых и зараженных животных, выпаивание телятам молока от больных лейкозом коров, осеменение коров спермой от зараженных быков, использование в стаде быка (вольная случка).
Для лейкоза характерна длительность инкубационного (скрытого) периода от 2 до 6 лет. В этот период лейкоз определяется в ветеринарных лабораториях серологическими и вирусологическими исследованиями, вот почему и обязывают владельцев проводить исследования с 6-ти месячного возраста.
отчетный период с 30.10.2020 г. по 05.11.2020 г.
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 305 проб;
- паратуберкулез крупного рогатого скота – 70 проб;
- хламидиоз крупного рогатого скота – 69 проб;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 458 проб;
- инфекционный эпидидимит мелкого рогатого скота – 5 проб;
- бруцеллез свиней – 43 пробы;
- хламидиоз свиней – 42 пробы;
- бруцеллез лошадей – 6 проб;
- сап лошадей – 6 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 4 пробы, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 7 проб, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 12 проб, положительных нет;

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 18 проб:
* корма – 9 проб;
* пищевая продукция – 5 проб;
* биоматериал (кровь) – 3 пробы;
* дез. растворы – 1 проба.
Левомицетин (Хлорамфеникол) в продуктах питания

В лунки вносят растворы стандартов или проб и конъюгат хлорамфеникола.
Свободный хлорамфеникол и конъюгированный с ферментом конкурируют за места связывания с антителами. Все несвязанные молекулы конъюгата затем удаляют на этапе отмывки. Конъюгат преобразует хромоген в окрашенные в синий продукты реакции. Внесение стоп-раствора ведет к изменению окраски от синей к желтой. Измерения выполняют фотометрически при длине волны 450 нм. Оптическая плотность обратно пропорциональна концентрации хлорамфеникола в пробе.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 601 проба материала, проведено 803 исследования, получено 3 положительных результата.
В поступившем в отдел бактериологии и паразитологии патологическом материале от поросёнка был обнаружен возбудитель колибактериоза (EcherichiaColi)
Причина колибактериоза: патогенная грамотрицательная подвижная палочка Escherichia coli. На данный момент известно около 9 тысяч серологических вариаций эшерихий, которые определяют их тип. Но, только некоторые из видов инфицируют организм животных. Широко распространены энтеротоксигенные (устойчивы к антибиотикам) и энтероинвазивные штаммы эшерихий. Бактерии весьма устойчивы во внешней среде, в почве и воде сохраняют жизнеспособность до 60-80 суток, в каловых массах до 30 дней. При кипячении гибель наступает сразу, при нагреве до 80 градусов палочка погибает в течение 15 минут. Источником колиинфекции служат больные и переболевшие свиньи. Нередко вспышку заболевания создают свиноматки, носители патогенного штамма эшерихий, выделяя бактерии с калом, мочой, молозивом. Это происходит непосредственно после опороса — восприимчивый молодняк подвергается заражению в первые несколько суток после рождения. Передача возбудителя также осуществляется через воду, общие предметы обихода и зараженный корм. В таком случае инфицирование происходит после перехода на самостоятельное питание.
Септическая форма. Наблюдается у только родившихся и сосущих поросят. Болезнь протекает остро и сверхостро. Смертность быстрая и высокая (на протяжении 24-48 часов). Развитие обусловлено проникновением бактерий в кровеносное русло с последующим размножением. Внешне проявляется: отказом от пищи; общим угнетением; высокой стойкой температурой, далее – нарушением координации; дыхательной недостаточностью (цианоз слизистых оболочек), и как следствие нарушением в работе сердца; конъюнктивитом; сильной диареей или обезвоживанием и отсутствием диареи (кал сначала разжижается, становится серо-белого цвета, с прожилками крови, а далее становится водянистым и пенится);судорогами;септицемией.
Энтеротоксемическая форма. Отмечается в послеотъемный период, протекает остро и проявляется через период от 3 до 12 часов. Смертельные исходы отмечаются почти в 50% случаев. Характеризуется проникновением E.coli в тонкий отдел кишечника и проявляется токсическими и нейротоксическими симптомами: потеря аппетита; поражение ЦНС – повышенная возбудимость, острая реакция на прикасания, подергивание головы и проходящие судороги нижней челюсти, хождение по кругу; диарея; коллапс.
Энтеритная форма. Хронически и подостро протекающая инфекция. Характеризуется низким процентом летальности. Проявляется симптомами: вялость, апатичность; отсутствие аппетита; сильная диарея; дегидратация.
Профилактика..Зачастую, колибактериоз – это бич неблагоприятных хозяйств с признаками антисанитарии. При вспышке заболевания первостепенно необходимо наладить санитарную обстановку в свинарниках, чтобы исключить возможность перемещения инфекции внутри хозяйства. Для наиболее благоприятного исхода заболевания, либо его предотвращения, профилактическая стратегия основана на комплексном подходе, который воздействует на: источник развития инфекции – больной молодняк и супоросные свиноматки непосредственно перед родами; пути передачи инфекции – помещения для животных, инвентарь, наличие грызунов; восприимчивые особи – новорожденные поросята и поросята после отъема.
отчетный период с 16.10.2020г. по 22.10.2020г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 3773 пробы;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 771 проба;
- хламидиоз мелкого рогатого скота – 78 проб, положительных – 14 проб;
- бруцеллез свиней – 31 проба;
- хламидиоз свиней – 31 проба;
- бруцеллез лошадей – 79 проб;
- сап лошадей – 92 пробы;
- случная болезнь лошадей – 50 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 50 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 198 проб, положительных – 37 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 34 пробы, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 31 проба, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 76 проб, положительных – 15 проб;
- лейкоз крупного рогатого скота –1497 проб, положительных – 335 проб.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1945 проб материала, проведено 2232 исследования, выявлено 86 положительных случаев.
Поступивший в отдел бактериологии и паразитологии материал (мясо от вынужденно убитого животного) исследовался на протейную инфекцию. В ходе исследования была выделена бактерия из рода Протеус (протей) – Proteus vulgaris.Протейная инфекция – факторная, энтеробактериальная болезнь животных, в том числе птиц, характеризующаяся нарушением пищеварения.
Протей - факультативный аэроб, оптимальная
температура культивирования 25-37 0С. Хорошо растет на обычных питательных средах с образованием гнилостного запаха.
Род Proteus включает четыре вида: P. vulgaris, P. mirabilis, P. morganil и P. retigeri. В этиопатогенезекишечных расстройств у животных участвуют в основном P. vulgaris и P. mirabilis. Эти виды протея - наиболее часто выделяемые у животных, в том числе птиц, а также у людей и с объектов окружающей среды. Дифференцирующие признаки P. vulgaris - индолообразование и ферментация мальтозы с образованием кислоты, P. mirabilis -положительный тест с орнитиндекарбоксилазой и ферментация ксилозы с образованием кислоты.Из лабораторных животных к парентеральному введению протея чувствительны белые мыши, кролики, морские свинки.
Протей относится к группе сапрофитных микроорганизмов желудочно-кишечного тракта животных. Удельный вес протейных бактерий относительно микроорганизмов других родов в тонком кишечнике здорового молодняка сельскохозяйственных животных - 1,1 %. Развитие инфекционного заболевания - протейной диареи - во многом зависит от санитарной культуры, условий кормления, зоогигиенических параметров содержания животных, иммунного статуса.
При остром течении протейной инфекции инкубационный период составляет от двух до нескольких суток. Болезнь проявляется у молодняка всех видов животных лихорадкой (часто невысокой), угнетением, анорексией. Развивается диарея серо-коричневого цвета с зеленоватым оттенком, у телят профилакторного периода - желтого цвета с кисловатым и гнилостным запахом.
На 3-4-е сутки отмечают западение глаз, потерю эластичности кожи, слабость конечностей, одышку и тахикардию. Поражаются органы мочевыделительной системы: развивается болезненность паховой области, возможны странгурия и тенезмы, в моче - много слизи, белка, эпителиального детрита. На 4-5-е сутки вероятна гибель животных.Диагностика протейной инфекции комплексная, базирующаяся на эпизоотологических данных, клинических признаках, патологоанатомических изменениях. Основой постановки диагноза являются бактериологические исследования с обязательной постановкой биопробы.
Из средств специфического лечения разработаны поливалентная сыворотка против колибактериоза, сальмонеллеза, клебсиеллеза и протейной инфекции молодняка сельскохозяйственных животных, а также протейный бактериофаг и полифаг. Применение сыворотки заболевшим острым кишечным заболеванием молодняка позволяет снизить их летальность в среднем на 70 %.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 36 проб:
* корма – 13 проб;
* пищевая продукция – 14 проб;
* вода – 4 пробы;
* дез. растворы – 2 пробы.
Также для радиологических исследований поступило 3 пробы.
За отчетный период выявлено 4 положительных результата.
1. В 1 пробе сена установлена массовая доля сырого протеина в сухом веществе ниже нормы – 1.
Метод определения жира с использованием экстракционного аппарата Сокслета
При производстве практически всех без исключения мясных и мясосодержащих продуктов используется разнообразное жиросодержащее сырьё, для придания продукту необходимой нежности, сочности, пищевой и энергетической ценности и других показателей качества продукции.
Экстракционную колбу помещают в колбонагреватель или на водяную баню.
Продолжительность экстракции составляет от 5 до 7 часов.
Полноту обезжиривания проверяют, нанося на фильтровальную бумагу каплю экстракта, стекающего из экстрактора. На бумаге не должно оставаться жирного пятна.
После окончания экстрагирования растворитель из экстракционной колбы отгоняют.
Экстракционную колбу, с оставшимся после экстракции жиром, высушивают в сушильном шкафу при температуре (103±2)°С до постоянной массы.
Проводят обработку результатов.
отчетный период с 23.10.2020 г. по 29.10.2020 г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 1486 проб;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 1001 проба;
- листериоз мелкого рогатого скота – 11 проб;
- инфекционный эпидидимит мелкого рогатого скота – 11 проб;
- хламидиоз мелкого рогатого скота – 11 проб;
- бруцеллез свиней – 121 проба;
- хламидиоз свиней – 121 проба;
- бруцеллез лошадей – 76 проб;
- сап лошадей – 76 проб;
- случная болезнь лошадей – 22 пробы;
- инфекционная анемия лошадей – 22 пробы;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 470 проб, положительных – 79 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 98 проб, положительных – 1 проба;
- лептоспироз свиней – 157 проб, положительных– 6 проб;
- лептоспироз лошадей – 20 проб, положительных – 4 пробы;
- лейкоз крупного рогатого скота – 1065 проб, положительных – 218 проб.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 60 проб:
* корма – 26 проб;
* пищевая продукция – 26 проб;
* биоматериал (кровь) – 5 проб;
Также для радиологических исследований поступило 3 пробы.
За отчетный период выявлено 14 положительных результатов.
1. Установлено несоответствие крови по 14 биохимическим показателям:
ниже нормы – 6: щелочной резерв – 1; альфа-глобулины – 3; бета-глобулины – 1; гамма-глобулины – 1.
выше нормы – 8: общий белок – 2; щелочной резерв – 1; общий кальций – 2; альбумины – 1; бета-глобулины – 2.
Рефрактометрический метод исследования для определения общего белка в сыворотке крови
Содержание белка в сыворотке крови здоровых животных стабильно. Отклонения уровня белка от нормы свидетельствует о глубоких нарушениях обмена веществ в организме животных.
Снижением содержания белка в сыворотке крови характеризуется длительный недокорм, белковое голодание, плохое усвоение протеина из кормов вследствие хронических расстройств желудочно-кишечного тракта, заболеваний печени, дефицита углеводов, макро- и микроэлементов и провитаминов в рационе.
Повышение уровня белка в сыворотке крови наблюдают при высококонцентратном типе кормления, заболеваниях печени (гепатиты, дистрофия), желудочно-кишечного тракта.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 644 пробы материала, проведено 817 исследований, получено 34 положительных случая.
Поступающий в отдел бактериологии и паразитологии материал (пчелы) исследуется на паразитарное заболевание (клещи варроа (Varraoajacobsoni)).Varroa (лат.) - род паразитических клещей, использующих в качестве хозяев медоносных пчёл и их расплод, вызывая варроатоз. Род назван в честь Марка ТеренцияВаррона, римского учёного и практического пчеловода. Один из двух родов (вместе с Euvarroa) в составе семейства Varroidae. Эта болезнь представляет собой одну из наиболее актуальных проблем пчеловодства и наносит ему колоссальный ущерб.
В летний период клещ распространяется от больных пчел к здоровым через: блуждающих пчел; пчел-воровок; при кочевках пасек; семьи, стоящие на перелете пчел; с роями; при купле-продаже пчел и маток; при подселении семей зараженным расплодом; при контакте пчел на цветках растений; при всех работах по перестановке сот из одной семьи в другую; с других насекомых (шмелей, ос); при открытом хранении вырезанного трутневого расплода.Варроатоз распространяется со скоростью 6-11 км в течение 3 месяцев, что зависит от степени насыщенности региона пчелами. В первую очередь, поражению подвержены отрутневшие семьи. Распространение и рост количества вредителя существенно выше в районах с жарким климатом.
Для борьбы с клещом следует выполнять целый комплекс мероприятий, который включает в себя общеорганизационные, специальные пчеловодческие и ветеринарные меры. Необходимо соблюдать условия содержания, кормления, разведения пчел, а также применять зоотехнические приемы борьбы с варроа и систематически проводить противоакарицидные обработки. Борьба с вредителем должна продолжаться ежегодно и комплексно. Очень важно снизить количество клещей после последней откачки меда. Так пчелы, которые выводятся и будут зимовать, смогут жить при минимальном уровне заражения. Вместе с тем, уменьшается и степень стресса при закармливании пчел. Следующая обработка будет максимально эффективна после окончания выведения расплода (в зимнее время). Весной же для уменьшения количества вредителей применяется метод вырезания трутневого расплода.Чтобы снизить вред, наносимый клещом варроа, следует проводить различные профилактические мероприятия:
1 Приобретенные семьи и пойманные рои требуется хотя бы единожды обработать (например, рой – перицином, а остальное – муравьиной кислотой);
2 На основании числа паразитов на поддоне принимается решение о необходимости проведения дальнейшей обработки;
3 Следует проводить регулярные обследования поддона и трутневого расплода на наличие паразитов;
4 Обработку против варроатоза крайне важно согласовывать с соседними пчеловодческими фермами для получения хорошего результата и во избежание повторного заражения.
Методы борьбы применять регулярно, не пропускать периоды, наиболее подходящие для их осуществления, а также обязательна периодическая чистка, дезинфекция и своевременно перетапливать соты. Соблюдение обычных правил гигиены позволит уберечься от смешанных заболеваний.
За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики поступило 355 проб, проведено 902 исследования.В ходе исследований было выявлено 3 положительных случая.
Санитарно-микробиологические исследования смывов являются одной из самых востребованных услуг лаборатории. Смыв – это образец жидкости с микроорганизмами, взятый с той среды, на которой они первоначально могут присутствовать (поверхностей рук работников, оборудования, столов, спецодежды и т.п.) Благодаря регулярно проводимым микробиологическим исследованиям и принимаемым собственниками компаний мерам повышается качество выпускаемой продукции и её безопасность для потребителей.
Процедура исследования смывов с рук, оборудования и т.д. является частью программы мероприятий производственного контроля, она законодательно закреплена в санитарных нормах. Этот метод исследования очень актуален и востребован благодаря его объективности и точности и является обязательным. Несоблюдение элементарных гигиенических требований является прямой угрозой бизнесу, здоровью занятых на предприятии сотрудников, клиентов.
Цели микробиологических исследований
Изучение микрофлоры смывов с рук и т.д. необходимо в следующих целях:
• Оценка санитарно-гигиенической обстановки в лечебно-профилактических, учебных детских заведениях, на предприятиях общественного питания,
• Исследование бактериологической загрязненности рук персонала, окружающих предметов, оборудования и техники (для этого проводится взятие смывов с оборудования),
• Установление путей распространения различных инфекционных заболеваний,
• Установление эпидемиологической безопасности выпускаемой на предприятии продукции,
• Минимизация рисков отравлений, возникновения различных заболеваний, связанных с приемом или использованием загрязненной продукции и др.
При этом важно изучить те объекты, которые используются при приготовлении, хранении, транспортировке пищи.
Поэтому в первую очередь микробиологические исследования – смывы проводятся в отношении:
1. Посуды, оборудования, кухонного инвентаря, бытовых и столовых приборов и т.п.,
2. Собственно, продуктов – полуфабрикатов, сырья, готовых изделий, скоропортящихся продуктов питания и т.п.,
3. Воды, используемой в процессе производства,
4. Рук работающего персонала, рабочей одежды и рабочих поверхностей (столов, раковин, шкафов).
При изучении состава взятых проб работники лаборатории оценивают такие параметры, как:
• Итоговая обсемененность,
• Присутствие микроорганизмов Proteus,
• Наличие бактерий, вызывающих кишечные инфекции – БГКП,
• Присутствие сальмонеллы,
• Присутствие золотистого стафилококка,
• Общее микробное число (или ОМЧ).
Также смывы с рук покажут эффективность обработки рабочих поверхностей, поможет установить долю обсеменения продукта питания, которая вносится во время технологического процесса – для сравнения работники лаборатории берут как первичные, так и вторичные пробы готовой продукции.
Существуют нормативные документы, к примеру, МУ 2657-82, регламентирующие порядок сбора материалов для проведения исследования на бактериологическую обсемененность.
Так, забор смывов рук и оборудования производится с использованием специальных стерильных ватных тампонов, увлажненных специальной питательной средой и вмонтированных в пробирки. После взятия смывов тампоны погружают в питательную среду.
Вот примеры того, как происходит забор материала для анализа:
Смывы с оборудования и рабочего инвентаря берутся до начала работы или в санитарные дни после санобработки. При этом с крупного инвентаря и рабочих поверхностей для снятия смывов используют трафарет со сторонами 5 см. обычно исследуется поверхность в 100 кв.см, причем пробы берутся из нескольких точек.
Смывы с рук работников берутся следующим образом: сначала тампоном протираются ладони и пальцы рук (обеих, причем тампоном проводят не менее пяти раз), также протираются межпальцевые области, ногти и участки под ногтями.
Смывы с санитарной одежды берутся так: выбираются и протираются тампоном 4 участка площадью по 25 кв.см. каждый: на правом и левом рукаве, а также с передней и верхней части рабочей одежды.
Дополнительно необходимо взять смывы с систем кондиционирования и вентилирования.
Пробы для проведения посевов доставляются в лабораторию в термоконтейнерах. Срок доставки не должен превышать 4 часов. По результатам проведенного в бактериологической лаборатории анализа результатов микробиологических смывов клиент получает протокол лабораторных исследований.
отчетный период с 09.10.2020 г. по 15.10.2020 г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллез крупного рогатого скота – 3555 проб;
- паратуберкулез крупного рогатого скота – 53 пробы;
- хламидиоз крупного рогатого скота – 52 пробы, положительных – 5 проб;
- листериоз крупного рогатого скота – 1 проба;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 1780 проб;
- бруцеллез свиней – 100 проб;
- хламидиоз свиней – 100 проб;
- бруцеллез лошадей – 185 проб;
- сап лошадей – 201 проба;
- случная болезнь лошадей – 40 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 40 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 343 пробы, положительных – 115 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 380 проб, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 1 проба, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 101 проба, положительных – 19 проб;
- лейкоз крупного рогатого скота –3465 проб, положительных – 650 проб.
За отчетный период в отдел химических исследований поступила 21 проба:
* корма – 11 проб;
* пищевая продукция – 7 проб;
* вода – 2 пробы.
Также для радиологических исследований поступила 1 проба.
За отчетный период выявлено 3 положительных результата.
1. В 2 пробах сена установлена массовая доля сырого протеина в сухом веществе ниже нормы – 2.
2. В 1 пробе мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы – 1.
Биохимические исследования крови крупного рогатого скота.
Определение щелочного резерва в плазме крови
Особый интерес биохимические показатели крови представляют для прогнозирования племенных и продуктивных характеристик стада скота. В частности, подбор животных при скрещивании по биохимическим характеристикам крови позволяет корректировать продуктивность и качество продукции у потомков.Исследование комплекса биохимических характеристик крови зачастую используется и для совершенствования рационов и контроля обеспеченности потребностей животных в питательных веществах.
В отделе химических исследований определяют такие показатели крови, как резервная щелочность, содержание в крови каротина, кальция, неорганического фосфора, общего белка и белковых фракций, кетоновых тел, глобулинов.
Определение щелочного резерва в плазме крови диффузным методом проводят по Методическим указаниям по применению унифицированных биохимических методов исследований крови, мочи и молока в ветеринарных лабораториях, под редакцией В.П. Шишкова.
Принцип метода: в одной половине сдвоенной колбы плазма крови обрабатывается серной кислотой, благодаря чему выделяется углекислый газ, находящийся в составе бикарбонатов. Выделившийся углекислый газ поглощается раствором едкого натра, который находится в другой половине колбы. Избыток едкого натра, не вошедшего в реакцию с углекислым газом, и половину натрия углекислого, образовавшегося в процессе поглощения углекислого газа, оттитровывается раствором едкого натра. Затем определяют количество выделенного из плазмы углекислого газа, которое эквивалентно содержанию бикарбонатов.Биохимические исследования крови есть незаменимые составляющие эффективного производства продукции. Выполняемые периодически исследования позволяют контролировать состояние животных и, при необходимости, проводить профилактические или лечебные мероприятия.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 844 проб материала, проведено 950 исследований, выявлено 37 положительных случаев.
Поступающий в отдел бактериологии и паразитологии материал (смывы с глаза, влагалища и др.) исследуется на патогенную микрофлору (возбудитель стафилококкоза).Стафилококкоз - это острая инфекционная болезнь, проявляющаяся возникновением абсцессов в различных органах и тканях и развитием септицемии.
Возбудитель относится к роду Staphylococcus, среди которых наиболее встречаемые виды Staphylococcus aureus и Staphylococcus intermedius.
К стафилококкозу восприимчивы все виды собак, пушных зверей и кролики, особенно молодняк.
Источником возбудителя инфекции служат больные животные и бактерионосители, которые выделяют возбудителя во внешнюю среду с истечениями из носовой полости, гноем из абсцессов, фекальными массами, выделениями из пораженных долей лактирующих самок, а также с мочой.Источником возбудителя инфекции служат больные животные и бактерионосители, которые выделяют возбудителя во внешнюю среду с истечениями из носовой полости, гноем из абсцессов, фекальными массами, выделениями из пораженных долей лактирующих самок, а также с мочой.
Факторами передачи возбудителя являются инфицированные корма, молоко, подстилка, инвентарь, спецодежда, шерсть. Заражение происходит аэрогенным и алиментарным путями, а также через поврежденную кожу и слизистые оболочки. У стафилококкоза ярко выражена стационарность.В местах размножения возбудителя развивается гнойное воспаление с дальнейшей интоксикацией организма. При суперинфекции щенков развивается тяжелая форма септицемии. У лактирующих самок нередко возникают гнойные маститы и эндометриты, а у быстро растущих самцов поражается мочевая система.
Период инкубации длится от 48 до 72 часов. Специалисты выделяют острый и хроническийформы течение болезни. Острое течение характеризуется везикулярным дерматитом, синюшностью пораженного участка кожи, воспалением. При хронической форме снижается иммунитет, уменьшается продуктивность.
Диагноз ставится комплексно с учетом клинико-эпизоотологических данных, результатов патологоанатомического вскрытия, с обязательным проведением микробиологического исследования патологического материала. С этой целью посылают в лабораторию гнойный экссудат, молоко, кровь, носовые и влагалищные истечения.
В случае обнаружения первых признаков болезни животное следует отделить от здоровых особей, а помещение для их содержания продезинфицировать. В это время кормление животных требует тщательного контроля. Проводится исследование на наличие патогенных стафилококков. Лабораторное исследование отделяемого больного животного должно дать полную картину о применении группы антибиотиков чувствительных к данному возбудителю. Стафилококк быстро вырабатывает резистентность к антибиотикам. При ее появлении необходимо поменять препарат с большей эффективностью. В комплексе с применением антибактериальной терапией необходим прием препаратов, повышающих общий иммунитет и витаминные комплексы.
В борьбе со стафилококкозом необходимо применять меры по улучшению рациона питания и условий содержания животных.



