отчетный период с 05.02.2021г. по 11.02.2021г.

За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на: 

- бруцеллез крупного рогатого скота – 68 проб;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 12 проб;
- хламидиоз мелкого рогатого скота – 12 проб;
- листериоз мелкого рогатого скота – 12 проб;
- инфекционный эпидидимит мелкого рогатого скота – 12 проб;
- бруцеллез свиней – 173 пробы;
- хламидиоз свиней – 173 пробы;
- бруцеллез лошадей – 35 проб;
- сап лошадей –35 проб;
- случная болезнь лошадей – 35 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 35 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 82 пробы, положительных нет;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 12 проб, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 173 пробы, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 35 проб, положительных– 6 проб;
- лейкоз крупного рогатого скота – 8 проб, положительных нет.


За отчетный период в отдел химических исследований поступило 20 проб, проведено 67 исследований.
За отчетный период выявлено 19 положительных результатов.
1. Установлено несоответствие крови по 19 биохимическим показателям:
(выше нормы - 9: неорганический фосфор - 5, каротин - 2, общий белок - 2;
ниже нормы - 10: щелочной резерв - 8, общий белок - 2).


Бенз(а)пирен в пищевых продуктах и его влияние на человека

Бенз(а)пирен – ароматическое соединение, представитель семейства полициклических углеводородов, обладает сильнейшей канцерогенной активностью; чрезвычайно токсичен. Это химическое соединение первого (высшего) класса опасности, вызывающее онкологические заболевания, способное проникать в организм через кожу, органы дыхания, желудочно-кишечный тракт, плаценту. Помимо канцерогенного, бенз(а)пирен оказывает мутагенное, эмбриотоксическое и гематотоксическое действие.
Бенз(а)пирен является наиболее типичным химическим канцерогеном окружающей среды, он опасен для человека даже при малой концентрации, поскольку обладает свойством биоаккумуляции. Будучи химически сравнительно устойчивым, бенз(а)пирен может долго мигрировать из одних объектов в другие. В результате многие объекты и процессы окружающей среды, сами не обладающие способностью синтезировать бенз(а)пирен, становятся его вторичными источниками.
Бенз(а)пирен является результатом технического прогресса и следствием деятельности человека. Основные источники техногенного загрязнения – сжигание твердых и жидких органических веществ, в том числе нефти и нефтепродуктов, древесины, антропогенных отходов, однако его образование может происходить и без процессов горения – при пиролизе, тлении и полимеризации.
Присутствие бенз(а)пирена в пищевых продуктах наиболее вероятно в тех, которые в процессе приготовления контактируют с продуктами сгорания топлива: это – копчёные колбасные изделия, копчености из мяса и субпродуктов, рыба, консервы из копчёной рыбы. Бенз(а)пирен может содержаться в любой пище, приготовленной при контакте с горячими продуктами сгорания топлива.
Предельно допустимое содержание (ПДС) бензапирена на территории Таможенного союза устанавливается регламентом ТР ТС 021/2011 на уровне не более 1 мкг/кг для большинства продуктов, 5 мкг/кг для копчёной рыбы.
Для контроля содержания бенз(а)пирена применяется метод высокоэффективной жидкостной хроматографии. Имеющиеся современные приборы-хроматографы очень чувствительны и способны решать большое количество сложных аналитических задач, в том числе обнаружение минимального присутствия бенз(а)пирена в исследуемых объектах.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 32 пробы материала, проведено 32 исследования, выявлен 1 положительный результат.

Некробактериоз животных относят к тяжелым инфекционным заболеваниям (возбудитель - палочка некроза FusobacteriumNecrophorum), поражающим чаще всего крупный рогатый скот (в основном телят). Распространен также некробактериоз овец, свиней, лошадей. Проявляет себя в виде некротических и гнойных поражений копыт, кожи в области вымени и половых органов, слизистых ротовой полости.
Переносчики палочки некроза - инфицированные животные, попадающие в благополучные хозяйства, а также грызуны. Бактерии долго сохраняются в навозе, подстилке, почве пастбища. Инфицирование происходит путем их попадания в организм животных через открытые раны при травмах. Среди общих симптомов - недомогание, отказ от пищи, потеря веса и продуктивности, нежелание передвигаться.
Течение и симптомы болезни зависят от вида животного, возраста, локализации болезни, степени вирулентности возбудителя.
Больных животных изолируют. Лечение должно быть начато как можно раньше и проводиться комплексно. В сельхозпредприятиях при лечении используются как групповые, так и индивидуальные средства, и методы.
У крупного рогатого скота чаще наблюдается некробактериоз конечностей, внутренних и половых органов, кожи вымени, слизистой ротовой полости и гортани (у телят). У больного животного повышается температура тела до 40 и выше градусов, которая держится в течение 1-2 дней, а затем снижается. У животного наблюдается сильное угнетение, снижается аппетит и число отрыжек, или они совсем исчезают, резко падает надой. Больная конечность сильно увеличена в объеме, становится горячей и очень болезненной. При благоприятном течении болезни острые процессы затухают, к 10-12 дню кожа и соединительная ткань в местах поражения некротизируется и отпадает, рана начинает постепенно заживать, и животное через 3-4 недели выздоравливает.
Диагноз на бактериоз ставят комплексно, с учетом эпизоотологических данных, клинических признаков, данных патологоанатомических изменений и обязательного лабораторного исследования.

Выработка естественного иммунитета после переболеваниянекробактериозом у животных не установлена. В настоящее время для вынужденной иммунизации применяются инактивированные вакцины, зарегистрированные и разрешенные к применению.
При установлении диагноза хозяйство, ферма, населенный пункт согласно постановлению, объявляется неблагополучным по некробактериозу, вводятся ограничения и проводятся мероприятия, согласно Правил по профилактике и ликвидации некробактериоза животных от 11июня 2000года № ВП 13.4.1313-00.
Профилактика некробактериоза заключается в создание хороших условий для содержания и полноценного кормления животных. В помещении скотных дворов не должно быть сырости, должна исправно работать система навозоудаления, достаточное количество подстилочного материала. Особенно это относится к фермам с беспривязным содержанием крупного рогатого скота. В хозяйстве должна своевременно проводится обработка копыт.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики  поступило 1582 пробы, проведено  1956 исследований. В ходе исследований  выявлено 3 положительных случая.
Вода – основной природный ресурс, без которого нельзя представить существование человека на планете. Здоровье людей в заметной мере зависит от ее качества, так как она используется во многих сферах жизни, в том числе для утоления жажды, приготовления пищи, а также выполнения гигиенических процедур. Чтобы избежать возникновения каких-либо проблем, связанных с нарушениями и присутствием в жидкости вредоносных веществ и бактерий, важно знать ее химический и микробиологический состав.В этом помогают современные возможности сертифицированных лабораторий, которые по запросу могут проводить санитарно-микробиологические мероприятия, осуществляемые в плановом и внеплановом порядке. Их основная цель – контроль общих и специальных эпидемиологических показателей.Для каждого типа справедливо большое количество различных показателей, среди которых следует выделить микробиологические. Учитывая, что выявление бактерий с патогенными свойствами в ходе биологического анализа – задача очень непростая, а в некоторых случаях невыполнимая, одним из ключевых показателей биологической загрязненности может стать число бактерий, присутствующее в 1 миллилитре воды. В профессиональной среде его принято называть общим микробным числом.
Общее микробное число, имеющее аббревиатуру ОМЧ, представляет собой количественный показатель, который отражает общее количество микроорганизмов с анаэробными и аэробными свойствами в 1 мл изучаемого образца воды. Речь прежде всего о тех микроорганизмах, которые не видны невооруженным глазом при образовании колоний.
Несмотря на то, что данное тестирование не так часто используется для индикации наличия патогенных бактерий, оно представляет собой важный санитарный показатель, позволяющий определить степень обсемененности объекта, повергающегося анализу. С его помощью можно вовремя отреагировать на резкое увеличение числа колоний, которое при превышении допустимого порога указывает на создание оптимальных условий для развития патогенных форм бактерий.
Определение ОМЧ - часть бактериологического анализа.
Фактически ОМЧ – это показатель качества воды, отражающий суммарное число микробов, свидетельствующих о степени загрязнения. Чтобы оперативно протестировать санитарное состояние систем водоподготовки, осуществляется бактериологический анализ воды, при котором в первую очередь рассматриваются динамические значения.
Также анализ часто применяется при необходимости оперативной проверки работы систем дезинфекции и водоподготовки. Для осуществления данной процедуры используется динамика значений в определенных точках отобранных проб воды, а не их абсолютные показатели. Сравнение показателя ОМЧ, которые устанавливаются при температурах 22 и 37 градусов, позволяет определить состояние процессов самостоятельной очистки природных водоемов.
ОМЧ может использоваться для того, чтобы убедиться в отсутствии загрязненности и нарушений, а также в пригодности воды для дальнейшего изготовления напитков и пищевых продуктов. Это связано с тем, что в них количество бактерий должно быть минимальным.
Популярность и эффективность методики позволяет в дальнейшем сравнивать получаемые данные при условии регулярного повторения процедуры отбора проб. Это позволит оперативно обнаружить возможные отклонения.
Единицей измерения в случае с общим микробным числом является КОЕ/мл – данное значение указывает на общее значение гетеротрофных бактерий, которые вырастают в течение суток при температуре около 37 градусов. Нормой установлена предельно допустимая концентрация ОМЧ в питьевой воде, уровень которого не должен превышать 50 КОЕ/мл. В случае с нецентрализованным – 100 КОЕ/мл.
Определение общего микробного числа
При выделении бактерий чаще всего используется метод мембранной фильтрации. Данный способ очень популярен в лабораториях и испытательных центрах за счет своей эффективности и высокой точности получаемых данных. Также он отличается экономичностью и простотой, требуя минимальных затрат.
Своевременное исследование с периодическим повторением процедуры позволит выявить степень опасности употребления жидкости из конкретных источников и тем самым обезопасить людей от возможного негативного влияния патогенных микроорганизмов. Важно отметить, что анализ проводится только в специализированных лабораториях, оснащенных необходимым оборудованием и имеющих соответствующее разрешение на проведение подобных процедур.
Важность правильной подготовки к проведению анализа
Прежде чем приступить к выполнению анализа, важно позаботиться о том, чтоб пробы были взяты с соблюдением установленных правил, так как их нарушение может привести к порче образцов и искажению результатов. Также важно обеспечить оптимальные условия доставки проб, в том числе исключив добавочное загрязнение, а также возможность размножения или отмирания микроорганизмов. Для этого рекомендуется доверить выполнение данных операций специалистам, которые имеют соответствующий опыт и квалификацию.
Анализ воды
Из каждой пробы делают посев не менее двух объемов по 1 мл.
После тщательного перемешивания пробы воды вносят по 1 мл в стерильные чашки Петри, слегка приоткрывая крышки. После внесения воды в каждую чашку вливают (8-12) мл (на чашку диаметром 90-100 мм) расплавленного и остуженного до (45-49) °С питательного агара после фламбирования края посуды, в которой он содержится. Затем быстро смешивают содержимое чашек, равномерно распределяя по всему дну, избегая образования пузырьков воздуха, попадания агара на края и крышку чашки. Эту процедуру производят на горизонтальной поверхности, где чашки оставляют до застывания агара.
Расплавленный агар на период проведения анализа помещают в водяную баню или термостат, поддерживающие температуру (45-49) °С.
После застывания агара чашки с посевами помещают в термостат вверх дном и инкубируют при температуре (37±1) °С в течение (24±2) ч.
Учитывая, что метод в данном случае направлен на определение общего числа колоний, судить о наличии патогенных микроорганизмов на основании полученных результатов однозначно нельзя. Однако, при обнаружении высокого микробного числа, можно установить факт бактериологической загрязненности и высокой вероятности присутствия в воде патогенных бактерий. Именно поэтому он незаменим при необходимости обнаружения массового загрязнения микробами.
Классификация обнаруженных микроорганизмов
В случае, когда необходимо определить, какие конкретно бактерии присутствуют в воде, потребуется выполнение дополнительных процедур, которые позволят классифицировать микроорганизмы по характерным признакам, в том числе цвету колоний и их форме. В дальнейшем производятся мероприятия, направленные на подбор и установку очистных систем, которые позволят стабилизировать состав воды и вернуть ее к нормальному состоянию.

Отчетный период с 29.01.2021г. по 04.02.2021г.

За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:

- бруцеллез крупного рогатого скота – 329 проб;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 1 проба;
- листериоз мелкого рогатого скота – 1 проба;
- инфекционный эпидидимит мелкого рогатого скота – 1 проба;
- бруцеллез свиней – 64 пробы;
- хламидиоз свиней – 29 проб;
- бруцеллез лошадей – 12 проб;
- сап лошадей – 19 проб;
- случная болезнь лошадей – 19 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 19 проб;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 1 проба, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 29 проб, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 13 проб, положительных нет;
- лейкоз крупного рогатого скота – 224 пробы, положительных – 1 проба.


За отчетный период в отдел химических исследований поступило 8 проб, проведено 39 исследований.



Мышьяк в пищевых продуктах

Мышьяк является естественным элементом земной коры и широко распространен в окружающей среде, в воздухе, воде и почве, являясь одним из наиболее распространенных и токсичных загрязнителей пищевых продуктов. Способствуют повышению его концентрации в природных объектах выбросы электростанций (при сжигании топлива, содержащего мышьяк), отходы металлургической и химической промышленности, некоторые пестициды (на основе мышьяка) и агрохимикаты. Иногда мышьяксодержащие препараты применяют в ветеринарии как стимуляторы роста.
В организм человека соединения мышьяка поступают с питьевой и минеральной водой, виноградными винами и соками, морепродуктами, медицинскими препаратами, пестицидами и гербицидами. Значительные количества мышьяка содержатся в рыбьем жире и морской рыбе (до 10 мг/кг), винах (до 1 мг/л и более). В питьевой воде содержание мышьяка составляет менее 10 мкг/л.
После всасывания в организм человека мышьяк поступает в кровь, где он при распределении преимущественно депонируется в печени, мышечных тканях, почках, селезенке и кожных покровах. Важной особенностью является то, что мышьяк способен проникать через плацентарный барьер, что делает возможным отравление плода при попадании мышьяка в кровь матери.
Механизм действия мышьяка основан на его взаимодействии с белками – мышьяк образует прочные связи с ними и нарушает полностью или частично их функции.
Допустимая суточная доза (безопасная доза для организма человека) мышьяка составляет примерно 3 миллиграмма. С целью обеспечения безопасности при расчете допустимых уровней мышьяка в пищевых продуктах учитывается его суммарное поступление с питьевой водой, пищей и лекарственными средствами.
Продуктами, наиболее подверженными загрязнению мышьяком, прежде всего, являются: рыба, морепродукты и продукты из них: моллюски, некоторые виды морских рыб, рыбий жир, омары, креветки, криль, лангусты. Также мышьяк может находиться в значительных количествах во фруктах, овощах, мясе.

Массовую долю мышьяка в пищевых продуктах определяют по средствам атомно-абсорбционной спектрометрии согласно ГОСТу Р 51766-2001 «Сырье и продукты пищевые. Атомно-абсорбционный метод определения мышьяка».
Метод основан на минерализации продукта смесью кислот и реагентов - окислителей методом автоклавной минерализации, проведении реакции гидрирования мышьяка в полученном растворе - минерализате с помощью боргидрида натрия, отгонки летучего гидрида мышьяка потоком аргона в разогретую кварцевую кювету - атомизатор и измерении доли мышьяка атомно-абсорбционным методом по величине атомного поглощения на резонансной длине волны 193,7 нанометров.
В основных пищевых продуктах содержание мышьяка регламентировано на уровне от 0,1 до 0,3 мг/кг (для рыбы и морепродуктов допускается более высокий уровень – до 5 мг/кг).

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступила 31 проба материала, проведено 31 исследование, положительных случаев не выделено.
Микозы — это заболевания домашних, диких животных и птиц, которые вызываются микроскопическими грибами. От больных животных часто заражается человек, поэтому многие ми­козы следует отнести к зооантропонозам.
Все микозы условно можно разделить на две группы: поверх­ностные и глубокие. При поверхностных поражаются кожа и ее придатки (волосы, когти, у птиц перья), а при глубо­ких— внутренние органы. Отметим, что это деление относи­тельно, так как возбудители поверхностных заболеваний при оп­ределенных условиях, проникая во внутренние органы, вызыва­ют болезнь.
Трихофития, микроспория и фавус. Эти болезни входят в группу поверхностных микозов.
Трихофитии (стригущем лишае) более подвержены крупный рогатый скот, особенно телята, а так­же овцы и лошади. На коже появляются воспалительные очаги с шелушащейся поверхностью; волосы становятся тусклыми, лом­кими, обламываются, образуются участки облысения.
Микроспорией нередко болеют кошки, собаки, пушные звери, а также лошади и мышевидные грызуны. На коже морды, на шее, у основания хвоста образуются очаги облысения; нередко поражаются усы, брови; волосы обламываются.  

Фавус (парша) регистрируется чаще среди птиц: кур, инде­ек, уток. На гребне, сережках образуются скутулы. У основания перьев появляется белый чехол, под которым кожа атрофируется, сальные и потовые железы разрушаются, перья выпадают.

  


Лабораторная диагностика
. Заключается в мик­роскопии патматериала и его посевах на питательные среды. Обычно исследуют соскоб кожных чещуек из очага поражения и волосы, которые выдергивают пинцетом. Волосы ножницами режут на кусочки 1...2 мм, чешуйки с помощью иглы помещают на 20 мин в каплю 20%-го КОН для просветления материала. Затем их переносят на предметное стекло, добавляют каплю глицерина, покрывают предметным стеклом и микроскопируют под сухой системой микроскопа. Для более точной диагностики прибегают к выделению чистой культуры гриба путем посева на специальные среды. Чаще ис­пользуют среду Сабуро и сусло-агар. В пробирки со  скошенной средой помещают маленькие кусочки волос или че­шуек на поверхность скоса. Выращивание производят при комнатной температуре  в течение 10-30 суток.


За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики  поступило 614 проб, проведено  1523 исследований. В ходе исследований  выявлено 5 положительных случаев. Методом ПЦР был выявлен генетический материал микроорганизмов родаMycoplasma.
Микоплазмоз широко распространен в популяциях свиней и присутствует в большинстве стад по всему миру. Он передается либо при контакте больных и здоровых свиней, либо воздушным путем на расстояние до 2,5-3 км, если позволяют климатические условия.
Возбудитель быстро умирает во внешней среде, особенно при сушке. Во влажных условиях сохраняется от двух до трех дней. Инкубационный период составляет от двух до восьми недель. При хороших условиях содержания течение заболевания без осложнений не представляет угрозы для организма.
Однако, микоплазмоз может иметь более серьезные последствия при наличии таких заболеваний как актинобацилезная плевропневмония (АПП), пастереллез, гемофиллез, РРСС или грипп. Микоплазмоз всегда поражает верхушечные и сердечные доли, иногда добавочную или среднюю часть диафрагмальной доли, вызывая повышение плотности легочных тканей вплоть до мягкотканной, печеночной.
Считается, что микроорганизмы рода Mycoplasmaспособствуют «активации» других возбудителей инфекционных заболеваний.
Клинические симптомы
Острая форма
Острую форму обычно можно наблюдать при первом попадании микроорганизмы рода Mycoplasmaв стадо. За период от шести до восьми недель после заражения наблюдается тяжелая острая пневмония, кашель, дыхательная недостаточность, лихорадка и высокая смертность во всех возрастных группах. Эта клиническая форма чрезвычайно редкая и нередко усложненная другими патогенами.
Хроническая форма
При нормальных условиях возбудитель может сохраняться в стаде в течении длительного периода. Материнские антитела передаются через молозиво поросятам и у них формируетсяколостральный иммунитет, который длится от семи до двенадцати недель, после чего начинают проявляться клинические симптомы. Заболевание сопровождается длительным непрекращающимся кашлем, у некоторых животных затруднено дыхание и появляются признаки пневмонии.При убое поражение легких выявляют в от 30 до 100 % легких.
Диагностика
В большинстве случаев постановка диагноза основана на клинической картине и посмертной диагностике легких у свиней.
Для лабораторного подтверждения проводят одно или несколько исследований: ELISA-тест, гистологическое исследования окрашенных препаратов легких, реакцию связывания комплемента, реакцию полимеразной цепной реакции, иммуноферментный анализ либо выделение чистой культуры возбудителя.
Лечение
В неблагополучных хозяйствах лечение должно основываться на следующих принципах:
отдельное содержание животных возрастом от 10 до 20 недель;
антибиотикотерапия (линкомицин, тетрациклин, тиамулин, тилозин);
выбраковка тяжело больных животных;
симптоматическая терапия.
Антибиотики лишь предупреждают развитие клинических признаков, но не освобождают организм животного от возбудителя.
Основное место в профилактике болезни отводится ветеринарно-санитарным и зоогигиеническим мерам. Свиней для комплектования ферм следует приобретать только в благополучных хозяйствах, карантинировать их после завоза и тщательно исследовать для выявления микоплазмоносителей.
Необходимо создавать оптимальные условия содержания и кормления, соблюдать разведение свиней по циклам, нормы плотности посадки, проводить технологические санитарные разрывы при размещении животных.
Увеличение заболеваемости связано с:
чрезмерная плотность животных в станках и помещениях;
смена температуры и сквозняки;
переохлаждение;
высокая влажность среды;
высокий уровень углекислого газа и аммиака в помещении;
плохая санитария;
высокая запыленность воздуха;
перемещение и смешивание свиней, стресс;
недостаток кормомест;
некачественное или неполноценное кормление;
резкое изменение рациона;
менее 3 кубометров воздушного пространства и 0,7 кв. метро площади на голову;
отсутствие циркуляции воздуха в помещении;
наличие таких заболеваний как РРСС, болезнь Ауески, АПП, грипп.
Для контроля микоплазмоза и респираторных заболеваний в неблагополучных хозяйствах:
вакцинация;
оптимизация количества животных в станках и помещениях;
строгий контроль за санитарией и гигиеной в помещениях;
контроль запыленности помещений, оптимизация помола комбикорма для ее уменьшения;
оптимизация вентиляции;
не допускать смешивание и одновременное содержание свиней разных возрастных групп;
строгое соблюдение технологии «пусто-занято» и проведение технологического разрыва.


За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики  поступило 174 пробы, проведено  270  исследований. В ходе исследований был выявлен 1 положительный случай (мясо в вакуумной упаковке- органолептические показатели).
Продукты можно хранить дольше, сохраняя все их свойства, особенности, если использовать специальные современные методики. Сейчас востребовано хранение мяса в вакуумной упаковке. Это проверенный способ, благодаря которому сырое мясо и мясопродукты остаются свежими в среднем в три раза дольше.
Современные методики позволяют существенно дольше сохранить сырое мясо, все его изначальные характеристики и свойства. Оно будет полностью пригодно для употребления спустя длительное время. При этом срок хранения мяса в вакуумной упаковке в среднем увеличивается в два-три раза.

В охлажденном состоянии. Поддерживается температура +3 градуса.

В состоянии заморозки. Поддерживается необходимый уровень температуры: он составляет -18 градусов.

В вакуумной пленке срок составит 7 суток.

В вакууме допускается хранить до 18-ти месяцев.

В пленке можно хранить максимум 3 дня.

В пленке допустимо хранение максимум на протяжении полугода.

Базовое свойство методики – полное откачивание воздуха из упаковки. Во внутреннем пространстве упаковочного материала создается вакуум. Именно отсутствие воздуха и позволяет значительно замедлить процессы окисления. Колонии микроорганизмов развиваются существенно медленнее, поэтому и продукт не портится.

Важно, что извне микробы тоже не проникают. Эффективность хранения резко повышается. Мясо сохраняет изначальный уровень влажности, а также запах и все вкусовые свойства. Чтобы срок хранения мяса в вакуумной упаковке действительно продлевался, необходимо гарантировать герметичность. Если упаковка нарушена, продукт начнет стремительно портиться.      Лабораторные исследования проводятся на соответствие показателей мяса и мясной продукции требованиям, установленным ТР ТС 034/2013« О безопасности мяса и мясной продукции» и      ТР ТС 021/2011 «О безопасности пищевой продукции».

 

отчетный период с 15.01.2021 по 21.01.2021

За отчетный период  специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:

- бруцеллез крупного рогатого скота – 172 пробы;
- бруцеллез свиней – 27 проб;
- хламидиоз свиней – 27 проб;
- бруцеллез лошадей – 15 проб;
- сап лошадей –15 проб;
- случная болезнь лошадей – 15 проб;
- инфекционная анемия лошадей – 15 проб;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 5 проб, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 27 проб, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 15 проб, положительных нет.


За отчетный период в отдел химических исследований поступило 50 проб, проведено 194 исследований.
За отчетный период выявлено 38 положительных результатов.
Установлено несоответствие крови по 38 биохимическим показателям:
(выше нормы – 11: щелочной резерв – 4, неорганический фосфор – 4, каротин – 2, общий белок – 1;
ниже нормы – 27: щелочной резерв – 14, общий белок - 13).


Охратоксин А в пищевых продуктах

Охратоксин А – органическое соединение, производное кумарина, микотоксин из группы охратоксинов, продуцируемый микроскопическими плесневыми грибами рода  Аспергилл и рода Пеницил.
Воздействие на человека может происходить в результате употребления зараженных пищевых продуктов, в частности, зараженного зерна и продуктов из свинины, а также кофе, винного винограда и сушеного винограда. Токсин был обнаружен в тканях и органах животных, в том числе в человеческой крови и грудном молоке. Охратоксин А, как и большинство токсичных веществ, имеет большие токсикологические различия в зависимости от вида и пола.
Чаще всего этим микотоксином заражено зерно, а также виноград и кофе. Токсическое действие охратоксина А наступает уже при низких концентрациях, поэтому его количественное определение является важной задачей пищевого и ветеринарного контроля.
Массовую долю охратоксина в отделе химических исследований определяют по средствам высокоэффективной жидкостной хроматографии.
Метод определения массовой доли охратоксина А в пробах пищевых продуктов, продовольственного сырья и комбикормах основан на последовательном проведении следующих операций:
• экстракции охратоксина А из образца подкисленным хлороформом;
• очистке экстракта на колонке с силикагелем;
• определении охратоксина А методом ВЭЖХ с использованием жидкостного хроматографа «ЛЮМАХРОМ®» с флуориметрическим детектором.
Диапазон измеряемых массовых долей охратоксина А составляет 0,0025 – 1 мг/кг. Согласно ТР ТС 015/2011 «О безопасности зерна» допустимый уровень содержания охратоксина А в продовольственном зерне (пшеница, ячмень, рожь, овес, рис) не должно превышать 0,005 мг/кг.


За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 17 проб материала, проведено 12 исследований, положительных случаев не выявлено.
Поступающий в отдел бактериологии и паразитологии материал (смывы с глаза, влагалища и др.) исследуется на патогенную микрофлору (возбудитель стафилококкоза).
Стафилококкоз - это острая инфекционная болезнь, проявляющаяся возникновением абсцессов в различных органах и тканях и развитием септицемии.
Возбудитель относится к роду Staphylococcus, среди которых наиболее встречаемые виды Staphylococcus aureus и Staphylococcus intermedius. К стафилококкозу восприимчивы все виды собак, пушных зверей и кролики, особенно молодняк.
Источником возбудителя инфекции служат больные животные и бактерионосители, которые выделяют возбудителя во внешнюю среду с истечениями из носовой полости, гноем из абсцессов, фекальными массами, выделениями из пораженных долей лактирующих самок, а также с мочой.
Факторами передачи возбудителя являются инфицированные корма, молоко, подстилка, инвентарь, спецодежда, шерсть. Заражение происходит аэрогенным и алиментарным путями, а также через поврежденную кожу и слизистые оболочки. У стафилококкоза ярко выражена стационарность. В местах размножения возбудителя развивается гнойное воспаление с дальнейшей интоксикацией организма. При суперинфекции щенков развивается тяжелая форма септицемии. У лактирующих самок нередко возникают гнойные маститы и эндометриты, а у быстро растущих самцов поражается мочевая система.
Период инкубации длится от 48 до 72 часов. Специалисты выделяют острый и хронический формы течение болезни. Острое течение характеризуется везикулярным дерматитом, синюшностью пораженного участка кожи, воспалением. При хронической форме снижается иммунитет, уменьшается продуктивность.
Диагноз ставится комплексно с учетом клинико-эпизоотологических данных, результатов патологоанатомического вскрытия, с обязательным проведением микробиологического исследования патологического материала. С этой целью посылают в лабораторию гнойный экссудат, молоко, кровь, носовые и влагалищные истечения.
В случае обнаружения первых признаков болезни животное следует отделить от здоровых особей, а помещение для их содержания продезинфицировать. В это время кормление животных требует тщательного контроля. Проводится исследование на наличие патогенных стафилококков.
Лабораторное исследование отделяемого больного животного должно дать полную картину о применении группы антибиотиков чувствительных к данному возбудителю. Стафилококк быстро вырабатывает резистентность к антибиотикам. При ее появлении необходимо поменять препарат с большей эффективностью. В комплексе с применением антибактериальной терапией необходим прием препаратов, повышающих общий иммунитет и витаминные комплексы.
В борьбе со стафилококкозом необходимо применять меры по улучшению рациона питания и условий содержания животных.

За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики  поступило 277 проб, проведено  876 исследований. В ходе исследований положительных случаев не выявлено
На сегодняшний день, очень важной задачей перед государством является улучшение и правильная организация ветеринарного обслуживания. С учетом того что обслуживание население в ветеринарном сегменте не может существовать без правильно организованной структуры, необходимо организовать процесс и для этого необходима – структура, целью которой является снижение заболеваемости и падежа животных. Ветеринарно-санитарная экспертиза, для успешной реализации программы необходимы специалисты, при этом возрастает соответственно роль и требования к ветеринарным специалистам.
Ветеринарно-санитарная экспертиза - одна из отраслей ветеринарии, которая контролирует методы санитарно-гигиенического исследования пищевых продуктов и технического сырья животного происхождения и определяет правила их ветеринарно-санитарной оценки.
Основные цели ветеринарно-санитарной экспертизы.
1. Предупреждать заболевание людей антропозоонозами и другими болезнями, передающихся через мясо-молочные, рыбные, яичные продукты и животное сырье.
2.Не допускать распространение инфекционных и инвазионных болезней животных через продукцию животноводства.
3.Обеспечивать высокое санитарное качество продуктов и сырья животного происхождения в процессе их первичной обработки.
4. Контролировать качество поступающих в продажу на рынок продуктов.
Основными объектами изучения ветеринарно-санитарной экспертизы служат убойные животные, пищевые продукты и сырье, получаемое от убоя сельскохозяйственных и диких животных, а также молоко, растительные и молочные продукты, рыба, яйца, мед.
Главная задача ветеринарно-санитарной экспертизы - контроль качества пищевых продуктов и сырья, которая гарантирует высокие потребительские свойства продукции, а также уменьшение потерь сырья.
С вопросами ветеринарно-санитарной экспертизы продуктов животного происхождения ветеринарным специалистам приходится иметь дело повсеместно и практически повседневно. В хозяйствах проводят убой животных для нужд местных столовых, в личных хозяйствах населения – для собственного питания и для реализации части продукции на рынке. Нередко также бывают случаи вынужденного убоя больных животных.
Бактериологическое исследование мяса и мясопродуктов. Параллельно с бактериологическим анализом в лаборатории проводят биохимическое исследование: определяют рН, ставят реакцию на пероксидазу (бензидиновая проба). Мясо крупного рогатого скота, кроме того, исследуют реакцией с нейтральным формалином (формольная проба). Это позволяет дать более обоснованное заключение о предубойном состоянии животного и порядке реализации продуктов убоя.
Мясо относят к скоропортящимся продуктам. В процессе хранения оно может подвергаться различным изменениям. Эти изменения возникают под действием собственных ферментов самого мяса (загар) или в процессе жизнедеятельности микроорганизмов (ослизнение, плесневение, покраснение, посинение, свечение, гниение). Наиболее опасный вид порчи мяса - гниение, поскольку разрушается белок и образуются вещества, вредные для организма. Для определения свежести мяса применяют органолептические и лабораторные методы.По степени свежести мясо и мясные субпродукты могут быть свежими, сомнительной свежести и несвежими.
Определение продуктов первичного распада белков в бульоне (реакция с сернокислой медью)
Метод основан на соединении иона меди с первичными продуктами распада белков, в результате чего в бульоне из несвежего мяса появляются хлопья или желеобразный осадок голубоватого или зеленоватого цвета.
Суть этого метода заключается в осаждении белков нагреванием и образовании в фильтрате комплексов сернокислой меди с оставшимися продуктами первичного распада белков, которые выпадают в осадок.
20 г фарша, приготовленного из исследуемой пробы, помещают в коническую колбу на 100 мл, заливают 60 мл воды, тщательно перемешивают, закрывают часовым стеклом, ставят в кипящую водяную баню и доводят до кипения. Горячий бульон фильтруют через плотный слой ваты толщиной не менее 0,5 см в пробирку, помещенную в химический стакан с холодной водой. Если после фильтрации в бульоне видны хлопья белка, то его дополнительно фильтруют через фильтровальную бумагу. В пробирку наливают 2 мл фильтрата и добавляют 3 капли 5%-ного раствора сернокислой меди. Пробирку встряхивают 2-3 раза и ставят в штатив. Реакцию читают через 5 мин.
Результат реакции. Мясо и мясные субпродукты считают свежими, если при добавлении раствора сернокислой меди бульон остается прозрачным. Мясо и мясные субпродукты относят к категории сомнительной свежести, если при добавлении раствора сернокислой меди происходит помутнение бульона, а в бульоне из размороженного мяса -- интенсивное помутнение с образованием хлопьев.
Мясо и мясные субпродукты считают свежими, если при добавлении раствора сернокислой меди наблюдается образование желеобразного осадка, а в бульоне из размороженного мяса - наличие крупных хлопьев.
Реакция с формалином (формалиновая реакция). Метод основан на окислении бензидини перекисью водорода в присутствии фермента мяса - пероксидазы.
Пробу мяса освобождают от жира и соединительной ткани. Навеску в 10 г помещают в ступку, тщательно измельчают ножницами, прибавляют 10 мл физиологического раствора и 10 капель децинормального раствора едкого натра. Мясо растирают пестиком, полученную кашицу переносят стеклянной палочкой в колбу и нагревают до кипения для осаждения белков. Колбу охлаждают водопроводной водой, после чего содержимое нейтрализуют добавлением 5 капель 5 %-ного раствора щавелевой кислоты и через фильтровальную бумагу фильтруют в пробирку. Если вытяжка мутная, ее вторично фильтруют и центрифугируют. 2 мл вытяжки, подготовленной, как описано выше, наливают в пробирку и к ней добавляют 1 мл нейтрального формалина.
Результат реакции. Если фильтрат прозрачный или слегка мутный, мясо считается полученным от здорового животного; если же он превращается в плотный сгусток или в нем образуются хлопья, мясо считается полученным от больного животного или убитого в состоянии агонии.
Реакция на пероксидазу. В присутствии фермента пероксидазы перекись водорода окисляет бензидин, образуя парахинондамид, который дает соединение сине-зеленого цвета, переходящего в бурый. В вытяжках из свежего мяса (доброкачественного) реакция на пероксидазу положительная. Показатели этой рекации для оценки свежести мяса имеют такое же значение, как и определение рН.
В пробирку вносят 2 мл вытяжки, приготовленной из мясного фарша и дистиллированной воды в соотношении 1:4, добавляют 5 капель 0,2 %-ного спиртового раствора бензидина, содержимое пробирки взбалтывают, после чего добавляют две капли 1 %-ного раствора перекиси водорода.
Результат реакции. Мясо свежее, если вытяжка приобретает сине-зеленый цвет, переходящий в течение 1--2 мин в буро-коричневый (положительная реакция); несвежее, если вытяжка либо не приобретает специфический сине-зеленый цвет, либо сразу появляется буро-коричневый (отрицательная реакция).

Отчетный период с 22.01.2021г. по 28.01.2021г.

За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:

- бруцеллез крупного рогатого скота – 4 пробы;
- бруцеллез мелкого рогатого скота – 113 проб;
- листериоз мелкого рогатого скота – 112 проб;
- хламидиоз мелкого рогатого скота – 112 проб, положительных – 1 проба;
- бруцеллез свиней – 24 пробы;
- хламидиоз свиней – 24 пробы;
- бруцеллез морских свинок – 2 пробы;
- бруцеллез лошадей – 3 пробы;
- сап лошадей – 3 пробы;
- случная болезнь лошадей – 3 пробы;
- инфекционная анемия лошадей – 3 пробы;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 3 пробы, положительных нет;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 112 проб, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 24 пробы, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 2 пробы, положительных нет;
- лейкоз крупного рогатого скота – 82 пробы, положительных нет.


За отчетный период в отдел химических исследований поступило 18 проб, проведено 68 исследований.

За отчетный период выявлено 16 положительных результатов.

Установлено несоответствие крови по 16 биохимическим показателям:
(выше нормы – 6: каротин – 6;
ниже нормы – 10: щелочной резерв – 4, неорганический фосфор-2, общий белок - 4).

Оценка питательности кормов по обменной энергии

Обменная энергия корма или рациона представляет собой часть общей энергии и используется организмом животного для поддержания жизни и образования продукции.
Энергетическую питательность кормов и рационов выражают в единицах обменной энергии – мегаджоулях – по видам животных.
Согласно системе оценок питательности кормов в обменной энергии, эффективность ее использования зависит от живой массы, продуктивности животного и концентрации обменной энергии в 1 киллограмме сухого вещества рациона.
Концентрация обменной энергии в сухом веществе кормов является основным показателем, определяющим эффективность использования обменной энергии на поддержание жизни животного и образование продукции.
Энергетическая оценка корма нужна для того, чтобы максимально точно предсказать, какую продуктивность можно получить от животного, кормя его этим кормом.
И наоборот, в зависимости от необходимой продуктивности животного, должно быть возможным рассчитать необходимое количество энергии из кормов.
В связи с этим говорят о различных системах энергетической оценки кормов, цель которых – выражение потребности животных в энергии и количества энергии в корме, в одинаковом масштабе.
Системы энергетической оценки развиваются как компромисс между практической необходимостью и теоретическими выводами. Разные страны имеют разные системы оценки и нормирования потребностей животных в энергии.
Самыми известными устаревшими системами энергетической оценки являются:
- Кормовая единица (советская единица, овсяная единица) – опирается на 1 кг овса, и равняется 5,9 МДж (1 414 ккал) – все еще применяется во многих постсоветских странах. Но еще в 1963 году на Пленуме отделения животноводства ВАСХНИЛ было принято решение оценивать питательность кормов и рационов, а также нормировать энергетические потребности животных в обменной энергии для каждого их вида;
- Крахмальный эквивалент был предложен Оскаром Кельнером в начале ХХ века и использовался в Германии до 1990-х годов;
- Скандинавская кормовая единица учитывает ценность 1 кг ячменя на производство молока;
- Общая питательность – этот показатель был разработан доктором Леманом в 20-е годы прошлого века и использовался в кормлении свиней в Европе;
- Общий показатель усваиваемых веществ (Total Digestible Nutrients) – раньше использовался в США и многих других странах для оценки кормов у жвачных;
- Энергетическая кормовая единица (система энергетической оценки кормов из Ростока) была разработана в бывшей ГДР и имела в своей основе крахмальный эквивалент Кельнера (усовершенствованный подход). За энергетическую кормовую единицу (ЭКЕ) принято 10 МДж обменной энергии.
Использование системы оценки энергетической питательности кормовых смесей в обменной энергии в промышленном птицеводстве нашей страны позволило значительно повысить продуктивность птицы и сократить затраты кормов на производство продуктов птицеводства.
Однако необходимо отметить, что с переводом животноводства на промышленную основу и ростом продуктивности животных повышаются требования к полноценности кормления. При этом, как показала передовая практика животноводства и более глубокие научные исследования, оценка энергетической питательности применяемых кормов в обменной энергии не отражает в полной мере их полноценность в плане влияния на рост, здоровье, плодовитость и продуктивность животных. Полное проявление таких качеств у животных возможно только при обеспечении их кормами, содержащими не только доступную энергию, но и протеины, минеральные вещества, витамины и другие биологически активные вещества.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 35 проб материала, проведено 116 исследований, выявлено 2 положительных случая.

Бруцеллез  ̶это хроническая бактериальная инфекция, поражающая жвачных, свиней и людей. Домашние питомцы, а также другие животные могут быть переносчиками бруцелл.  Для жизни взрослых млекопитающих болезнь не смертельна, но наносит большой экономический урон из-за снижения продуктивности, а также абортов.

Возбудитель заболевания  ̶группа микроорганизмов рода бруцелл. Патогенными для человека являются три: возбудитель бруцеллёза мелкого рогатого скота (Brucellamelitensis), возбудитель бруцеллёза крупного рогатого скота (Brucellaabortus), возбудитель бруцеллёза свиней (Brucellasuis). Бруцеллы очень мелкие, неподвижные, не образуют спор, но при определённых условиях могут образовывать капсулу, грамотрицательные.
Выделяют следующие факторы, способствующие проникновению бруцеллы в благополучное хозяйство:
• С бактерионосителями  ̶  обслугой, сторожевыми собаками, переболевшим скотом (молодняк более, чем взрослые животные устойчив к бруцеллезу), дикими грызунами, эктопаразитами;
• При контакте с больными животными на пастбище;
• При вольной случке;
• Через навоз, подстилку, корма, воду.
Главными признаками бруцеллеза у самок являются аборты. У коров и мелких жвачных они возникают, преимущественно, в конце стельности. Если роды произошли, отмечают задержки выхода плаценты, эндометриты, появление нежизнеспособных детенышей. Аборты у свиней при бруцеллезе могут оставаться незамеченными. Животноводов приводит в недоумение внезапная течка, наблюдающаяся посреди супоросности. Однако часто возникают осложнения. Происходит запоздалое отделение плаценты. Развивается эндометрит, возникает мастит. Под кожей и на мускулах формируются абсцессы.
Для постановки диагноза применяют лабораторные тесты, бактериологические, серологические, аллергические.
Диагноз считают установленным в следующих случаях:
• Из патологического материала выделена культура микроорганизмов;
• Позитивный результат биологической пробы;
• Положительная реакция при серологических тестах;
• Одновременный позитивный результат аллергической пробы и РСК.
В обязательном порядке коров, верблюдов, оленей, быков, телок старше 12 месяцев, овец, коз, свиноматок, хряков ежегодное обследуют на бруцеллез. Коней проверяют в неблагонадежных пунктах. В пушном звероводстве при массовых абортах проводят бактериологический анализ на бруцеллез.
При установлении окончательного диагноза накладывают карантин. Проводят санацию помещений и окружающие территории, убой клинически больных животных. Приступают к оздоровлению стада, которое осуществляется следующими способами:
1. Животных старше года прививают;
2. Замена поголовья(проводят в техслучаях, когда разрешение ветеринарного инспектора на проведение вакцинации не получено и вариант с иммунизацией на протяжении 2 лет не принес положительных результатов).
 

За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики  поступило 280 проб, проведено  820 исследований. В ходе исследований положительных случаев не выявлено.

Полимеразная цепная реакция в ветеринарии

Инфекционная патология в ветеринарии охватывает широкий круг болезней, различных как по характеру течения (острые, хронические, латентные), степени распространения (от спорадических случаев до эпизоотии), так и по сложности их диагностики. Важное, а при некоторых болезнях решающее значение имеют серологические исследования, направленные на выявление антител, вырабатываемых организмом животного в ответ на внедрение инфекционного агента или вакцины. Несмотря на ряд достоинств, методы, основанные на этом принципе, обладают недостаточной чувствительностью и специфичностью. Существенный прорыв был сделан в последние годы, когда для диагностических целей привлекли методы генной инженерии и биотехнологии. Одним из наиболее применяемых способов для диагностики инфекционных заболеваний стала полимеразная цепная реакция (ПЦР).
Полимеразная цепная реакция (ПЦР) - метод молекулярной диагностики, ставший для многих инфекций «золотым стандартом», проверен временем и тщательно апробирован клинически. Высокая чувствительность и специфичность метода позволяют гарантированно обнаруживать единичные возбудители в биологическом материале на основе их генетической информации. Аналитическая чувствительность ПЦР для большинства вирусов и бактерий составляет 1000 микроорганизмов в 1 мл пробы. Специфичность ПЦР для вирусных, хламидийных, микоплазменных и большинства других бактериальных инфекций достигает 100%. ПЦР в лабораторной диагностике инфекций характеризуется быстротой, непревзойдённой чувствительностью и высокой специфичностью. При этом ДНК инфекционных агентов может быть достаточно эффективно экстрагирована из любой биологической жидкости или ткани, а также из проб объектов окружающей среды (почвы, воды и т.д.) и продуктов питания.

 Метод прямой и позволяет достичь предельно возможной чувствительности: от одного до нескольких возбудителей в пробе. Количество исследуемого материала, как правило, составляет несколько десятков микролитов. Высокая чувствительность метода позволяет контролировать эффективность проводимого лечения. ПЦР успешно используется при диагностике труднокультивируемых и некультивируемых   возбудителей,   а  также хронических, латентных и персистентных форм инфекции. Длительность анализа не превышает 5-6 часов.
Анализ методом ПЦР основан на обнаружении в материале исследования небольшого фрагмента генетического материала (ДНК или РНК) возбудителя инфекции.
Но наряду с достоинствами имеется определённый недостаток, который можно охарактеризовать как технологический. Подразумеваются повышенные требования к оснащению лаборатории, качеству тест-наборов и строжайшее соблюдение регламента исследования во избежание получения ложных результатов. Решение проблемы качества анализов возможно при соответствующей квалификации персонала и обязательной сертификации лаборатории.
Метод ПЦР был разработан сравнительно недавно, но к настоящему времени успел занять передовые позиции как в медицинской, так и в ветеринарной лабораторной диагностике инфекционных и инвазионных заболеваний. Основные принципы ПЦР открыл в 1983 году американский химик Кэри Б. Мюллис, за что и был удостоен Нобелевской премии.
Ветеринарными специалистами уже разработаны тест-системы для диагностики методом ПЦР таких заболеваний, как туберкулёз, сибирская язва, лейкоз, нодулярный дерматит, бруцеллез, кампилобактериоз, листериоз, хламидиоз животных, классическая чума и африканская чума свиней, респираторно-репродуктивный синдром свиней, парвовирусная инфекция свиней, сальмонеллёз, микоплазмоз, грипп и др.
В настоящее время в ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория» созданы все необходимые условия для использования метода ПЦР при диагностике инфекционных заболеваний животных. Соответствующая квалификация сотрудников лаборатории позволяет получить высокое качество анализов.

отчетный период 25.12.2020г. по 14.01.2021г.

За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
 
- бруцеллез крупного рогатого скота – 15 проб;
- бруцеллез свиней – 112 проб;
- хламидиоз свиней – 112 проб;
- бруцеллез морских свинок – 4 пробы;
- бруцеллез лошадей – 27 проб;
- сап лошадей – 9 проб;
- случная болезнь лошадей – 4 пробы;
- инфекционная анемия лошадей – 4 пробы;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 4 пробы, положительных нет;
- лептоспироз свиней – 112 проб, положительных нет;
- лептоспироз лошадей – 28 проб, положительных – 1 проба;
- лейкоз крупного рогатого скота –14 проб, положительных нет.


За отчетный период в отдел химических исследований поступило 16 проб, проведено 65 исследований.


Кислотность коровьего молока

Коровье молоко – это один из самых полезных продуктов, как для взрослых, так и для детей. Оно содержит огромное количество компонентов, необходимых нашему организму.
Химический состав молока зависит от множества факторов. На него влияют условия содержания животного, его физиологическое состояние и другое. Процесс формирования молока довольно-таки сложный, в котором имеет значение состояние внешней среды проживания животного.
Кислотность – один из важнейших показателей качества молока, характеризующий свежесть молока, его пригодность к дальнейшей переработке и пастеризации, а также его сорт.
Чем ниже показатель кислотности, тем более свежим является молоко. Молоко с высоким показателем кислотности при нагревании сворачивается быстрее, поэтому подлежит переработке на кисломолочные продукты. Такое молоко целесообразно перерабатывать в сыры, так как оно быстрее свертывается сычужным ферментом.
На кислотность влияет несколько факторов:
1) особенности животных (возраст, порода, наличие мастита, условия выпаса скота, рацион питания);
2) лактационный период (кислотность повышается после отела и понижается перед концом лактации);
3) соблюдение санитарно-гигиенических норм (кислотность повышается, если в молоке содержатся микроорганизмы).
В отделе химических исследований кислотность молока определяется индикаторным методом согласно ГОСТу Р 54669-2011 «Молоко и продукты переработки молока. Методы определения кислотности».  Данный метод основан на нейтрализации свободных кислот, кислых солей и свободных кислотных групп, содержащихся в продукте, раствором гидроокиси натрия в присутствии индикатора фенолфталеина.
Если молоко свежее, оно имеет показатель кислотности 16-18 °Т. Кислотность повышается уже через два часа, если молоко не подвергалось охлаждению. По мере развития микроорганизмов, происходит процесс сбраживания, соответственно, кислотность также повышается.
Повышение кислотности приводит к тому, что белки становятся менее устойчивыми к нагреванию, поэтому молоко с кислотностью 21 °Т является несортовым, а при кислотности 22 °Т уже находится на грани свежего и кислого и не подлежит сдаче на молочные заводы.

 

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 33 пробы материала, проведено 169 исследований, получен один положительный результат.

В   трупе поросенка выделен возбудитель анаэробной энтеротоксемии Clostridium perfringens.
Поступающий в отдел материал от животных исследуется на многие бактериальные болезни, в том числе на  анаэробную энтеротоксемию.
Анаэробная энтеротоксемия  ̶ неконтагиозная токсико-инфекционная болезнь животных многих видов, преимущественно молодняка, характеризующаяся общим токсикозом организма с признаками поражения нервной системы и желудочно-кишечного тракта. Возникает она в результате интенсивного размножения в кишечнике разных типов анаэроба Clostridium perfringens и всасывания образовавшихся при этом токсинов.
Болезнь вызывают спорообразующие грамположительные палочки CI. perfringens, которые по выделению токсинов подразделяют на шесть типов: А, В, С, D, Е, F, отличающихся друг от друга антигенной структурой вырабатываемых ими токсинов.
CI. perfringens широко распространен в природе, его обнаруживают в почве, воде, навозе, продуктах животного и растительного происхождения, желудочно-кишечном тракте человека и животных.
В естественных условиях к возбудителю инфекционной энтеротоксемии наиболее восприимчив молодняк животных. Источник возбудителя инфекции - больные животные и бактерионосители, которые контаминируют почву, подстилку, предметы ухода, что обусловливает стационарность болезни. Заражение происходит алиментарным путем с инфицированными кормами, водой, при сосании вымени, загрязненного выделениями больных животных.
При анаэробной энтеротоксемии животных всех видов развитие патологического процесса происходит одинаково, независимо от типа возбудителя, вызвавшего заболевание. Накопившиеся в кишечнике токсины поражают слизистую кишечника и затем поступают в кровь и печень. В слизистой токсины вызывают глубокие изменения. Вследствие этого слизистая кишечника перестает выполнять барьерные функции, и токсины в необезвреженном виде поступают в кровяное русло, где поражают эндотелий сосудов, проникают в клетки организма, вызывая общую интоксикацию с характерным для анаэробной энтеротоксемии симптомо-комплексом.
В зависимости от типа вызванной клостридией у животного фиксируют различные изменения органов и тканей. Может иметь место вздутие, воспаление в подкожной клетчатке и мышцах, ощущается треск при нажатии, из тканей выделяется пенистый экссудат. При энтеротоксемии, в частности поражаются внутренние органы, а именно водянистая жидкость скапливается в брюшной полости, утолщаются стенки кишечника, увеличиваются лимфатические узлы, видны кровоизлияния в печени, почках, слизистых. При ботулизме и столбняке кровь густая и тёмная, а мышцы по цвету напоминают отварное мясо.
Окончательно диагностировать клостридиоз можно только в лабораторных условиях. Для этого на исследование отправляют необходимый биоматериал. В разных случаях таким могут быть кусочки поражённых тканей, содержимое кишечника, раны.
Если организм животного поражён клостридией, то после диагностики необходима комплексная терапия, которая зависит от приобретённой болезни.
Больных и подозрительных по заболеванию животных изолируют и лечат. Учитывая острое течение болезни, положи­тельный терапевтический эффект достигается на ранней стадии болезни.
Мероприятия по профилактике болезни складываются из тщательного соблюдения зоогигиенических и ветеринарно-санитарных правил содержания и кормления животных.

За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики  поступило 585 проб, проведено  1198 исследований. В ходе исследований было выявлено 2 положительных случая. В пробе сгущенного молока выявлены БГКП и КМАФАнМ. 
СГУЩЕННЫЕ МОЛОЧНЫЕ КОНСЕРВЫ С САХАРОМ - пищевые продукты, получаемые из пастеризованного коровьего цельного или обезжиренного молока, пахты или молока с добавлением сливок путем выпаривания из молока некоторой части воды и консервирования его сахарозой (свекловичным или тростниковым сахаром). В качестве вкусовых наполнителей используют также какао, кофе, кофейный напиток. Среди этих продуктов наиболее высокой пищевой ценностью отличается сгущенное молоко с сахаром. По степени сбалансированности белков, жиров и углеводов оно несколько уступает цельному молоку, но зато хорошо сохраняется при комнатных условиях.
Источники обсеменения и изменение микрофлоры в процессе производства сгущенного молока с сахаром. Впроцессе производства сырое молоко нагревают до 95-120 °С, смешивают с сахарным сиропом (растворенным в воде сахаром) при 95 °С, чтобы обеспечить содержание 41,5-42 % сахара в готовом продукте, и выпаривают под вакуумом до соотношения сгущенного молока и сахара 2,5:1, затем быстро охлаждают для кристаллизации лактозы.
В вакуум-выпарной установке может происходить размножение термофильных спорообразующих микроорганизмов, находящихся на оборудовании после плохой мойки и дезинфекции. В процессе охлаждения и кристаллизации может произойти вторичное обсеменение. При розливе молока с сахаром может также происходить обсеменение продукта из воздуха, особенно если помещение для варки сиропа сообщается с цехом розлива.
Сгущенное молоко с сахаром не является стерильным продуктом. Наиболее опасными микроорганизмами являются дрожжи, микрококки и плесневые грибы, спорообразующие бактерии и другие осмофильные микроорганизмы, способные размножаться при высоких концентрациях сахара.
Бактерии группы кишечных палочек могут попадать в консервы на последней стадии производства - в момент фасования.
Дрожжи, сбраживающие сахарозу, интенсивнее размножаются при повышенной кислотности молока и пониженной концентрации сахара. Переносчиками дрожжей чаще всего служат непроваренный сахарный сироп, воздух, тара и руки рабочих. Развитие дрожжей в готовом продукте особенно интенсивно происходит в первые 15-30 дней после выработки. Впоследствии дрожжи постепенно отмирают, поэтому в старых банках с явно выраженным бомбажом дрожжи могут быть не обнаружены.
Плесени развиваются на поверхности продукта или на внутренней поверхности крышки банки.Для предупреждения плесневения рекомендуется мыть и обсушивать банки и крышки, закрывать банки под вакуумом (при разрежении), хранить молоко при низкой температуре. Рекомендуется также устанавливать бактерицидные лампы над конвейером в тех местах, где проходят открытые банки со сгущенным молоком.
Нарушение технологического процесса приготовления продукта, некачественное сырье, антисанитарные зоогигиенические условия приводят к порокам выпускаемого продукта.
Контроль производства сгущенногомолока с сахаром.Не реже одного раза в декаду контролируют сырье, направляемое на выработку сгущенного молока с сахаром, какао, кофе.В каждой партии выпускаемых молочных консервов определяют содержание бактерий группы кишечных палочек. Общее количество бактерий в готовом продукте и по ходу технологического процесса устанавливают 1 раз в месяц.
По микробиологическим показателям продукты должны отвечать следующим нормативным требованиям:
• сгущенное цельное молоко с сахаром - бактерии группы кишечных палочек не допускаются в 1 г продукта, фасованного в потребительскую тару, и в 0,3 г продукта, фасованного в транспортную тару. Общая бактериальная обсемененность не должна превышать 2,0 х104  КОЕ/ г;
Для всех видов продуктов патогенные микроорганизмы, в том числе сальмонеллы, не допускаются в 25 г.
Кроме того, сгущенное молоко с сахаром проверяют 1 раз в 5 дней на наличие дрожжей и плесеней. Если при посеве обнаружены дрожжи, то появляется опасность, что при дальнейшем хранении консервов возникнет бомбаж.
Сгущенные молочные консервы следует периодически проверять на содержание протеолитической и липолитической микрофлоры, которая биохимически очень активна и может вызвать в процессе хранения различные пороки готового продукта. Это в основном относится к микрококкам, обладающим высокой протеолитической и липолитической активностью. В процессе хранения сгущенных молочных консервов, содержащих микрококки, могут развиться пороки вкуса в связи с липолизом жира и протеолизом белка.
Одновременно с отбором проб для контроля технологического процесса отбирают пробы для контроля санитарно-гигиенического состояния оборудования и цеха. При контроле чистоты мойки оборудования определяют общее количество бактерий, БГКП, а также периодически количество дрожжей, протеолитических и липолитических бактерий.

Подкатегории