За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 2642 проб материала, проведено 2705 исследования, получено 27 положительных случая.

При гематологическом методе исследования стабилизированной крови на лейкоз поступившейв отдел был обнаружен лейкоз.

Овес обладает высокими пищевыми и кормовыми достоинствами. В его зерне содержатся: белок — в среднем 10,1 %, крахмал — 36,1 %, жир — 4,7 %, зола — 3,2 %, сахар — 2,35 %, витамины В1, В2. Зерно овса в цельном виде является незаменимым кормом для лошадей, крупного рогатого скота, особенно молодняка, и домашней птицы. Оно отличается высокой питательностью. Овсяная мука хорошо усваивается организмом животных, поэтому её используют для откорма молодняка.

Зерно овса скармливается в чистом виде, а в переработанном – это обязательный ингредиент в производстве комбикормов и кормовых смесей. Широко применяется зеленая масса растения – в виде зеленого корма из овса в ранние фазы вегетации, в более поздние фазы производят сено, силос, сенаж, травяную муку. Овсяная солома и мякина по питательным свойствам ценятся выше в сравнении с другими хлебными злаками. Более качественный свежий или консервированный корм из овса (равно как и других злаков) получают при посеве с бобовыми культурами, богатыми протеином – викой, горохом, чиной. И в таких смешанных посевах овес, благодаря достаточно прочному стеблю, служит лучшим поддерживающим растением.

На кормовую ценность овса в сильной мере влияет крупность (натура) зерна. Овес в зависимости от натуры подразделяют на три категории: с натурой выше 480 г, средненатуральное — от 420 до 480 и низконатуральное — до 420 г. Не меньшее влияние на обшую питательность овса оказывает пленчатость зерна. У хорошего овса пленки составляют не более 30 % массы зерна, в щуплом и низконатуральном овсе — до 40 %. Пленки содержат много плохо переваримой клетчатки, мало протеина и жира и по общей питательности близки к соломе. Поэтому овес ценится тем выше, чем меньше в нем пленок. Присутствие большого количества пленок значительно снижает переваримость питательных веществ овса по сравнению с другими зерновыми злаковыми.

В растениеводстве выделяют две разновидности овса:

- пленчатый;

- голозерновой.

Особое место занимают голозерные формы овса, характеризующиеся низким содержанием клетчатки и, в силу этого, обладающие более высокими качественными показателями. Особенностью голозерного овса является отсутствие пленок у зерна, что обуславливает его высокие качественные показатели. Использование голозерного овса в составе комбикормов может значительно повысить их энергонасыщенность и продуктивное действие.

Использование овса необходимо для:

- гармоничного развития и роста молодого домашнего скота;
- снижение риска развития рахита;

- улучшения метобализма;

- развития полезной микрофлоры в кишечнике.

Технический жир является сырьём, полученным в процессе переработки продуктов животноводства. Однако данный вариант продукта нельзя использовать в пищу из-за его технических характеристик.

Главная отрасль, которая нуждается в таком сырье, как технические жиры – мыловарение. Так же он пригодится и кожевенному производству для осуществления жирования кож. Технический жир способен придать им эластичности, после обработки таким жиром кожа становится водонепроницаемой и более прочной, устойчивой к разрывам и растираниям. Текстильная отрасль использует его для обработки шерсти на определённых этапах производства ткани. Ещё один вид промышленности, где задействуются технические жиры – металлообработка. Жир здесь необходим для изготовления различных эмульсий.

Технические жиры, получаемые при переработке жирового и жиросодержащего сырья, в зависимости от качества бывают трех сортов:

— первый сорт (отличается молочно-белым или светло-желтым оттенком);

— второй сорт (цвет может находиться в пределах от желтого до желто-коричневого);

—третий сорт (материал темного цвета).

Запах у технического жира специфический, но не допускается запах бензина или гнили.

Количество веществ, не растворимых в эфире, зависит от тщательности очистки жира от остатков соединительной и других тканей (шквары) и продуктов гидролиза белков, содержащихся в бульоне, а также от минеральных примесей и частиц каныги. Температура застывания жирных кислот характеризует твердость получаемого из жиров мыла. Данный показатель зависит от вида жира, входящего в состав перерабатываемого сырья. При преобладании в нем говяжьего и бараньего жира температура застывания будет наиболее высокой, и наоборот, при наличии в сырье значительного количества свиного и костного жира температура застывания жирных кислот будет низкой.

Кислотное число жира зависит от свежести сырья и быстроты его переработки. Этот показатель обусловливает цвет жира и выход глицерина при его расщеплении.

За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на: 

- бруцеллёз крупного рогатого скота – 4958 проб;
- паратуберкулёзкрупного рогатого скота - 137 проб;
- бруцеллёз мелкого рогатого скота – 1427 проб;
- бруцеллез свиней - 263 пробы;
- хламидиоз свиней - 284 пробы;
- бруцеллез ослов – 2 пробы;
- сап ослов – 2 пробы;
- бруцеллез пони – 1 проба;
- сап пони - 1 проба;
- случная болезнь пони - 1;
- инфекционная анемия – 1 проба;
- бруцеллез лошадей – 136 проб;
- сап лошадей - 136 проб;
- случная болезнь лошадей – 29 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 29 проб;
- лейкоз крупного рогатого скота – 3471 проба, положительных – 568 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 385 проб, положительных – 30 проб;
- лептоспироз свиней – 275 проб, положительных – 6 проб;
- лептоспироз лошадей – 99 проб, положительных – 36 проб;
- лептоспироз ослов - 1 проба, положительных – нет;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 570 проб, положительных – 18 проб.

Лабораторная диагностика листериоза основывается, преимущественно, на бактериологических и серологических методах исследования.

Бактериологическое исследование состоит в микроскопии окрашенных по Граму мазков-отпечатков из пораженных органов и головного мозга, выделении культуры возбудителя посевом суспензии из внутренних органов и головного мозга на питательные среды и заражении лабораторных животных, идентификации выделенной культуры и дифференциации её от других микробов, изучении вирулентности культуры путём заражения лабораторных животных.
Бактериологическое исследование состоит в микроскопии окрашенных по Граму мазков-отпечатков из пораженных органов и головного мозга, выделении культуры возбудителя посевом суспензии из внутренних органов и головного мозга на питательные среды и заражении лабораторных животных, идентификации выделенной культуры и дифференциации её от других микробов, изучении вирулентности культуры путём заражения лабораторных животных.
Listeria monocytogenes – это маленькая палочковидная бактерия длиной 0,5 – 2 мкм и шириной 0,5 мкм. В зависимости от условий культивирования она способна принимать кокковидную или овоидвую форму, в культурах, выращенных при комнатной температуре, преобладали палочковидные формы, а в культурах, выращенных при температуре 37°С – кокковидные и овоиднне формы. В старых культурах также преобладали кокковидные формы листерий.
Это положительно окрашивающийся по Граму возбудитель, неспорообразующий, неустойчивый к кислотам. Большинство исследователей отмечали отсутствие видимой капсулы у листерий. Показательной особенностью листерий является четко выраженная подвижность клетки. Специфика проявления подвижности у листерий (дифференциальный признак от рожистых бактерий) связана с наличием жгутиков. При температуре 22°С листерии имели 1-8 жгутиков, при температуре 37°С основная масса клеток лишена их и лишь 1-15% имели 1-2 жгутика. Соответственно, все культуры изученных штаммов обладали активной подвижностью при температуре 22°С, при температуре 37°С она отсутствовала или была слабовыраженной.
Листерии растут на обычных питательных средах с довольно широким диапазоном рН (5,6-9,0). Наиболее благоприятными следует признать среды с рН 7,2-7,4, содержащие глицерин, глюкозу, сыворотку крови, а также печёночные среды. Лучшей питательной средой является мясопептонный печеночный агар и бульон с добавлением 0,5% глюкозы и 2% глицерина. На МПА в первые сутки роста наблюдаются мелкие, слизистые, круглые, прозрачные при проходящем или молочно-белые в падающем свете, выпуклые колонии.
На МПБ листерии вначале вызывают равномерное помутнение среды; при встряхивании пробирки заметны муаровые волны, более грубые, чем при росте рожистых бактерий. На 5-7 день бульон просветляется и на дне образуется слизистый осадок, который при встряхивании поднимается в виде косички. Пленки и пристеночного кольца не образуется.
При посеве уколом на МПЖ листерии дают медленный рост в виде узловатой нити или полоски с небольшими отростками. Разжижение желатины не наступает. Свежевыделенные культуры листерии продуцируют растворимый, фильтрующийся b-гемолизин, способный разрушать эритроциты человека, лошади, крупного рогатого скота, овец, кроликов.
Листерии, по мнению большинства исследователей, по биохимическо-ферментативным свойствам, принадлежат к малоактивным видам бактерий. Они не образуют индола, аммиака, не восстанавливают нитраты в нитриты, не свёртывают и не пептонизируют молоко, не гидролизуют мочевину. Постоянным признаком листерий, который в числе прочих может быть использован для целей дифференциации их от эризипелотриксов, является каталазная активность. Листерии способны ферментировать с образованием кислоты (без газа) глюкозу, рамнозу, салицин, левулезу, но не изменяют среду с дульцитом, маннитом, арабинозой, изулином, сорбитом.
Для биологической диагностики листериоза используют белых мышей, морских свинок, кроликов, степных пеструшек. Заражение целесообразно проводить интрацеребрально, внутривенно или подкожно, интракраниальный (внутричерепной) метод заражения применим для белых мышей. Введение 100 клеток листерий обеспечивает 100% гибель мышей в течение 3-10 дней. Наиболее удобным объектом для постановки биопробы на листериоз при подкожном введении оказалось степные пеструшки, чувствительность которых к возбудителю листериоза превышала чувствительность мышей в 100 тысяч раз.
Для дифференциации возбудителя листериоза от бактерий рожи свиней и определения вирулентности выделенных культур рекомендована конъюнктивальная проба, которая заключается в нанесении испытуемой культуры на конъюнктиву глаза морской свинки или кролика. Специфичным для листерий является развитие (через 2-3 дня) гнойного конъюнктивита, который переходит в кератит; нередко происходят генерализация инфекций и животное погибает. На ценность и высокую специфичность конъюнктивальной пробы указывают многие исследователи.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1928   исследований. Проведено 735 исследований сыворотки крови методом ИФА.
Инфекционные заболевания весьма часто встречаются в ветеринарной практике. Для владельца животного важно вовремя обратить внимание на симптомы недомогания питомца. Для большинства инфекционных заболеваний эти симптомы неспецифичны: угнетение, отказ от корма, повышенная температура тела,  рвота, понос; при некоторых заболеваниях встречается хромота и опухание суставов; возможно изменение цвета мочи.
Для ветеринарного врача, к которому приводят заболевшее животное, важно составить список дифференциальных диагнозов и исключить (или подтвердить) их специальными методами диагностики. Однако стоит помнить, что выбор диагностического метода будет зависеть от вида возбудителя, его локализации и стадии заболевания. Методика, применимая для диагностики одной инфекции, совершенно неприемлема для диагностики другой.
При подозрении на инфекционную болезнь в хозяйстве основная задача врача-эпизоотолога — своевременно установить диагноз, используя комплексный метод диагностики. В диагностике инфекционных заболеваний широко используется метод ИФА.
ИФА или ELISA (отангл. enzyme-linkedimmunosorbentassay) — лабораторный иммунологический метод качественного определения и количественного измерения АГ.
ИФА также основан на учете реакции АГ—АТ, причем в качестве метки, позволяющей обнаружить иммунный комплекс, используют ферменты, например пероксидазу. В основе ИФА лежит принцип взаимодействия иммуносорбента (АГ возбудителя инфекции) с выявляемыми АТ соединения комплекса АГ—АТ с иммуноглобулинами, содержащими ферментную метку.
Иммуноглобулины, применяемые в таких тест-системах, так называемыйконъюгат, могут быть получены на основе антивидовых АТ (например, кроличьи АТ против иммуноглобулинов человека) или на основе АТ, направленных против человеческих иммуноглобулинов определенного класса (М, G, А).
В зависимости от того какие АТ использованы, тест-система будет выявлять в исследуемом образце или специфические АТ независимо от их класса, или АТ лишь определенного класса (например, только иммуноглобулин G или только иммуноглобулин М).
Существует несколько методов постановки реакции, однако в настоящее время используется в основном следующая схема.

Схема проведения ИФА (по Бургасовой и Безденежных,1969)

Схема проведения ИФА (по Бургасовой и Безденежных,1969): а — АТ против АГ сорбированы на стенках пробирки; 6 — добавление исследуемой сыворотки к искомым АГ, которые взаимодействуют с АТ и фиксируются на стенках пробирки; в — введение АТ к данному АГ, меченных ферментом (пероксидазой), которые также фиксируются на стенках пробирки; г—добавление перекиси водорода и хромогена, который под действием кислорода, выделяющегося при разложении Н202 пероксидазой, изменяет свой цвет на желтый.
Сначала на стенках полистироловых пробирок сорбируют АТ против определенного АГ. В эту же пробирку вносят исследуемую сыворотку (или другой биологический субстрат). Если там содержатся искомые АГ, то они взаимодействуют с АТ и вместе с ними фиксируются на стенках пробирки. После этого в пробирку вводят АТ к данному АГ, меченные ферментом, которые также присоединяются к образовавшемуся иммунному комплексу и остаются на стенках пробирки. Для обнаружения и количественной оценки этих комплексов в пробирку добавляют перекись водорода (Н202) и хромогены. Фиксированный к стенке пробирки фермент (пероксидазу) разлагает Н202 с выделением кислорода. Последний окисляет хромоген, который приобретает желтый цвет. Интенсивность окрашивания и соответственно количество искомого АГ оценивают спектрофотометрически или визуально.