За отчетный период в отдел химических исследований поступило 86 проб:
* корма – 15 проб;
* пищевая продукция – 62 пробы;
* вода – 5 проб.
Также для радиологических исследований поступило 4 пробы.

 За отчетный период выявлен 1 положительный результат.

1.    В 1 пробе мясокостной муки установлена массовая доля сырой золы выше нормы-1;

Сырая зола в мясокостной муке

Мясокостная мука – белково-минеральный корм для животных, широко применяющийся в животноводстве. Мясокостную муку включают в рационы птицы, свиней, молодняка сельскохозяйственных животных для улучшения белкового баланса рациона. Также входит в состав комбикормов и кормов для домашних животных (собак и кошек).
Сырая зола представляет собой ни что иное как несгораемый остаток сухого вещества и представлена в виде окислов химических элементов натрия, калия, кальция, магния, железа и др. В золе растительных и животных организмов содержатся, в основном, кислотные элементы — сера, фосфор, кальций, хлор; щелочные — калий и натрий, а также микроэлементы — кобальт, медь, йод, фтор, цинк, никель, марганец, мышьяк, бор, молибден и алюминий. Состав золы животных более постоянен, чем растений, так как у последних он зависит от условий произрастания, уборки и хранения. Но среди растительного мира содержание различных элементов далеко неодинаково и растения отличаются по содержанию в них отдельных минеральных веществ. Вот почему животные нуждаются в разнообразном кормлении. В организме животных минеральные вещества служат строительным материалом для образования новых тканей. Так, например, железо является составной частью гемоглобина, йод гормона щитовидной железы — тироксина и т.д. Сумма всех органических веществ представляет собой разность между сухим веществом и сырой золой.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1234 исследований, из них 66 положительных случая.
Вода является естественной средой обитания многих микробов. Основная масса микробов поступает из почвы. Количество микробов в 1 мл воды зависит от наличия в ней питательных веществ. Чем вода сильнее загрязнена органическими остатками, тем больше в ней микробов. Наиболее частыми являются воды глубоких артезианских скважин, а также родниковые воды. Обычно они не содержат микробов. Особенно богаты микробами открытые водоемы и реки. Наибольшее количество микробов в них находится в поверхностных слоях (в слое 10 см от поверхности воды) прибрежных зон. С удалением от берега и увеличением глубины количество микробов уменьшается.
Особенно опасно попадание болезнетворных микробов в водопроводную сеть. Поэтому за состоянием водоемов и подаваемой из них водопроводной воды установлен санитарно-бактериологический контроль.
При исследовании воды из распределительных сетей отбор проб из крана производят после предварительной его стерилизации обжиганием и последующего спуска воды не менее 10 минут при полностью открытом кране.
Доставка проб осуществляется в контейнерах-холодильниках при температуре 4—10°С. В холодный период года контейнеры должны быть снабжены термоизолирующими материалами, обеспечивающими предохранение проб от промерзания.

Во втором квартале 2020 г. сотрудниками отдела ВСЭ и диагностики Испытательной лаборатории успешно пройдена проверка квалификации посредством участия в межлабораторных сличительных испытаниях, организованных аккредитованным провайдером - Федеральное государственное бюджетное учреждение «Центральная научно-методическая ветеринарная лаборатория» (номер записи об аккредитации RA.RU.430278).

Так согласно Выписки из сводного отчета №2-2020 по результатам межлабораторных сличительных испытаний во 2 квартале 2020 г. от 06.07.2020 г., нашими специалистами получены удовлетворительные результаты по микробиологическим показателям - бактериологическое исследование кормов, что подтверждает компетентность и профессионализм специалистов, проводивших исследование (испытание) и способствует повышению доверительного отношения к результатам микробиологического метода исследований лаборатории.

Качество комбикормовой продукции является одним из важнейших условий повышения продуктивности сельскохозяйственных животных и птиц наряду с их генетическим потенциалом, санитарно-гигиеническими условиями содержания и квалифицированным ветеринарным надзором.

Устойчивость свойств кормов и комбикормов во времени имеет большое значение, поскольку в процессе хранения происходит ухудшение качества кормов по химическим и биологическим показателям. К химическим показателям относятся перекисное и кислотное числа, к биологическим ― зараженность патогенными бактериями и грибами. Комплекс химических и биологических показателей составляет важную интегральную характеристику кормов ― общую токсичность, которая определяется как способность вещества или продукта в средних дозировках вызывать негативную реакцию у живого организма.

Под воздействием недоброкачественных кормов происходят серьезные нарушения в организме животных, обмене веществ, расстраиваются функции центральной нервной системы, эндокринных желез, органов пищеварения, а при попадании с кормом ядовитых растений, грибов или химических веществ (пестициды, дезинфекционные средства, минеральные удобрения) могут возникать отравления. Токсичность кормов является причиной появления токсикозов у животных и птиц.

Основной мерой по профилактике токсикозов в животноводстве и птицеводстве является контроль качества комбикормовой продукции, в том числе определение ее токсичности. В настоящее время существуют 2 группы методов определения токсичности: к первой относится химический анализ, который позволяет выявить отдельные токсичные вещества, ко второй ― биотестирование, которое устанавливает степень токсичности исследуемого образца без идентификации токсичных веществ.

Количественный химико-аналитический контроль комбикормовой продукции трудновыполним, так как за последние десятилетия рынок производства кормов значительно расширился, увеличилось количество готовых комбикормов, а состав кормов в большой степени усложнился: в продукцию стали добавлять вкусовые и ароматические добавки, ферменты, антиоксиданты, пробиотики, синтетические аминокислоты и многое другое. В сложившейся ситуации биотестирование является наиболее подходящим методом анализа комбикорма на безопасность, отражающим степень токсичности исследуемого образца.

 

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 49 проб материала, проведено 180 исследований, выявлено 2 положительных случаев.
Поступающий в отдел материал (головной мозг или мазки с головного мозга) исследуются на вирус бешенства методом флуоресцирующих антител.
Сибирская язва является острым, особо опасным инфекционным заболеванием, возникающим у человека и животных при заражении Bacillusanthracis, протекающим с формированием на коже специфических карбункулов, либо в септической форме. Источником инфекции являются дикие животные и скот, заражение происходит контактным путем. Инкубационный период сибирской язвы в среднем составляет 3-5 дней. Диагностика осуществляется в 3 этапа: микроскопия мокроты или отделяемого кожных элементов, бактериологического посева, биологической пробы на лабораторных животных.
Bacillusanthracis представляет собой крупную, капсулированную, грамположительную, факультативно-анаэробную, спорообразующую бактерию палочковидной формы с обрубленными концами. Споры образует при соприкосновении с кислородом, в таком виде может сохраняться в окружающей среде длительное время (несколько лет в воде, десятилетиями в почве, иногда прорастая и образуя новые споры). Сохраняет жизнеспособность после пяти минут кипячения, погибает только после 12-15 минут воздействия текучего пара, в течение 5-10 минут при температуре 110 °С. Сухому жару температурой 140 °С требуется для уничтожения спор бактерий 3 часа, дезинфицирующим средствам (1% раствор формалина, 10% едкого натра) – 2 часа.
Этиотропное лечение сибирской язвы осуществляют пенициллином, назначая его внутримышечно на 7-8 дней или более, до снятия симптомов интоксикации. Внутрь можно назначать доксициклин или левофлоксацин. При тяжелом течении применяют внутривенные инъекции ципрофлоксацина. Одновременно с антибиотикотерапией назначают введение противосибиреязвенного иммуноглобулина (вводится подогретым через полчаса после инъекции преднизолона).
Больным сибирской язвой показана дезинтоксикационная терапия – инфузионное введение дезинтоксикационных растворов с преднизолоном и форсированием диуреза. Тяжелые осложнения лечат согласно разработанным методикам интенсивной терапии. На язвы и карбункулы накладываются асептические повязки. Оперативное удаление карбункулов категорически противопоказано ввиду возможной генерализации инфекции.
Благоприятный прогноз имеют кожные формы сибирской язвы, генерализованные формы нередко заканчиваются летальным исходом. Современные методы лечения способствуют значительному снижению неблагоприятных исходов данного заболевания, поэтому крайне важно своевременное обращение за медицинской помощью.
Санитарно-гигиенические мероприятия по профилактике заболеваемости сибирской язвой включаю ветеринарные и медико-санитарные меры, задачей которых является выявление, контроль и санация эпидемиологических очагов, отслеживание состояния пастбищ, водных источников, животноводческих хозяйств, плановые прививки животных, гигиеническое нормирование при обработке животного сырья, его хранении и транспортировке, захоронении павшего скота.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1261 исследование, из них 6 положительных случаев.
Молоко - самый распространенный продукт питания, источник необхо­димых компонентов для здоровья и роста ор­ганизма. При возросшей урбанизации роль молока и молочных продуктов в питании лю­дей невозможно переоценить. К сожалению, качество данного продукта вызывает беспо­койство в связи с заболеваниями молочной железы коров
Мастит - воспаление молочной железы, вызывающее снижение молочной продуктив­ности и ухудшение качества молока.
Ущерб, наносимый молочному животноводству маститами, приравнивается к общим экономическим потерям от всех незаразных болезней вместе взятых. Чаще всего маститом заболевают высокопродуктивные коровы. За период болезни и после клинического выздоровления натуральные потери молока на одну корову составляют в среднем 10-15% годового удоя. У некоторых коров даже при успешном лечении прежние удои вообще не восстанавли­аются из-за необратимых изменений тканей молочной железы.
До 30% переболевших маститом коров выраковывают из-за атрофии четвертей выме­ни. В результате средняя продолжительность жизни коровы не превышает 5 лет, а продукцию от нее получают всего лишь 2-3,5 года. Следовательно, от каждой такой коровы недополучают минимум 3-4 теленка и удой моло­ка за 3-4 лактации. В России были собраны дан­ные из молочных хозяйств о причинах выбра­ковки более чем 5000 коров, в процентном со­отношении это выглядит следующим образом: мастит - 19%, репродуктивные показатели -18%, низкая продуктивность - 13%, пораже­ния копыт - 11%, состояние здоровья - 7%, падеж- - 6%, аборты - 5%, другие причины -21%.
Большие убытки терпят молокоперерабатывающие предприятия. Примесь 5-10% молока от больных скрытым маститом коров делает все молоко непригодным для перера­ботки на сыры и молочные продукты.
При попадании патогенных микроорганизмов в молоко и молочные продукты последние становятся весьма опасными для здоровья людей. Патогенные стафилококки могут вызывать у людей такие болезни, как пневмонии, гастроэнтериты, нефриты, энтероколиты. Термоустойчивый стафилококковый токсин не разрушается даже при кипячении и пастеризации молока. При употреблении молочных продуктов, содержащих стафилококковыйэнтеротоксин, у людей возникают тяжелейшие пищевые отравления, нередко приводящие к летальному исходу. Стрептококковый мастит у крупного рогатого скота часто протекает скрыто, при этом патогенные стрептококки в молоке могут являться причиной таких заболеваний у человека, как эндокардиты, менингиты у новорожденных, стрептокок­ковые ангины и пищевые расстройства. Мо­локо маститных коров, содержащее токсины кишечной палочки, может вызывать тяжело протекающие воспалительные процессы в тонком отделе кишечника - энтериты.
В России и других странах собраны данные о возникновении гастроэнтерита у детей, обусловленного наличием патогенных штаммов кишечной палочки в молоке коров.
Технологический процесс обработки молока (в том числе и пастеризация), не унич­тожает споровую микрофлору и токсическую фракцию бактерий, способную вызвать токсикоинфекцию! В возникновении пищевых интоксикаций у человека молоку и молочным продуктам принадлежит первое место.
Пути решения проблем маститов - про­филактика, диагностика, лечение.Профилактические мероприятия заключа­ются в соблюдении правил технологии доения, правильной санитарной обработке вымени до и после доения, а также в обработке доильной техники и оборудования. Улучшения условий содержания и кормления коров играют большую роль в профилактике мастита. В связи с широким распространением данного заболевания на сегодняшний день актуальным яв­ляется также диагностика и лечение мастита.
Лабораторная экспресс-диагностика мастита является одним из важнейших пунктов программы, позволяющим начать раннее и наиболее эффективное лечение мастита.
В комплекс диагностических исследований входят:
а) общее клиническое обследование животного с проведением пробного сдаивания и внешнего осмотра секрета молочной железы;
б) лабораторное исследование секрета молочной железы с помощью быстрых диагностических тестов и пробы отстаивания;
в) бактериологическое исследование секрета молочной железы с определением чувствительности выделенной микрофлоры к антибиотикам.
Для постановки пробы отстаивания после доения в пробирку надаивают 10-15 мл молока и ставят его на 16-18 часов в холодильник при 4-10°С. На 2-й день у источника света учитывают результаты. Исследуют цвет молока, наличие осадка, толщину и характер слоя сливок. У здоровых коров молоко белое или слегка синеватого цвета, без осадка. У больных маститом коров на дне пробирки образуется осадок. Молоко может стать водянистым, сливки - тягучими, слизистыми, хлопьевидными. Основное значение при ис­следовании данным методом имеет осадок. Положительный результат отмечается при на­личии осадка. В этом случае корову изолируют от стада и лечат. Молоко выбраковывается. Коров с отрицательным результатом при постановке пробы отстаивания проверяют повторно при помощи вышеуказанных диагностических тестов не позднее чем через 6 дней после первой проверки.
Секрет вымени коров, давших положительную реакцию с одним из быстрых маститных тестов, дополнительно исследуют бактериологически для выделения патогенной микро­флоры.
Для таких исследований отбирают пробы молока из четвертей вымени, реагирующих на быстрый маститный тест с реактивом аль­фа-теста и дающих положительную пробу отстаивания.
Для высева используют чаще всего агаровые питательные среды. Посевы инкубируют в термостате при t = 37°С в аэробных условиях в течение 24 часов. Можно выдерживать их в течение 48 часов. Наблюдают: стафилококк - крупные выпуклые колонии, стрептококк -мелкие росинчатые колонии.
При появлении колоний с зеленым оттенком можно предположить наличие синегнойной палочки. Из колоний делают мазки, окрашивают по Граму и микроскопируют.
Определение чувствительности микроорганизмов к антибиотикам используют метод диффузии в агар (метод дисков).
В стерильные чашки Петри наливают по 20 мл расплавленной агаровой среды. На поверхность застывшей среды наносят 1 мл бактериальной взвеси испытуемой культуры. Покачиванием чашки жидкость равномерно распределяют по всей поверхности среды, избыток отсасывают. Среду в некоторых случаях можно засевать непосредственно молоком и расти­рать равномерно по всей поверхности шпателем. Среду подсушивают в течение 30 мин при t = 37°С.
На поверхность засеянной среды накладывают диски с антибиотиками (не класть два сцепленных между собой диска). Диски раскладывают на равном расстоянии один от другого и на 2 см от края чашки. В каждой чашке можно проверить действие 4-5 антибиотиков. Чашки с дисками выдерживают 2-3 часа при комнатной температуре и затем в течение 16-18 часов при t - 37°С. Чашки рекомендуется ставить в термостат в перевернутом виде или вкладывать под крышку чашки кружок фильтровальной бума­ги. При оценке результатов с помощью линей­ки или измерителя и миллиметровой бумаги определяют диаметр зон задержки роста микробов вокруг бумажных дисков (включая и диаметр самого бумажного диска).

Чем вредна обшая токсичность кормов для животных?

Контроль качества кормов, комбикормов и комбикормового сырья – важное условие повышения продуктивности сельскохозяйственных животных и птиц. Понятие качества кормов включает в себя совокупность показателей химического состава корма (содержание влаги, протеина, углеводов, клетчатки, жира, макро- и микроэлементов), а также изменение их содержания и свойств в зависимости от сроков хранения. В процессе хранения кормов может возникнуть ухудшение их качества по химическим (перекисное и кислотное число) и биологическим (зараженность патогенными бактериями и грибами) показателям. Токсичность кормов является основной причиной развития токсикозов у животных и птиц, поэтому необходимо своевременно и регулярно проводить исследования кормов на определение токсичности.

Общая токсичность – свойство кормов и кормовых добавок, характеризующее содержание токсичных веществ выше допустимого уровня, которое может вызвать заболевание или гибель животных. Отравления вызывают отдельные ядовитые растения, ядовитые семена, кормовые средства с заведомо известными токсическими свойствами при их неправильном применении, а также корма, загрязненные отдельными агрохимикатами.

Кроме того, отравления могут возникнуть при использовании корма, пораженного грибками и другими макро- и микроорганизмами. В зависимости от механизма воздействия грибов на организм кормовые заболевания (или микотические заболевания) животных разделяются на микозы и микотоксикозы. Для микозов характерным является то, что грибы, попадающие в организм с кормом, прорастают и размножаются в тех или иных органах и тканях и оказывают как местное, так и общее действие на организм. Микотоксикозы отличаются тем, что воздействие оказывают токсины, выделяемые развивающимися на кормах грибами.

 

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1970 исследований, из них 9 положительных случаев.

Применение ПЦР в ветеринарии.
Инфекционная патология в ветеринарии охватывает широкий круг болезней, различных как по характеру течения (острые, хронические, латентные), степени распространения (от спорадических случаев до эпизоотии), так и по сложности их диагностики. Важное, а при некоторых болезнях решающее значение имеют серологические исследования, направленные на выявление антител, вырабатываемых организмом животного в ответ на внедрение инфекционного агента или вакцины. Несмотря на ряд достоинств, методы, основанные на этом принципе, обладают недостаточной чувствительностью и специфичностью. Существенный прорыв был сделан в последние годы, когда для диагностических целей привлекли методы генной инженерии и биотехнологии. Для диагностики инфекционных заболеваний наибольшее применение нашёл способ амплификации (умножения) нуклеиновых кислот: полимеразная цепная реакция (ПЦР), лигазная цепная реакция, NASBA-метод и др.
ПЦР в лабораторной диагностике инфекций характеризуется быстротой, непревзойдённой чувствительностью и высокой специфичностью, что позволяет обнаруживать микроорганизмы, присутствующие в очень низких концентрациях (1-10 возбудителей в пробе). При этом ДНК инфекционных агентов может быть достаточно эффективно экстрагирована из любой биологической жидкости или ткани, а также из проб объектов окружающей среды (почвы, воды и т.д.) и продуктов питания. Полимеразная цепная реакция эффективна при обнаружении бактериальных, грибковых, паразитарных и вирусных патогенов.
К настоящему времени ветеринарными специалистами уже разработаны тест-системы для диагностики методом ПЦР таких заболеваний, как туберкулёз, сибирская язва, лейкоз, чума крупного рогатого скота, бешенство, ящур, бруцеллез, кампилобактериоз, листериоз, хламидиоз животных, классическая  и африканская чума свиней, респираторно-репродуктивный синдром свиней, парвовирусная инфекция свиней, энцефаломиокардит свиней, сальмонеллёз, стафилококкоз, микоплазмоз, болезнь Марека, реовирусная инфекция, болезнь Гамборо, инфекционный бронхит птиц, ньюкаслская болезнь; чума плотоядных, вирусный энтерит норок, вирусный гепатит утят и др.
Среди методов лабораторной диагностики гриппа птиц наиболее эффективным считается метод полимеразной цепной реакции. Используя праймеры к НА, NA и М-генам различных субтипов вируса гриппа, Zhang W. и Evans D.N. (1991 г.) впервые продемонстрировали возможность детекции вирусов. Однако исследования были выполнены на музейных штаммах.
Главными преимуществами ПЦР в сравнении с методами культурального подхода являются его более высокая чувствительность, быстрота и безопасность для персонала. При сравнении с серологическими методами ПЦР существенно выигрывает, поскольку позволяет выявлять вирусы гриппа на самых ранних стадиях, задолго до появления антител.
Кроме явных диагностических преимуществ, его дополняют методом секвенирования ДНК, и тогда он является универсальным молекулярно-генетическим подходом к определению большинства биологических свойств вирусов гриппа птиц, позволяющим выявлять родство циркулирующих штаммов, предсказывать его опасность для человека и эффективность противовирусной терапии.