отчетный период с 09.12.2019 г. по 11.12.2019 г.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 70 проб:
* корма – 11 проб;
* пищевая продукция – 33 пробы;
* биоматериал (кровь) – 15 проб.
Также для радиологических исследований поступило 11 проб.
За отчетный период выявлено 22 положительных результата:
1. В 1 пробе мясокостной муки установлено повышенное содержание сырой золы – 1.
2. Установлено несоответствие крови по 21 биохимическому показателю:
ниже нормы-3: общий белок – 3;
выше нормы-18: общий белок – 5; щелочной резерв – 7; общий кальций – 6.
Кислотно-щелочное равновесие в крови животных
Постоянство равновесия рН в организме поддерживается четырьмя основными буферными системами – гемоглобиновой, бикарбонатной, фосфатной и белковой. Перечисленные буферные системы представляют собой смесь слабой кислоты и соли этой кислоты. Благодаря им обеспечивается перемещение ионов от мест их образования к местам выделения почками, легкими без нарушения рН крови.
Кислотно-щелочное состояние организма характеризуется показателями буферных систем, в первую очередь бикарбонатной как наиболее лабильной (время реакции – 30 сек.). Бикарбонатная буферная система представлена слабой угольной кислотой (Н2СО3) и ее солью (NaНСО3). Состояние бикарбонатной буферной системы проводят по определению в плазме крови резервной щелочности.
Под резервной щелочностью понимают запас бикарбонатов, определяемый по общему СО2. Известно, что углекислый газ в основном содержится в составе бикарбонатов крови и только 1/20 его часть находится в растворенном и свободном состоянии. Такая малая доля существенно не влияет на оценку состояния бикарбонатной системы по общему СО2.
Для определения резервной щелочности кровь у животных берут из яремной вены в подготовленные чистые сухие центрифужные пробирки под слой вазелинового масла.
У здоровых животных в норме показатели щелочного резерва крови (по Неводову) составляют: крупный рогатый скот – 460-540 мг/%; овцы – 460-520 мг/%; козы – 380-520 мг/%; верблюды – 700-780 мг/%; яки – 520-620 мг/%; лошади – 470-620 мг /%.
При определении резервной щелочности необходимо учитывать, что она может изменяться в связи со стельностью животного.
Уровень резервной щелочности телят находится в прямой зависимости от ее содержания в крови матери. С возрастом телят резервная щелочность постепенно снижается.
Довольно резкое понижение щелочного резерва установлено у беговых лошадей. Сравнительно небольшой отдых быстро восстанавливает нормальные соотношения.
Снижение резервной щелочности крови свидетельствует о сдвиге кислотно-щелочного равновесия в сторону ацидоза, повышение – в сторону алкалоза.
Метаболический ацидоз отмечают при однотипном высококонцентратном или силосо-жомовом кормлении, кетозе, вторичной остеодистрофии, ацидозе рубца, сахарном диабете, расстройствах желудочно-кишечного тракта, особенно при диарее молодняка, сердечной недостаточности, миоглобинурии, гипоксии, нефрите, почечной недостаточности, септических процессах и др.
Респираторный ацидоз бывает вследствие замедления процесса отдачи углекислоты легкими. Такое явление наблюдается при расстройстве сердечной деятельности, отеке легких, тяжелой пневмонии, угнетении дыхательного центра, нахождении животных в среде с высокой концентрацией углекислоты в воздухе.
Респираторный ацидоз бывает вследствие замедления процесса отдачи углекислоты легкими. Такое явление наблюдается при расстройстве сердечной деятельности, отеке легких, тяжелой пневмонии, угнетении дыхательного центра, нахождении животных в среде с высокой концентрацией углекислоты в воздухе.
Состояние метаболического алкалоза у животных наблюдается при фибринозном воспалении легких, алкалозе рубца, введении в организм больших доз пищевой соды, а также при пироплазмозе и кровопятнистой болезни лошадей.
Респираторный алкалоз наблюдается при усиленной гипервентиляции легких, вследствие выведения из организма большого количества углекислого газа, а также при содержании животных на большой высоте.
Респираторный алкалоз наблюдается при усиленной гипервентиляции легких, вследствие выведения из организма большого количества углекислого газа, а также при содержании животных на большой высоте.
Определение резервной щелочности крови проводится для выяснения изменения кислотно-щелочного равновесия организма и имеет большое практическое диагностическое значение при ряде заболеваний.
отчетный период с 28.11.2019 г. по 04.12.2019 г.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 55 проб:
* корма – 15 проб;
* пищевая продукция – 22 пробы;
* вода – 6 проб.
Также для радиологических исследований поступило 12 проб.
За отчетный период выявлено 130 положительных результатов:
1. В 2 пробах мясокостной муки установлено повышенное содержание сырой золы – 2.
2. В 4 пробах питьевой воды установлено повышенное содержание жесткости – 4.
3. Установлено несоответствие крови по 124 биохимическим показателям:
ниже нормы-54: общий белок – 5; щелочной резерв – 13; общий кальций – 12; альфа-глобулины – 4; гамма-глобулины – 13; альбумины – 7;
выше нормы-70: общий белок – 7; щелочной резерв – 8; общий кальций – 9; альбумины – 1; альфа-глобулины – 15; бетта-глобулины – 29; гамма-глобулины – 1.
Снижение содержания кальция в крови коров, причины и способы предотвращения
Гипокальциемия является одной из наиболее распространенных и недооцененных патологий послеродового периода коров. По данным различных авторов, 50% высокопродуктивных коров страдают от низкого уровня кальция после отела. Дефицит кальция повышает риск возникновения метрита в 2−12 раз.
В крови коровы циркулирует небольшое количество кальция – около 10 г. Однако есть большой запас этого микроэлемента в костях – 6000 г и в пищеварительном тракте с кормом – 100 г. После отела с каждым литром молозива корова дает 2,3−2,6 г кальция. То есть, за сутки может быть выведено до 50 г кальция. В то же время животное не способно мобилизовать его из костных запасов или извлечь из корма, что приводит к снижению уровня кальция в крови.
Снижение в крови и особенно в мышцах концентрации кальция и магния вызывает нервно-мышечные расстройства, судороги и парезы, ведь эти ионы играют важную роль в соединении и диссоциации мышечных белков актина и миозина, осуществляющих сокращения. В нервно-мышечных синапсах с участием ионов кальция выделяется ацетилхолин и связывается с холинорецепторами. Если говорить простыми словами, кальций обеспечивает сокращение гладкой мускулатуры. Она содержится в пищеварительном тракте и матке. Дефицит кальция отрицательно влияет на функционирование этих органов и иммунной системы, способствует возникновению многих заболеваний.
При недостатке кальция матка коровы плохо сокращается, создавая благоприятную среду для бактерий. Через ослабленную иммунную систему увеличивается риск возникновения метрита. Фагоциты не выполняют свою функцию – не соединяются с бактериями и не фагоцитируют их. Это способствует задержанию последа, развитию субинволюции матки и метрита.
Недостаток кальция также замедляет сокращение желудочно-кишечного тракта и, как следствие, вчетверо увеличивает риск смещения сычуга. Корова, которая потребляет недостаточное количество корма и не получает необходимой энергии, начинает использовать жировые запасы. Однако полноценно использовать жир не может, потому что не получает достаточно углеводов. Увеличивается риск кетоза.
Как предотвратить дефицит кальция. Существуют различные способы профилактики гипокальциемии:
1. Уменьшение уровня кальция в рационе сухостойных коров. Этот метод использовали первым. В связи с отсутствием синтеза молока потребность в кальции у сухостойных коров значительно меньше, чем у дойных. Поэтому для поддержания паращитовидных железы в функциональном состоянии целесообразно уменьшать содержание кальция до 40 г/день, тогда как дойная корова требует минимум 70−80 г/день;
2. Уменьшение уровня протеина в рационе сухостойных коров. Этот метод способствует тому, что корова дает меньше молозива и молока после отела. Благодаря чему уменьшается риск гипокальциемии. Однако другим следствием будет низкий уровень иммуноглобулинов в молозиве. Телята будут рождаться с меньшим весом и медленнее развиваться;
3. Увеличение содержания магния в рационе сухостойных коров. Магний влияет на функционирование паращитовидной железы, выделения паратиреоидного гормона (ПТГ) и активность остеокластов;
4. Задание раствора солей кальция после отела. Это можно делать разными способами: выпаивать, вливать, вводить болюсы, делать инъекции;
5. Парентеральное введение кальция новотельным коровам (кальценон, кальцетат, кальфосет, глюконат кальция и т. д.). При внутривенном применении препаратов уровень кальция в крови быстро поднимается и одновременно быстро выводится из организма. Такой способ подходит для лечения клинической формы гипокальциемии.
Если препараты вводят подкожно, концентрация кальция в крови увеличивается медленнее. Этот способ лучше предыдущего, если вы не хотите менять технологию кормления сухостойных коров. При этом следует помнить, что хлористый кальций является кардиотоксическим. Если ввести большую дозу внутривенно, корова может погибнуть.
отчетный период с 21.11.2019 г. по 27.11.2019 г.
За отчетный период в отдел химических исследований поступило 84 пробы:
* корма – 6 проб;
* пищевая продукция – 28 проб;
* биоматериал (кровь) – 40 проб.
Также для радиологических исследований поступило 10 проб.
За отчетный период выявлено 3 положительных результата:
1. В 1 пробе мясокостной муки установлено повышенное содержание сырой золы – 1.
2. В 1 пробе жира технического выявлены массовая доля веществ, не растворимых в эфире выше нормы – 1 и массовая доля неомыляемых веществ выше нормы –1.
Нерастворимые вещества в жирах
Жиры, полученные в результате вытопки сухим или мокрым методом из жирового и жиросодержащего сырья, прессования и центрифугирования шквары, содержат различные количества примесей в виде частиц белковых веществ (шквары), кости, а также влаги. От большинства примесей, находящихся в свежевытопленном жире в эмульгированном состоянии, он становится мутным.
Жиры, полученные в результате вытопки сухим или мокрым методом из жирового и жиросодержащего сырья, прессования и центрифугирования шквары, содержат различные количества примесей в виде частиц белковых веществ (шквары), кости, а также влаги. От большинства примесей, находящихся в свежевытопленном жире в эмульгированном состоянии, он становится мутным.
В зависимости от способа получения жиры не равноценны по своим товарным достоинствам, они различаются по количеству и составу примесей, которые придают жиру нежелательную темную окраску и неприятный запах. Эти вещества могут быть удалены лишь рафинацией жиров (нейтрализация, отбелка, дезодорация).
К примесям, сопутствующим жирам, относят органические и неорганические вещества, отличные от жиров по составу и физическим свойствам. К числу таких примесей относятся фосфатиды – вещества липоидного характера, содержащие фосфор; белки и другие вещества, содержащие азот; стерины – неомыляемые вещества липоидного характера; красящие вещества (каротиноиды) – каротин и ксантофил, хлорофилл, пигменты и другие; ферменты и витамины; минеральные элементы, определяемые в зольном остатке после сжигания; вещества, образующиеся или попадающие извне в жир при его извлечении и переработке.
Низкие качественные показатели технических жиров (особенно по цвету и запаху) ограничивают их использование для производства таких видов продукции, как высокомолекулярные спирты, смазочные материалы, туалетное мыло, а также в виде добавок в комбикорма.
Присутствие свободных жирных кислот в жирах является следствием гидролитического расщепления глицеридов в процессе хранения сырья в неблагоприятных условиях, а также результатом длительного теплового воздействия на сырье в процессе его обработки. Содержание свободных жирных кислот в жирах колеблется в широких пределах и зависит от степени их испорченности при хранении сырья, а также от способа и полноты извлечения жира из сырья.
Значительная часть примесей, отличных по своей плотности от жира, может отделиться от него сразу после его получения (отстстаивание, сепарирование, фильтрование). При данных процессах осаждение частиц примесей происходит под действием силы тяжести (отстаивание) или центробежной силы (центрифугирование).
Однако подобным путем выделяется лишь часть примесей, а другие остаются в жире в виде достаточно устойчивого золя. Вода, включенная в эту систему, является важным фактором, влияющим на состояние и устойчивость коллоидной системы жира. В зависимости от количества, условий ее распределения и температуры вода может быть в растворе в связанной форуме, т. е. включенной в гидратные оболочки частичек примесей, и в состоянии эмульсии.
Фосфатиды, белки и их комплексные соединения, являясь частью мелкоизмельченной фазы жира, вместе с тем стабилизируют другие примеси, сопутствующие жирам, в частности влагу.
отчетный период с 02.12.2019 г. по 06.12.2019 г.
За отчетный период специалистами серологического отдела
ГБУ «Оренбургская областная ветеринарная лаборатория»
проведено исследований на:
- бруцеллёз крупного рогатого скота – 317 проб;
- бруцеллез мелкого рогатого скота - 447 проб;
- хламидиоз крупного рогатого скота – 17 проб;
- хламидиоз мелкого рогатого скота – 6 проб;
- паратуберкулез крупного рогатого скота – 5 проб;
- листериоз мелкого рогатого скота – 6 проб;
- бруцеллез лошадей – 16 проб;
- сап лошадей - 16 проб;
- случная болезнь ослов - 1 проба;
- бруцеллез ослов – 1 проба;
- сап ослов – 1 проба;
- лептоспироз крупного рогатого скота – 49 проб, положительных - нет;
-лептоспироз свиней -79 проб, положительных – нет;
- лептоспироз лошадей – 19 проб, положительных – нет;
- лептоспироз мелкого рогатого скота – 115 проб, положительных - нет;
- лептоспироз пони – 1 проба, положительных – нет;
- лептоспироз ослов – 1 проба, положительных - нет;
- лейкоз крупного рогатого скота – 286 проба, положительных - 27 проб.
отчетный период с 25.11.2019 г. по 29.11.2019 г.
За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 414 пробы материала, проведено 583 исследований, положительных случаев 12:
1. 12 проб стабилизированной крови КРС - Лейкоз (гематология):
Оренбургский район - 2(п.Караванный);
Переволоцкий район - 10 (с.Притория, к-з. им. К.Маркса).
Стронгилоидоз лошадей
Стронгилоидоз лошадей вызывает нематода Strongyloides westeri, относящаяся к подотряду Rhabdiasata и семейству Rhabdiasidae. Длина гермафродитной самки 8—9 мм, ширина тела одинакова почти на всем протяжении — около 0,09—0,095 мм. Рот окружен тремя небольшими губами, пищевод длинный, цилиндрический, длина его 1,2—1,5 мм. Анус на расстоянии 0,12—0,13 мм от хвостового конца. Вульва в форме поперечной щели и расположена у начала задней трети длины тела. Яйца покрыты нежной оболочкой, длина их 0,04—0,052 мм, ширина 0,032—0,04 мм.
Гермафродитная самка откладывает яйца с личинками, а на более ранних стадиях развития — с шарами дробления. Личинки S. westeri, только что вышедшие из яйца, достигают в длину 0,2 мм, внутреннее строение их не изучено. Головной конец личинки притуплён, хвостовой слегка заострен. Через 1,5—2,5 ч личинка приобретает рабдитовидную форму: на пищеводе образуются два бульбуса, кишечник становится ясно видимым, голова отчетливо срезана и снабжена сосочками; длина такой личинки 0,21 мм. Через одни-двое суток рабдитовидные личинки превращаются в филяриевидных. В этой стадии личинка достигает 0,42—0,54 мм длины, пищевод длинный, цилиндрический, хвост заостренный с вырезкой на самом конце.
Биология возбудителя. Цикл развития S. westeri протекает по той же схеме, что и у возбудителя стронгилоидоза жвачных. Гермафродитные самки паразитируют в тонком кишечнике, срок жизни их 8—9 мес.
Во внешней среде инвазионные личинки сохраняются в течение двух месяцев, они способны к активной миграции. Лошади заражаются главным образом в конюшнях. В организме лошадей паразит достигает половой зрелости на восьмой день после заражения. Чаще всего и наиболее интенсивно поражается молодняк — жеребята в возрасте до года. У них отмечают расстройства пищеварения (поносы). Взрослые лошади стронгилоидозом не болеют, но бывают носителями и распространителями инвазии.
Диагноз на стронгилоидоз лошадей осуществляют овоскопическими и лярвоскопическими методами. Если исследованию подлежат свежевыделенные фекалии, пролежавшие с момента взятия проб не более четырех — шести часов летом и 18 ч зимой, применяют метод нативного мазка или метод Фюллеборна. Фекалии, пролежавшие больше указанного времени, исследуют по методу Бермана или проводят макроскопическую диагностику по методу Т. И. Поповой. В фекалиях, исследованных в течение первых двух дней после взятия по методу Бермана, обычно находят рабдитовидных личинок, а в последующие дни — филяриевидных. По строению, форме и размерам рабдитовидные личинки Strongyloides очень похожи на личинок стронгилят первой стадии, последние отличаются тем, что немного длиннее и имеют более заостренный хвост. В первые дни в фекалиях жеребят личинок стронгилят, как правило, не бывает; они вылупляются из яиц позже, поэтому дифференцировать рабдитовидных личинок первой стадии стронгилят не нужно. Филяриевидные (инвазионные) личинки Strongyloides легко отличить от инвазионных личинок стронгилят — они не заключены в капсулу и не имеют тонкого и очень удлиненного хвоста.
При исследовании по методу Т.И. Поповой, фекалии, взятые от жеребят, помещают в стеклянные стаканы и на двое суток оставляют в комнате или ставят в термостат (температура 25— 30 °С). За это время личинки выходят из фекалий и располагаются на поверхности, а затем переползают на стенки сосуда, образуя серовато-белые сплошные наложения различной формы, размером 1 —1,5 см2. Эти культуры личинок видны невооруженным глазом. Личинки стронгилят таких колоний на стенках стаканов не образуют. Если поддерживать необходимую влажность, колонии личинок Strongyloides могут оставаться на стенках стакана до 15 дн. и более.
Диагноз на стронгилоидоз лошадей осуществляют овоскопическими и лярвоскопическими методами. Если исследованию подлежат свежевыделенные фекалии, пролежавшие с момента взятия проб не более четырех — шести часов летом и 18 ч зимой, применяют метод нативного мазка или метод Фюллеборна. Фекалии, пролежавшие больше указанного времени, исследуют по методу Бермана или проводят макроскопическую диагностику по методу Т. И. Поповой. В фекалиях, исследованных в течение первых двух дней после взятия по методу Бермана, обычно находят рабдитовидных личинок, а в последующие дни — филяриевидных. По строению, форме и размерам рабдитовидные личинки Strongyloides очень похожи на личинок стронгилят первой стадии, последние отличаются тем, что немного длиннее и имеют более заостренный хвост. В первые дни в фекалиях жеребят личинок стронгилят, как правило, не бывает; они вылупляются из яиц позже, поэтому дифференцировать рабдитовидных личинок первой стадии стронгилят не нужно. Филяриевидные (инвазионные) личинки Strongyloides легко отличить от инвазионных личинок стронгилят — они не заключены в капсулу и не имеют тонкого и очень удлиненного хвоста.
При исследовании по методу Т.И. Поповой, фекалии, взятые от жеребят, помещают в стеклянные стаканы и на двое суток оставляют в комнате или ставят в термостат (температура 25— 30 °С). За это время личинки выходят из фекалий и располагаются на поверхности, а затем переползают на стенки сосуда, образуя серовато-белые сплошные наложения различной формы, размером 1 —1,5 см2. Эти культуры личинок видны невооруженным глазом. Личинки стронгилят таких колоний на стенках стаканов не образуют. Если поддерживать необходимую влажность, колонии личинок Strongyloides могут оставаться на стенках стакана до 15 дн. и более.
Лечение. При стронгилоидозе лошадей эффективны мебендазол, тиабендазол и парбендазол. Дозы и методика применения такие же, как и при параскаридозе.
Профилактика заключается в дегельминтизации больных животных, проведении общесанитарных мероприятий.
Профилактика заключается в дегельминтизации больных животных, проведении общесанитарных мероприятий.
