Емкости с пробами биологического материала должны быть упакованы и опечатаны. К пробам прилагается сопроводительное письмо. В нем указываются: дата, время отбора проб, дата последней вакцинации восприимчивых животных, адрес в пределах места нахождения и наименование хозяйства, перечень проб, телефоны, адрес электронной почты специалиста госветслужбы, осуществившего отбор проб. При направлении проб крови от восприимчивых животных к сопроводительному письму должна прилагаться опись проб крови с указанием порядковых номеров проб, инвентарных номеров или кличек восприимчивых животных, их пола и возраста, даты последнего введения восприимчивым животным живых вакцин или иммунобиологических лекарственных препаратов-аллергенов, а также даты отела или даты планового отела коров/нетелей, от которых отобраны пробы крови.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 3 пробы, проведено 7 исследований.

Общая токсичность кормов

Чтобы обеспечить успешное производство животноводческой и птицеводческой продукции, необходимо уделять особое внимание качеству и безопасности используемых для кормления животных кормов. Почему этот продукт может стать токсичным?
В процессе хранения кормов может возникнуть ухудшение их качества по химическим и биологическим показателям. Токсичность кормов является основной причиной развития токсикозов у животных и птиц, поэтому необходимо своевременно и регулярно проводить исследования кормов на определение токсичности.
Общая токсичность – свойство кормов и кормовых добавок, характеризующее содержание токсичных веществ выше допустимого уровня, которое может вызвать заболевание или гибель животных. Отравления вызывают отдельные ядовитые растения, ядовитые семена, кормовые средства с заведомо известными токсическими свойствами при их неправильном применении, а также корма, загрязненные отдельными агрохимикатами.
Кроме того, отравления могут возникнуть при использовании корма, пораженного грибками и другими макро- и микроорганизмами. В зависимости от механизма воздействия грибов на организм кормовые заболевания (или микотические заболевания) животных разделяются на микозы и микотоксикозы. Для микозов характерным является то, что грибы, попадающие в организм с кормом, прорастают и размножаются в тех или иных органах и тканях и оказывают как местное, так и общее действие на организм. Микотоксикозы отличаются тем, что воздействие оказывают токсины, выделяемые развивающимися на кормах грибами.
Кормовые отравления животных причиняют значительный ущерб хозяйству, а употребление в пищу зараженной продукции от таких животных приводит к отравлениям людей. Общая токсичность в кормах для всех видов животных и птицы не допускается, токсичные корма не подлежат скармливанию.

В отделе химических исследований общую токсичность кормов определяют методом биотестирования на стилонихиях, а также методом биотестирования на кроликах и мышах по ГОСТ 31674-2012 Корма, комбикорма, комбикормовое сырье. Методы определения общей токсичности.
Метод биотестирования на стилонихиях основан на извлечении из исследуемых кормов различных фракций токсических веществ параллельно ацетоном и водой с последующим воздействием этих экстрактов на стилонихий. Оценку результату биотеста дают по реакции гибели инфузорий. Безопасным в этом случае следует считать определенный как нетоксичный ацетонового, так и водного экстракта.
Метод биотестирования на кроликах (кожная проба) и мышах (острый опыт) дает возможность учесть дермонекротическое действие на пищеварительную систему теплокровных животных. Результат определяют по совокупности реакций в обоих методах: корм нетоксичный (нетоксичен в обоих тестах), корм токсичный (токсичен хотя бы в одном тесте).

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 3 проб материала, проведено 10 исследования, выявлено 2 положительных результата.

Сап - заразное заболевание цельнокопытных (лошадь, осел, мул), протекающее преимущественно в хронической форме и пе­редающееся человеку. В органах (лимфатические узлы, легкие, печень и др.) изменения возникают в виде типичных санных узелков различной величины.
Морфология возбудителя (Pseudomonas mallei) - палочка с за­кругленными концами, длиной 1—5 мкм, с характерным зерни­стым строением. Бактерия полиморфна: может иметь коккообразные, вздутые формы; микроб часто располагается нитями, принимает вид палочек с неправильными контурами. Нити из бактерий средней длины, состоят обычно из 4—8 члеников. Обнаружены фильтрующиеся формы, которые при пассаже на животных восстанавливаются в типичные формы. Палочка са­па грамотрицательна, окрашивается водно-спиртовыми раствора­ми анилиновых красок со щелочными растворами, со щелоч­ными протравами. Наблюдаются биполярные и неравномерно окрашенные палочки. При электронной микроскопии видны светлые участки протоплазмы и плотные гранулы. Спор и кап­сул палочка не образует. Является факультативным аэробом.
Лабораторная диагностика сапа: материалом для исследования могут служить:
- стерильно взятые носовые выделения;
- гнойное отделяемое язв;
- пунктаты подкожных абсцессов;
- кусочки органов из трупа;
- лимфатические узлы.
Консервирование материала возможно 30%-ным стерильным глицерином.
Микроскопическое исследование: микроскопия мазков из пато­логического материала ввиду отсутствия специфических мето­дов окраски бактерии сапа имеет ограниченное диагностиче­ское значение, но важна для исключения других возбудителей. Мазок окрашивают по Граму и по Романовскому-Гимзе. Бактериологическое исследование: посевы материала произво­дят на глицеринизированный картофель, мясо-пептонный агар и бульон. На картофельно-глицериновой среде через 3—4 дня наблюдается характерный рост возбудителя сапа в виде янтар-но-коричневого цвета слизистого налета. К 6-8-му дню куль­тура становится мутной, красноватого оттенка. Чистую культу­ру получить не всегда удается, так как посторонняя флора препятствует росту палочки сапа. При хроническом сапе бак­териологическое исследование часто дает отрицательный резуль­тат. Для идентификации возбудителя учитывают его:
- биохимические свойства;
- агглютинабельность;
- патогенность для лабораторных животных.
Биологической пробой заражаются морские свинки (самцы), хо­мяки, кошки. Исследуемый материал можно вводить подкожно (если он не загрязнен), но более надежно внутрибрюшное за­ражение. Через 3—5 дней у зараженного самца развивается орхит. Через 8—15 дней большая часть свинок погибает. На высоте заболеваний свинок забивают и производят бактериологиче­ское исследование органов и тканей.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведены исследования по выявлению ДНК генетически модифицированных ингредиентов растительного происхождения в кормах, выявление микроорганизмов в пищевой продукции. Положительных случаев не выявлено.

Cуши и роллы, готовятся из ингредиентов, основная часть которых не подвергается тепловой обработке, поэтому данная категория блюд относится к скоропортящимся. Широкое использование в рецептурах свежей или малосоленой рыбы, еще больше увеличивает риски употребления данных блюд. Известно, что рыба может быть источником и носителем патогенной и условно-патогенной микрофлоры и при неправильном хранении вызывать пищевые отравления.  Наиболее частыми возбудителями отравлений рыбой являются стафилококки, вибрионы, бациллы, сальмонеллы, листерии и клостридии. Данные кулинарные особенности японской кухни делают строгим и обязательным контроль рыбы и морепродуктов, используемых в качестве ингредиентов суши и роллов.
Необходимо учитывать, что технология приготовления суши и роллов блюд предполагает исключительно ручные операции: например: формование роллов осуществляется с помощью бамбуковой циновки, качественное мытье и дезинфекция которой практически невозможна. Поэтому применение некондиционного сырья и полуфабрикатов, нарушение условий и сроков хранения, несоблюдение сотрудниками правил личной гигиены и производственной санитарии может вызвать заболевания желудочно-кишечного тракта человека.
Одним из основных исследований на микробную безопасность — это определение общего микробного числа (КМАФАнМ). Данный показатель демонстрирует общее содержание микробов в исследуемом сырье или блюде, и его максимальное значение определено нормативными документами. Контроль общего микробного числа используется на всех этапах переработки и производства продукции, в том числе упаковку и фасовку, что дает возможность отследить микробиологическую чистоту ингредиентов, оборудования и пр. Увеличенное значение КМАФАнМ является индикатором размножения микрофлоры, среди которой может присутствовать и патогенная, вызывающая порчу продукта и как следствие пищевые отравления. Показатель КМАФАнМ характеризует качество, свежесть и безопасность продуктов питания. превышение нормы- низкий уровень санитарно-гигиенических условий на производстве, нарушение режимов хранения и транспортировки продукта.
Обнаружение БГКП (колиформные бактерии) в пищевых продуктах свидетельствует об их фекальном загрязнении. Данные бактерии могут попадать в продукты из воды, с оборудования, рук рабочего персонала и из других источников, что свидетельствует о неудовлетворительном общем санитарном состоянии производства.
Для обеспечения выпуска безопасной и качественной продукции необходимо соблюдение ряда факторов: высокое качество исходного сырья; правильно подобранные температурные режимы обработки сырья; соблюдение режимов технологического процесса производства роллов и суши; соблюдение санитарно-гигиенических условий производства продукта; соблюдение режимов холодильного хранения в цепи производитель — предприятия торговли — потребитель.

Срок годности пищевой продукции - интервал времени, в течение которого товар сохраняет свои физико-химические и органолептические свойства. Это период, установленный нормативным документом, в соответствии с которым изготовлен продукт, в течение которого его можно употреблять без риска для здоровья.
Срок годности начинается с момента окончания технологического процесса по изготовлению продукта, а заканчивается критической датой, после которой свойства продукта претерпевают необратимые изменения.

Речь идет о таких параметрах (свойствах):

- органолептические свойства;

- физико-химические свойства;

- допустимое содержание различных биологических веществ;

- пищевая ценность;

- максимально допустимое содержание опасных микроорганизмов;

- соответствие своему функциональному предназначению.

Срок годности всегда прямо связан с условиями хранения продукции. Если они не соблюдаются, то срок годности может снизиться в разы. Срок годности начинается со времени, которое продукт хранился на складе предприятия изготовителя, и времени его транспортировки до точки реализации, и период его нахождения на складе организации.

Все продукты питания делятся на типы в зависимости от сроков годности:
К скоропортящимся относятся пищевые продукты, в т.ч. специализированные продукты детского и лечебно-профилактического питания, требующие для сохранения качества и безопасности специальных температурных или иных режимов, без обеспечения которых они подвергаются необратимым изменениям, приводящим к вреду для здоровья потребителей или порче - неконсервированные мясные, птице - и яйцепродукты, молочные, рыбные и нерыбные объекты промысла; мучные кремово-кондитерские изделия и изделия с отделками с массовой долей влаги более 13 %; кремы на растительных маслах; напитки; продукты переработки овощей; жиросодержащие продукты, в т.ч. майонезы, маргарины; все продукты и блюда общественного питания.
К нескоропортящимся относятся неконсервированные продукты, не нуждающиеся в специальных температурных или иных режимах хранения, мучные кондитерские и хлебобулочные изделия без отделок, сахаристые кондитерские изделия, пищевые концентраты, сухие продукты, в т.ч. продукты для детского и лечебно-профилактического питания, с содержанием массовой доли влаги менее 13 %.
Основой работы по гигиеническому обоснованию сроков годности пищевых продуктов является проведение микробиологических исследований образцов продукции в динамике хранения при температурах, предусмотренных нормативной документацией и/или технической документацией.
Для готовых пищевых продуктов, относимых к категории скоропортящихся, которые в процессе производства подвергались термообработке при температурах ниже 80 °С, а также вырабатывались по технологиям с использованием ручных операций, необходимо проведение контрольных параллельных испытаний не только при температуре (4±2) °С, что предусмотрено нормативной или технической документацией, но и при температуре (9±1) °С.
При этом учитывается тот факт, что для размножения в продукте патогенных и условно-патогенных микроорганизмов (таких, как иерсинии, листерии, сальмонеллы) требуется более длительное время, чем для размножения мезофильных возбудителей кишечных инфекций. Кроме того, он используется и для регистрации начала окислительной порчи жирового компонента.
Проводятся испытания одной из трех подлежащих исследованиям партий пищевой продукции.
Сроки исследования продуктов должны по длительности превышать предполагаемый срок годности, указанный в проекте нормативной или технической документации, на время, определяемое так называемым коэффициентом резерва.
Образцы продукции должны быть подвергнуты микробиологическим исследованиям в соответствии с методами, утвержденными в установленном порядке.
Перечень исследуемых микробиологических показателей для получения подробной санитарно-микробиологической характеристики и подтверждения стабильности продукта в динамике хранения:КМАФАнМ, БГКП, патогенные микроорганизмы, в т.ч. сальмонеллы, сульфитредуцирующие клостридии. В мясных продуктах при обосновании сроков годности необходимо исследовать на отсутствие S. aureus, количество дрожжей и плесневых грибов, количество молочнокислых микроорганизмов в динамике хранения.
Оценка органолептических свойств пищевых продуктов проводится по следующим показателям:
- внешний вид;
- цвет; 
- вкус;
- запах;
- консистенция и др. признаки.
Оценка органолептических свойств проводится не менее 2-х раз - в начале хранения и в конце предполагаемого срока годности. По результатам комиссионной дегустационной оценки органолептических свойств оформляется соответствующий документ (протокол).

Листериоз. Историческая справка.

Прошло более 100 лет со времени первого описания листериоза. Значение этой инфекции в патологии людей и животных не только не уменьшилось, а даже возросло.

Все первые публикации связаны с обнаружением болезни у кроликов (Лусе во Франции, 1892; Д. Гюльферс в Швеции, 1911), у морских свинок и кроликов (Мюррей, Уэбб и Свэнн в Англии, 1926), у крысоподобного грызуна (Г. Пири в Южной Африке, 1927). В 1931 г. Д. Джилль установил эту болезнь у овец, в 1932 г. Тен-Бритч – у птиц, в 1934 г. Джонс и Литлль – у крупного рогатого скота, в 1936 г. Т. П. Слабоспицкий – у поросят, в 1948 г. Сенкеруд – у лошадей, в 1949 г. Н. Г. Трегубова – у лисиц, в 1964 г. Н. А. Литвинов – у песцов, затем у соболей М. Е. Еремеев, у нутрий – С. Е. Сорина.

Первое описание бактерии, вызывающей листериоз, было опубликовано Мюррей и др. в 1926 году. В 1924 году Мюррей и др. наблюдали шесть случаев внезапной гибели молодых кроликов в зверопитомнике Отдела патологии Кембриджского университета. Еще более многочисленные случаи имели место в течение последующих 15 месяцев. Особенности проявления болезни и возрастающая смертность способствовали организации исследований.

Ученые пришли к выводу, что возбудитель либо ранее не был описан, либо был описан недостаточно точно, поэтому информацию о нем нельзя найти в литературе. В связи с этим ученые дали ему свое название. Основной особенностью и очень важной характеристикой микроорганизма являлась выработка мощного мононуклеарного лейкоцитоза, поэтому микроорганизм назвали «Bacterium monocytogenes». Наименование рода не получалось связать с уже изученными родами, поэтому ученый предложили использовать неопределенный термин Bacterium.

В 1927 году в ходе исследования необычных случаев гибели, наблюдавшихся среди песчанок в окрестностях Йоханнесбурга, Южная Африка, Г. Пири открыл новый микроорганизм, который вызывал заболевание, определённое им как «болезнь реки Тигер». Он назвал этот новый инфекционный агент «Listerelia hepatoiytica». Наименования рода − «Listerelia» было выбрано в честь лорда Листера, одного из наиболее выдающегося исследователей в области бактериологии.

Оба первооткрывателя (Мюррей и Г. Пири) отправили обнаруженные ими штаммы в Государственную коллекцию типовых культур (Институт Листера, Лондон). Доктор Ленинхэм, директор коллекции, был поражен сходством этих двух микроорганизмов и связался с авторами. Поскольку идентичность их была очевидна, они приняли решение назвать этот вид бактерии «Listerella monocytogenes». В 1940 году Г. Пири предложил название «Listeria», так как название «Listerella» уже было использовано для обозначения представителей мицетозойных.

Официальная регистрация болезни, как нозологической единицы, в нашей стране проводится с 1956 года у животных, а у людей с 1992 года. С 50-х годов ХХ столетия началось интенсивное изучение листериоза в большинстве стран мира.

На сегодняшний день листериоз животных широко распространен и зарегистрирован во многих странах мира. Экономический ущерб, наносимый листериозом, определяется высокой летальностью от этой болезни, которая достигает 47%, а при нервных формах болезни может достигать 98-100%, снижением продуктивности животных, абортами, большими средствами, затрачиваемыми на проведение лечебно-профилактических и карантинно-ограничительных мероприятий.

В России болезнь в настоящее время стала встречаться реже в результате проведения всех необходимых ветеринарных мероприятий.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 18 проб, проведено 41 исследование.
За отчетный период выявлено 3 положительных результата.
В 1 пробе комбикорма установлена общая токсичность.
В 2 пробах сена массовая доля каротина в сухом веществе - ниже нормы.
Определение массовой доли каротина в кормах
В зеленых растениях и растительных кормах содержится желтоокрашенный пигмент — каротин, или провитамин А. Каротин, поступая с кормом в желудочно-кишечный тракт, всасывается в кровь, и в печени под влиянием фермента каротиназы из него синтезируется витамин А.
Недостаток в рационе каротина ведет к задержке роста и развития молодняка животных, снижению продуктивности животных, а также к падению устойчивости против инфекционных заболеваний. Понижение устойчивости организма к инфекциям при гиповитаминозе А объясняется снижением иммунологической реактивности, нарушением белкового, жирового и углеводного обмена, понижением запаса гликогена в печени, а также в результате ороговения (кератоза) эпителиальных клеток слизистых оболочек, через которые обычно проникает инфекция.
Самое раннее проявление гиповитаминоза А — это гемералопия (куриная слепота), затем наступает ксерофтальмия (воспаление роговицы), кератомаляция (размягчение роговицы) и, наконец, панофтальмия (гнойное воспаление глазного яблока). Процессы ороговения эпителия наблюдаются в желудочно-кишечном тракте, дыхательных путях, мочеполовых путях, во влагалище, матке и на коже. В результате этих изменений у птиц, особенно у цыплят, а также у телят, ягнят, поросят и жеребят, реже у взрослых животных появляется обильное слезотечение и выделение слизи из носа, припухание век, помутнение роговицы, поносы, кашель и опухание суставов, а также вторичные заболевания — пневмония, колибациллез и паратиф. Недостаток каротина в рационе беременных коров приводит к абортам, тяжелым растелам, задержке последа, рождению слабого нежизнеспособного, иногда слепого или мертвого приплода.

У свиней при авитаминозе А наблюдается перекошенность лицевой части головы, потеря координации движений, параличи задних конечностей, судороги и другие явления. У овец с недостатком витамина А связывают предродовые заболевания. У лошадей при недостатке витамина А нарушается нормальный рост копытного рога, вследствие чего он лишается глазури, делается сухим и ломким, на нем появляются трещины, а у коров на копыте образуются характерные перетяжки.
В отделе химических исследований массовую долю каротина в сухом веществе определяют экстракцией каротина петролейным эфиром и фотометрическим измерением интенсивности окраски экстракта, которая зависит от содержания каротина.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 10 проб материала, проведено 44 исследования, выявлено 2 положительных результата.
Поступающие в отдел пробы сыворотки крови свиней исследуются на антитела к вирусу парвовирусной болезни свиней. Парвовирусная инфекция (болезнь репродуктивных органов) свиней (Parvovirus disease) ПВСИ – контагиозная вирусная болезнь, клинически проявляющаяся только у супоросных свиноматок нарушением функции органов воспроизодства (прохолостами, малоплодием, гибелью эмбрионов, рождением малоплодных пометов, мумифицированных плодов, мертвых и слабых поросят и реже абортами).
У хряков-производителей заболевание протекает субклинически.     
Естественный хозяин вируса – свиньи и хряки, которые могут выделять его с вагинальной слизью, спермой. Как правило, заражаются серонегативные свиноматки в первой половине супоросности. Вирус, проникший в благополучное хозяйство, в течение 2-3 месяцев поражает практически всех животных. Источником возбудителя ПВСИ являются: больные животные, выделяющие вирус во внешнюю среду с фекалиями (до 2 недель), мочой, носовыми и вагинальными секретами, абортированными и мертворожденными плодами, а также плацента. Свиней можно заразить внутримышечно и внутривенно при массовых ветеринарных обработках, проводимых с нарушением правил асептики и антисептики. Заражение может происходит в родильных отделениях при травмировании родовых путей, при кастрации поросят. Болезнь сопровождается виремией. Чаще всего поражаются пометы первоопоросок. У зараженных свиноматок в более поздние сроки супоросности образуются антитела.
Диагноз на ПВСИ ставится комплексно с учетом эпизоотологических и клинических данных, массового нарушения функций органов воспроизводства у свиноматок. Для окончательного диагноза необходимо исследовать плоды, пораженные в ранние сроки супоросности, для выявления вируса (в более поздние сроки имеющиеся антитела мешают выявлению вируса).
Для лабораторного исследования необходимо направлять сыворотку крови от новорожденных поросят до приема ими молозива, жидкость из грудной и брюшной полостей мертворожденных поросят, а также сыворотку крови от свиноматок с нарушенной репродукцией через 1 месяц после опороса. Профилактика болезни в хозяйствах, свободных от ПВСИ, строится на предотвращении заноса возбудителя. Свиней, закупаемых в других хозяйствах, необходимо предварительно исследовать на ПВСИ, а также в течение 30 дневного профилактического карантинирования в своем хозяйстве. Необходимо организовать раздельные опоросы основных и ремонтных свиноматок, систематически проводить профилактическую дезинфекцию с предварительной тщательной механической очисткой помещения, инвентаря и оборудования.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 551 исследование.
Микоплазмоз крупного рогатого скота – заболевание, приносящее значительный экономический ущерб. Возбудитель широко распространен.
Возбудитель болезни – одноклеточный микроорганизм, занимающий промежуточное положение между бактериями и вирусами. Представители рода Mycoplasma способны к самостоятельному размножению, но у них нет клеточной оболочки, присущей бактериям. Вместо последней у микоплазм только плазматическая мембрана.
Заболеванию микоплазмозом подвержены многие виды млекопитающих и птиц, включая человека. Но эти одноклеточные, как и многие вирусы, специфичны и обычно не передаются от одного вида млекопитающего к другому.
Микоплазмоз у крупного рогатого скота вызывают 2 разновидности:
- М. Bovis провоцирует пневмоартрит;
- М. Bovoculi вызывает кератоконъюнктивит у телят.
В основном микоплазмоз крупного рогатого скота проявляется в 3 формах:
- пневмония;
- полиартрит;
- уреаплазмоз (генитальная форма).
Причины заражения. К микоплазмам наиболее чувствительны телята, хотя заражается крупный рогатый скот в любом возрасте. Основные разносчики микоплазмоза – больной и переболевший скот.
В организме выздоровевших животных возбудители сохраняются в течение 13-15 месяцев.
От заболевших животных возбудитель выделяется во внешнюю среду вместе с физиологическими жидкостями:
- мочой;
- молоком;
- истечениями из носа и глаз;
- слюной, в том числе при кашле;
- другими секретами.
Микоплазмы попадают на подстилку, корма, в воду, на стены, на инвентарь, заражая всю окружающую среду и передаваясь здоровым животным.
Также заражение микоплазмозом происходит и «классическими» путями:
- орально;
- воздушно-капельным;
- контактным;
- внутриутробно;
- половым.
Ярко выраженной сезонности у микоплазмоза нет, но наибольшее число заражений происходит в осенне-зимний период.
Скученность скота всегда была основной причиной эпизоотий.
Область распространения и интенсивность заражения во многом зависят от условий содержания и кормления и микроклимата помещений. Микоплазмоз крупного рогатого скота долго циркулирует внутри стада. Это объясняется длительным периодом сохранения бактерий в организме переболевших животных.
Симптомы микоплазмоза у животных.
Инкубационный период длится 7-26 дней. Чаще всего симптомы микоплазмоза наблюдают у телят весом 130-270 кг, но клинические признаки могут появиться и у взрослых животных. Явное проявление микоплазмоза происходит лишь спустя 3-4 недели после заражения. Быстрее всего заболевание распространяется в холодную влажную погоду и при большой скученности животных. Первоначальные симптомы микоплазмоза очень похожи на пневмонию:
- затрудненное дыхание: животное прилагает максимум усилий, чтобы втянуть воздух в легкие и потом вытолкнуть его;
- частый резкий кашель, который может перейти в хроническую форму;
- истечения из носа;
- иногда конъюнктивит;
- потеря аппетита;
- постепенное истощение;
- температура 40° С, особенно если на микоплазмоз «подсела» вторичная инфекция;
- при переходе заболевания в хроническую стадию температура выше нормы лишь немного.
Артрит начинается спустя неделю после появления пневмонии. При артрите у КРС отекают один или несколько суставов. Падеж начинается спустя 3-6 недель после появления клинических признаков.
При генитальной форме микоплазмоза крупного рогатого скота наблюдают обильные гнойные выделения из влагалища. Слизистая оболочка вульвы сплошь покрыта мелкими красными узелками. Больная корова больше не оплодотворяется. Возможно также воспаление вымени. У быков пальпацией определяют отек придатка семенника и семенного канатика.
Диагностика микоплазмоза. Из-за схожести симптомов микоплазмоза с другими заболеваниями диагноз можно поставить только комплексным методом. При определении болезни учитывают:
- клинические признаки;
- эпизоотологические данные;
- патологоанатомические изменения;
- результаты лабораторных исследований.
Основной упор делают на патологоанатомические изменения и лабораторные исследования.
На исследование патологоанатомических изменений надо отправлять ткани и трупы животных, не подвергавшихся лечению.
Профилактика микоплазмоза начинается со стандартных ветеринарных правил:

• не перемещать животных из неблагополучных по микоплазмозу хозяйств;
• осеменять коров только здоровой спермой;
• не вводить в стадо новых особей без месячного карантина;
• регулярно проводить дезинсекцию, дезинфекцию и дератизацию помещений, где содержится скот;
• регулярно дезинфицировать оборудование и инвентарь на ферме;
• обеспечить оптимальными условиями содержания и рационом.

При обнаружении микоплазмоза молоко от больных коров подвергают термической обработке. Только после этого оно пригодно к употреблению. Больных животных немедленно изолируют и лечат. За животными остального стада устанавливают наблюдение. Помещения и инвентарь дезинфицируют растворами формалина, йодоформа или хлора.

В 2022 году ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» прошла расширение области аккредитации. Теперь серологический отдел может ставить кольцевую реакцию (КР) с молоком на бруцеллез. Сущность данной реакции состоит в выявлении антигеном специфических антител в молоке больных бруцеллезом или иммунизированных агглютиногенными противобруцеллезными вакцинами коров.

При получении отрицательных результатов кольцевой реакции по всему стаду его считают благополучным по бруцеллезу.

Сыворотку крови животных стада/группы/населенного пункта, в котором выявлены особи, сомнительно или положительно реагирующие в КР, исследуют на бруцеллез в РБП, или в РА и РСК (РДСК), или в РА и РИД, или в РНГА, или в ИФА. При этом проводят клинический осмотр животных и исключают их заболевание маститами.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 107 проб, проведено 205 исследований.
За отчетный период выявлено 13 положительных результатов.
В 10 пробах сена массовая доля сырого протеина в сухом веществе - ниже нормы.
В 3 пробах комбикорма установлена общая токсичность.         
     Хлорорганические пестициды в молочных продуктах

Масло сливочное отличается особыми свойствами, так как содержит в основном молочный жир и обладает высокой биологической ценностью. В настоящее время в связи с загрязнением окружающей среды в молочные продукты, в том числе и в масло сливочное, могут попадать опасные химические вещества. Они могут оказывать вредное воздействие на организм человека. 
Эти вещества попадают в молочные продукты в результате мероприятий по защите растений, борьбы с вредителями, применением удобрений, при использовании моющих средств и нарушении правил их использования. К химическим веществам, попадающим разными путями в молоко, относят антибиотики, микотоксины, пестициды, гербициды, инсектициды, фунгициды, моющие и дезинфицирующие средства, тяжелые металлы, нитраты, мочевину, бактериальные яды и др.
Пестициды — это яды химического и биологического происхождения, используемые в сельском хозяйстве для защиты культурных растений от сорняков (гербициды), насекомых (инсектициды), болезней (фунгициды). Остатки этих ядовитых веществ попадают в молоко после поедания животными кормов, их содержащих. Они представляют опасность для здоровья человека, поэтому в нашей стране установлены максимально допустимые уровни их содержания в пищевых продуктах.
Хлорорганические пестициды (ДДТ, альдрин, гептахлор и др) обладают высокой стойкостью во внешней среде. При поступлении в организм животного, они аккумулируются в жировой ткани и длительное время выделяются с молоком. Использование в сельском хозяйстве наиболее стойких препаратов в нашей стране запрещено, а потребление других снижено.
В отделе химических исследований хлорорганические пестициды определяют методом ГЖХ по ГОСТ 23452-2015 (п. 9) Молоко и молочные продукты. Методы определения остаточных количеств хлорорганических пестицидов.
Метод основан на предварительной экстракции хлорорганических пестицидов, очистке экстракта и последующем количественном определении пестицидов с помощью газожидкостной хроматографии с электронозахватным детектором методом абсолютной калибровки.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 283 пробы материала, проведено 286 исследований, получено 2 положительных результата.

В последние годы в инфекционном процессе постоянно возрастает роль сапро­фитных энтеробактерий (клебсиелл, протея, морганелл, шигелл и др.), а также энтерококков. Наряду с ними одно из ведущих мест в развитии инфекционных кишечных заболеваний занимает синегнойная палочка Pseudomonas aeruginosa. Псевдомоноз (Pseudomonosis) — инфекционная болезнь, вызы­ваемая синегнойной палочкой Ps. aeruginosa, характеризующаяся у молодняка сельскохозяйственных животных гастроэнтеритами, реже — бронхопневмонией, сепсисом, у взрослых животных — по­ражением половых органов. Ps. aeruginosa — грамотрицательные подвижные, прямые или изогнутые палочки (рис.1).
Эпизоотологические данные. Болеют животные всех видов, но наиболее предрасположены пушные звери и молодняк сельскохо­зяйственных животных, особенно поросята, телята и ягнята (рис. 2).
Факторы передачи — корма, вода, почва, навоз, подстилка, предметы ухода, инвентарь и т. д. Псевдомоноз характеризуется спорадическими вспышками или медленно распространяющейся энзоотией.
Клинические признаки. Псевдомоноз у молодняка сельскохозяй­ственных животных может протекать остро, подостро и хрони­чески. Ранним клини­ческим признаком служит токсикоз, который характеризуется апатией, анорексией, учащением дыхания. У взрослых свиней заболевание проявляется в виде поражения органов воспроизводства и протекает чаще подостро и хронически. У телят характерно развитие катараль­ного энтерита или энтероколита и дисбактериоза, сопровождаю­щегося вначале диареей, затем развиваются признаки токсикоза и дегидратации.  
Лечение. Для специфического лечения на ранних стадиях раз­вития болезни разработаны и применяются поливалентная гипер­иммунная сыворотка и глобулин. Высок терапевтический эффект антибиотиков, выбор которых основывается на обязательном определении чувствительности па­тогенных синегнойных палочек к ним (рис.3).                                      
Показано симптоматическое лечение (применение адсорбен­тов, вяжущих и противовоспалительных средств).
Профилактика и меры борьбы. Основа профилактики псевдомоноза — соблюдение нормативов параметров микроклимата, техно­логии и полноценности кормления, сбалансированности рацио­нов и высокой культуры содержания молодняка сельскохозяйственных животных. Важно профилактировать производственные стрессы и иммунодефициты.

 

За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики поступило 392 пробы, проведено 542 исследования. Положительных случаев не выявлено.

Лабораторный мониторинг гриппа птиц - комплекс лабораторно-диагностических исследований по выявлению циркулирующих штаммов вируса гриппа птиц.
Грипп птиц – высоко контагиозная вирусная инфекция, которая может поражать все виды птиц. Наиболее чувствительными из домашних видов являются индюки и куры. Дикие виды птиц могут служить переносчиками инфекции. В силу естественной резистентности они сами, как правило, при этом не заболевают и могут преодолевать в процессе миграции значительные расстояния. Естественным резервуаром для вирусов гриппа птиц (ВГП) являются водоплавающие птицы, которые чаще всего ответственны за интродукцию инфекции в домашние хозяйства.
Одним из методов лабораторно-диагностических исследований на грипп птиц является иммуноферментный анализ (непрямой метод ИФА для выявления антител к гриппу типа А), исследуют сыворотки крови с целью выявления антител к вирусу гриппа птиц у птиц из птицеводческих предприятий, фермерских хозяйств, населенных пунктов и ввозимых из-за рубежа. 
Методом ИФА также производят исследования вакцинированной птицы в населенных пунктах на грипп птиц. Напряженным считается иммунитет, если у вакцинированной птицы получены положительные титры антител в 80% исследованных проб.
При подозрении на грипп птиц (наличие клинических, патологоанатомических признаков заболевания, внезапном падеже) в стадах домашней птицы рекомендуется проводить отбор проб для проведения ПЦР-диагностики. Для исследований отбираются клоакальные и/или трахеальные смывы, помет, патматериал (головной мозг, легкие, трахея, селезенка, участки кишечника).
Мониторинг дикой птицы необходимо проводить сезонно: весна, лето, осень (весенняя миграция, гнездование после вылупления птенцов, осенняя миграция).
Исследованиям подвергаются синантропные (воробьи, голуби, грачи, вороны), полусинантропные (чайки), а также дикие мигрирующие виды водоплавающих и околоводных птиц (утки, гуси, массовые виды куликов, колониально гнездящиеся цапли и др.).    
Домашняя птица обследуется: в благополучных регионах - 2 раза в год; в неблагополучных регионах и в угрожаемой зоне - один раз в месяц (каждый птичник, каждый населенный пункт): ввозимая из-за рубежа птица, эмбрионы, инкубационное яйцо - при ввозе, в период карантинирования.
Помет от дикой птицы, а также клоакальные, трахеальные смывы и патматериал исследуются методом ПЦР.
Дикая птица обследуется: в благополучных регионах - 3 раза в год (весна, лето, осень); в неблагополучных районах - 1 раз в квартал.
Помет от дикой птицы, а также клоакальные, трахеальные смывы и патматериал исследуются методом ПЦР.