Отчетный период с 07.10.2022г. по 13.10.2022г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 5076 проб сыворотки крови животных, проведено 11687 исследований. Выявлено: 48 положительных проб по лептоспирозу (у крупного рогатого скота – 12 положительных проб, у свиней – 1 положительная проба, у лошадей – 35 положительных проб), 650 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота.
Также было проведено исследование 2 проб мочи лошадей на лептоспироз. Возбудителей заболевания не обнаружено.

Лейкоз крупного рогатого скота. Историческая справка.
Первый случай лейкемии (лейкоза) у животных описал в Германии А. Лейзеринг в 1858 году, который обнаружил у больной лейкозом лошади резко увеличенную селезенку, содержащую преимущественно белые кровяные тельца. Затем в конце XIX века болезнь была описана у крупного рогатого скота, свиней, собак и кошек, овец и коз, кур.
Почти на протяжении века ученые многих стран проводили исследования по изучению этиологии лейкоза, и лишь в 1969 году Miller и сотрудники открыли вирус лейкоза крупного рогатого скота.
Фундаментальное изучение лейкоза было проведено отечественными учеными. Многолетние исследования и анализ данных литературы позволили В. П. Шишкову в 1988 году выдвинуть вирусоиммуногенетическую теорию этиологии и патогенеза лейкозов и ряда других опухолевых болезней животных. Эта теория постоянно подтверждается многочисленными исследованиями, проводимыми в разных странах мира.
В настоящее время лейкоз крупного рогатого скота диагностируют практически во всех странах мира. Наиболее широко он распространен в США, в ряде стран Центральной Европы, Дании, Швеции, странах Ближнего Востока и Африки, а также в Австралии. В нашей стране возникновение лейкоза связано с завозом племенного скота в 1940, 1945—1947 годах из Германии. В дальнейшем лейкоз крупного рогатого скота распространился повсеместно.
В серологическом отделе для диагностики лейкоза крупного рогатого скота ставится реакция иммунодиффузии в геле агара (РИД) в соответствии с ГОСТ 25382-82 «Крупный рогатый скот. Методы лабораторной диагностики лейкозов», пункт 2.3. Сущность реакции заключается в выявлении в сыворотке крови животных преципитирующих антител против антигенов онкорнавируса типа С крупного рогатого скота. Животных, сыворотки крови которых дали положительный результат в РИД, признают зараженными вирусом лейкоза. Таких животных исследуют гематологическим методом для выявления больных лейкозом животных.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 29 проб, проведено 75 исследований.
За отчетный период выявлен 1 положительный результат.
В 1 пробе молока сырого коровьего установлено пониженное содержание кислотности.

Кислотность молока

Свежее натуральное молоко, полученное от здоровых животных, характеризуется определенными физико-химическими (кислотность, плотность, жир, белок, СОМО и др.) и органолептическими (цвет, консистенция, запах, вкус) свойствами (показателями).
Однако все эти свойства могут резко отличаться в начале и в конце лактационного периода, под влиянием болезней животных и некоторых видов кормов, при хранении молока в неохлажденном виде, а также при его фальсификации.
Пониженное значение кислотности молока (ниже 16°Т) в основном обусловлено повышенным содержанием мочевины, что может быть вызвано избыточным потреблением белков с зеленым кормом, использованием значительных количеств азотных добавок в рационе животных или азотных удобрений на пастбищах. Молоко с пониженной кислотностью нецелесообразно перерабатывать в сыры — оно медленно свертывается сычужным ферментом, а образующийся сгусток плохо обрабатывается.
В отделе химических исследований кислотность молока определяют титриметрическим методом по ГОСТ Р 54669-2011 Молоко и продукты переработки молока. Метод основан на нейтрализации кислот, содержащихся в анализируемом продукте, раствором гидроокиси натрия до заранее заданного значения pH и индикации точки эквивалентности при помощи потенциометрического анализатора с пересчетом на градусы Тернера.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 2183 пробы материала, проведено 2207 исследований, получено 25 положительных результатов.
Микозы — это заболевания домашних, диких животных и птиц, которые вызываются микроскопическими грибами. От больных животных часто заражается человек, поэтому многие ми­козы следует отнести к зооантропонозам.
Все микозы условно можно разделить на две группы: поверх­ностные и глубокие. При поверхностных поражаются кожа и ее придатки (волосы, когти, перья), а при глубо­ких— внутренние органы. Отметим, что это деление относи­тельно, так как возбудители поверхностных заболеваний при оп­ределенных условиях, проникая во внутренние органы, вызыва­ют болезнь.
Болезни, такие как трихофития, микроспория и фавусвходят в группу поверхностных микозов.
Трихофития (стригущий лишай) более подвержены крупный рогатый скот, особенно телята, а так­же овцы и лошади. На коже появляются воспалительные очаги с шелушащейся поверхностью; волосы становятся тусклыми, лом­кими, обламываются, образуются участки облысения.
Микроспория нередко болеют кошки, собаки, пушные звери, а также лошади и мышевидные грызуны. На коже головы, шее, у основания хвоста образуются очаги облысения; нередко поражаются усы, брови; волосы обламываются.  
Фавус (парша) регистрируется чаще среди птиц: кур, инде­ек, уток. На гребне, сережках образуются скутулы. У основания перьев появляется белый чехол, под которым кожа атрофируется, сальные и потовые железы разрушаются, перья выпадают.
Лабораторная диагностика. Заключается в мик­роскопии патологического материала и его посевах на питательные среды. Обычно исследуют соскоб кожных чешуек из очага поражения и волосы, которые выдергивают пинцетом. Волосы режут ножницами на кусочки 1-2 мм, чешуйки с помощью иглы помещают на 20 мин в каплю 20%-го КОН для просветления материала. Затем их переносят на предметное стекло, добавляют каплю глицерина, покрывают предметным стеклом и микроскопируют. Для более точной диагностики прибегают к выделению чистой культуры гриба путем посева на специальные среды.

За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики проведено 751 исследование. В ходе исследований был выявлен 1 положительный случай.      

Стафилококковое пищевое отравление

Среди обширной группы стафилококков различают патогенные и непатогенные.
Патогенные стафилококки из рода Staphylococcus вызывают воспалительные процессы кожи, подкожной клетчатки, носоглотки (ангины, риниты, катары верхних дыхательных путей и др.). Некоторые типы патогенных стафилококков при попадании на пищевые продукты могут вырабатывать энтеротоксин, который вызывает пищевое отравление. Установлено шесть серологических типов стафилококковых энтеротоксинов, обозначаемых буквами А, В, С, D, Е, F. Большинство этих бактерий образует золотистый пигмент.
В замороженных пищевых продуктах они сохраняют жизнеспособность в течение нескольких месяцев. При обычной температуре хранения пищевых продуктов они остаются жизнеспособными более 4 мес. При благоприятных условиях возможны интенсивное развитие стафилококков и токсинообразование в самых различных продуктах (молочные, мясные, рыбные, овощные).
Наиболее благоприятной средой для развития стафилококков является молоко. Это подтверждается частотой возникновения интоксикаций, вызываемых молоком и продуктами его переработки. При температуре 35-37°С энтеротоксин образуется в молоке через 5-12 ч, а при комнатной температуре хранения (18-20°С) - через 8-18 ч. Нередко причиной интоксикации являются творог и творожные изделия, изготовленные из не пастеризованного молока, сычужные сыры, сметана, молодая брынза. Образование энтеротоксина возможно также в кипяченом и пастеризованном молоке, в сырковой массе при заражении этих продуктов после тепловой обработки. Особенно благоприятная среда для размножения стафилококков и образования энтеротоксина - кондитерские изделия с заварным кремом, который содержит много влаги, крахмала и в относительно небольших концентрациях сахар. Мясо и мясопродукты являются хорошей средой для развития стафилококков и накопления энтеротоксина. Заражение мяса стафилококками может произойти при жизни животных в результате перенесенных ими воспалительных заболеваний. Однако чаще пищевые токсикозы возникают при употреблении мясных продуктов, обсемененных энтеротоксическими вариантами стафилококков.
Стафилококковые пищевые отравления могут возникать при употреблении рыбных продуктов. Вкус и запах консервов, осемененных стафилококком, не изменяются, бомбаж не наблюдается. Возможно интенсивное продуцирование энтеротоксина в продуктах растительного происхождения. Следует отметить, что пищевые продукты, прошедшие тепловую обработку и освобожденные от микробов-антагонистов, чаще являются причиной стафилококковых интоксикаций, чем сырые необработанные продукты.
Источниками заражения пищевых продуктов патогенными стафилококками являются человек и животные. Наиболее частый путь заражения продуктов - воздушно-капельный, поскольку больные стафилококковыми заболеваниями верхних дыхательных путей (ангины, риниты, фарингиты) активно выделяют их в окружающую среду при дыхании, кашле, чихании.
Одним из опасных источников обсеменения продуктов - больные со стафилококковыми поражениями кожи (нагноившиеся порезы, ожоги, ссадины, абсцессы и др.). В этом случае обсеменение продуктов происходит при непосредственном соприкосновении их с пораженными органами или через загрязненные стафилококками оборудование, инвентарь, посуду.
Большое эпидемиологическое значение в распространении стафилококковых пищевых заболеваний имеют люди - бактерионосители. В носоглотке почти каждого второго здорового человека обнаруживается патогенный стафилококк. Не менее важно эпидемиологическое значение кишечной формы носительства стафилококков.
Распространенным источником стафилококковой инфекции являются также животные, больные маститом, гнойными заболеваниями печени, мышц и др. Продукты животного происхождения могут заражаться стафилококками при жизни животных (молоко при мастите вымени) или при разделке туши.
Профилактика сводится к проведению мероприятий, исключающих возможность попадания возбудителей в пищевые продукты, и созданию условий, задерживающих развитие стафилококков и накопление энтеротоксина в продуктах.
К мероприятиям, предупреждающим обсеменение патогенными стафилококками пищевых продуктов, относятся своевременное выявление лиц с гнойными воспалительными процессами кожи, верхних дыхательных путей и отстранение их от работы с готовой пищей. С этой целью на пищевых предприятиях проводятся осмотры рук, кожных покровов. Лица, страдающие значительной близорукостью и поэтому низко наклоняющиеся над продуктами, не допускаются к изготовлению кремовых изделий, готовой пищи, колбасных изделий и др.
Особое место в профилактике токсикозов принадлежит мероприятиям по улучшению санитарного режима предприятий и соблюдению правил личной гигиены (особенно лицами, занятыми изготовлением готовых кулинарных и кремовых изделий), а также систематическому повышению гигиенических знаний по вопросам профилактики пищевых отравлений. Не менее важно в профилактике стафилококковых токсикозов обеспечение высокого санитарного уровня, благоустройства и механизации производственных процессов.
Чрезвычайно важно создать условия, препятствующие образованию энтеротоксина в пищевых продуктах: хранить продукты и готовые изделия на холоде и соблюдать сроки их реализации.

Отчетный период с 30.09.2022г. по 06.10.2022г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 8912 проб сыворотки крови животных, проведено 17654 исследования. Выявлено: 36 положительных проб по лептоспирозу (у крупного рогатого скота – 17 положительных проб, у мелкого рогатого скота – 1 положительная проба, у лошадей – 18 положительных проб), 378 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота.

Лейкоз - хронически протекающая инфекционная болезнь крупного рогатого скота.
Возбудителем лейкоза является онкогенный РНК-содержащий вирус, относящийся к семейству Retroviridae роду Deltaretrovirus.
Источником возбудителя являются больные восприимчивые животные (крупный рогатый скот) в том числе восприимчивые животные, не имеющие клинических признаков и выделяющие возбудитель во внешнюю среду.
Передача возбудителя осуществляется контактным, алиментарным, внутриутробным, ятрогенным и трансмиссивным путями. Факторами передачи возбудителя являются кровь, молоко, секреты и экскреты больных восприимчивых животных и инфицированных восприимчивых животных, а также другие объекты внешней среды, контаминированные возбудителем.
В развитии болезни различаются бессимптомная, гематологическая и клиническая стадии.
В бессимптомной и гематологической стадиях у восприимчивых животных характерные клинические признаки болезни отсутствуют. Бессимптомная стадия болезни характеризуется наличием в сыворотке крови восприимчивых животных антител к возбудителю лейкоза. Гематологическая стадия характеризуется хроническим сохранением увеличенного числа лимфоцитов в периферической крови восприимчивых животных.
Характерными клиническими признаками болезни в период клинической стадии у восприимчивых животных являются:
- увеличение предлопаточных, околоушных, надколенных, нижнечелюстных, надвыменных и доступных ректальному исследованию внутренних лимфатических узлов;
- появление опухолевых новообразований в различных частях тела;
- нарушение половых циклов, гипотония преджелудков, отеки в области шеи, подгрудка, подчелюстного пространства, живота, одно- или двусторонний экзофтальм (пучеглазие), исхудание, снижение молокоотдачи,
- выпадение шерстного покрова на голове и холке.

Основу диагностики лейкоза крупного рогатого скота составляет серологический метод исследования – реакция иммунодиффузии в геле агара (РИД), согласно ГОСТ 25382-82 «Крупный рогатый скот. Методы лабораторной диагностики лейкозов» п. 2.3. Метод основан на обнаружении в сыворотке крови животных специфических преципитирующих антител к антигенам вируса лейкоза крупного рогатого скота. Специфические антитела появляются в крови через 2-8 недель после заражения животного вирусом лейкоза крупного рогатого скота и сохраняются в организме пожизненно.
В серологическом отделе проходил стажировку ветеринарный врач из РВЛ. Тема стажировки «Методы лабораторных исследований на бруцеллез. Серологическая диагностика». В обучение вошли постановка титрации, учет серологических реакций, согласно ГОСТ 34105-2017 «Животные. Лабораторная диагностика бруцеллеза. Серологические методы».

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 7 проб, проведено 26 исследований. 
За отчетный период выявлено 2 положительных результата.
В 1 пробе сена массовая доля сырого протеина в сухом веществе – 1 ниже нормы,                  
В 1 пробе комбикорма массовая доля сырого протеина в сухом веществе – 1 ниже нормы.

Определение массовой доли охратоксина А методом высокоэффективной жидкостной хроматографии

Охратоксин A — ядовитое вещество, вырабатываемое широко распространенными плесневыми грибами родов Penicillium и Aspergillus. Пенициллы выглядят как плоский яркоокрашенный налет, чаще всего голубого или зеленого цвета, аспергиллы похожи на скопление тонких нитей. Среди пенициллов продуцентом охратоксина A является главным образом P. verrucosum, а среди аспергиллов — A. ochraceus  A. arbonarius и даже A. niger – черная плесень, которая часто растет в сырых помещениях. Охратоксин A встречается в зерновых, бобовых, пиве, изюме, виноградном соке и вине, какао и кофе, специях, а также в субпродуктах и мясе, куда он может попасть в результате заплесневения кормов для сельскохозяйственных животных.
Основная угроза охратоксина A состоит в его негативном воздействии на почки (нефротоксичности). Весьма чувствительны к нему оказались собаки, у которых даже небольшие дозы охратоксина А вызывают смертельные поражения почек (LD50 охратоксина A для них составляет 0.2 мг/кг перорально). Крайне опасен этот яд и для домашней птицы (LD50 — 3.3 мг/кг), у которой он вызывает также нарушения свертываемости крови и синдром плохого усвоения корма («синдром бледной птицы»). Охратоксин А также снижает темпы роста и ухудшает продуктивность свиней и лошадей, но малоопасен для жвачных благодаря расщеплению в рубце. Очень чувствительны к охратоксину А рыбы.
Охратоксин A способен повреждать нервную систему, подавлять иммунитет, вызывать мутации ДНК и приводить к возникновению опухолей. Этот микотоксин негативно влияет на мужскую репродуктивную систему. Также известно, что охратоксин А может проникать через плаценту, что означает, что он может воздействовать на эмбрионы.
В отделе химических исследований массовую долю охратоксина А определяют методом ВЭЖХ по ГОСТ 32587-2013 Зерно и продукты его переработки, комбикорма. Определение охратоксина А методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (метод А). Метод основан на экстракции охратоксина A из анализируемой пробы продукта подкисленным хлороформом, скрининге проб, которые могут содержать охратоксин A, очистке их экстрактов методом колоночной хроматографии на силикагеле и определении массовой доли охратоксина A с применением ВЭЖХ с флуориметрическим детектированием.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 483 пробы материала, проведено 511 исследований, получено 5 положительных результатов.

Протейная инфекция — энтеробактериальная болезнь молодняка животных, в том числе птиц, характеризующаяся нарушением пищеварения. Болезнь также опасна для человека.
Возбудитель. Болезнь вызывают кишечные бактерии из семейства Enterobacteriaceae. Род Proteus характеризуют полиморфность палочек грамнегативность, отсутствие образования спор и капсул, подвижность за счет перитрихиальных жгутиков.
Выделяют несколько видов протея: Proteus mirabilis, Proteus vulgaris, Proteus myxofaciens, Proteus hauseri, Proteus penneri.
В этиопатогенезе кишечных расстройств у молодняка участвуют в основном P. vulgaris и P. mirabilis. Эти виды протея — наиболее часто выделяемые и патогенные для животных и человека. Из лабораторных животных к парентеральному введению протея чувствительны белые мыши, кролики, морские свинки. Являясь слабовирулентными, протейные палочки становятся причиной болезни ослабленного молодняка, наиболее подверженного стрессам, находящегося в иммунодепрессивном состоянии. 

Кроме того, протейные инфекции часто развиваются вторично при дисбактериозах неспецифического характера (диспепсия, гастроэнтериты) и при вирусной инфекции. Пассажируясь через ослабленных животных, возбудитель накапливает вирулентность и выделяется в больших количествах с фекальными массами больных животных. Это служит причиной заражения молодняка остального поголовья, что приводит, несомненно, к нежелательным финансовым растратам. Палочки протея выделяют из ран, среднего уха при отитах, смывов с глазного яблока при кератоконъюнктивальных поражениях, дерматитных и язвенных поражений межпальцевых пространств, ногтевого ложа, носового хода животных практически всех видов, в том числе птиц, а также человека.
Восприимчивые животные. Преимущественно телята первых трех недель жизни, поросята до 2-месячного возраста. Протей может быть причиной пищевых токсикоинфекций человека.
Основой постановки диагноза являются бактериологические исследования с обязательной постановкой биопробы.
Дифференциальный диагноз. Протейную инфекцию дифференцируют от сходно протекающих заболеваний молодняка: эшерихиоза, сальмонеллеза, клебсиеллеза, псевдомоноза, стрептококкоза, диспепсии, рота-, корона-, парво-, аденовирусных инфекций, вирусной диареи, дизентерии свиней. Дифференциальная лабораторная диагностика протейной инфекции не вызывает затруднений — протей легко отличим по культуральным свойствам.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проводились исследования на показатели (КМАФАнМ, БГКП, L.monocytogenes), проводились исследования по выявлению антител к вирусу классической чумы свиней, к вирусу трансмиссивного гастроэнтерита свиней, выявление ДНК вируса африканской чумы свиней.

Микробиология мяса. В крови, мышцах здоровых животных, как правило, микроорганизмы отсутствуют. Значительное их же содержание в мясе и мясных продуктах объясняется загрязнением их при обработке. В процессе первичной переработки скота микробы с шерстного покрова, со шкуры, из кишечника, с орудий убоя и обработки, с оборудования попадают на поверхность туши. Через лимфатические и кровеносные сосуды при обескровливании туш на подвесных путях микробы могут проникать с воздухом.
После первичной обработки туши могут содержать от десятков до, сотен тысяч микробов на 1 см2 поверхности.
В процессе перевозки и торгового разруба туши обсемененность еще более увеличивается. При накоплении большого количества микроорганизмов на поверхности мяса они вдоль кровеносных и лимфатических сосудов, костей, сухожилий распространяются во внутренние слои. Скорость проникновения тем меньше, чем ниже температура хранения, чем выше упитанность, туш или чем большая поверхность покрыта жиром. Например, при 0°С развитие и их проникновение внутрь происходят медленнее, чем при 5°С; мясо от упитанных животных того же вида портится позже, чем мясо от тощих, говядина портится медленнее свинины.
Особенно важна, корочка подсыхания, образующаяся на поверхности мяса при хранении. Не будучи нарушенной, она задерживает проникновение микроорганизмов внутрь.
Даже у мяса, издающего запах порчи, бактерии обнаруживаются лишь до глубины 1 см. Если же во внутренних слоях оказывается большое количество, то мясо следует считать несвежим (применяется метод микроскопирования). Чаще всего порча мяса как продукта белкового состава протекает в форме аэробного или анаэробного гниения.
В порче мяса могут принимать участие кишечная палочка, пигментная бактерия bacterium prodigiosum, которая приводит к образованию необычайно ярких красных пятен на мясе и других продуктах.
Различные микроорганизмы образуют на мясе желтые пятна, синюю окраску (синегнойная палочка) или зеленоватую (В. fluorescens).
Также микроорганизмы могут вызывать ослизнение поверхности мяса. Этот порок возникает на остывшем и охлажденном мясе, а также при хранении в условиях высокой влажности окружающего воздуха. Ослизнение становится заметным при содержании 5-10 млн. клеток на 1 см2 поверхности. Ослизнение не затрагивает глубокие слои мяса и мало влияет на его пищевую ценность, однако существенно ухудшает товарный вид. Мясо становится липким, меняется его цвет. Такое мясо реализации не подлежит.
Помимо бактерий, на мясе могут развиваться всевозможные плесневые грибы. Являясь аэробами, они поражают только поверхностные слои. Потребляя кислые соединения, они повышают рН мяса, что благоприятствует развитию гнилостных бактерий.
Плесневые грибы очень устойчивы к низким температурам и могут развиваться на мясе даже при -8°С. Это обстоятельство является одной из причин, требующих хранения мороженого мяса при более низких температурах.

Отчетный период с 16.09.2022г. по 22.09.2022г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 8309 проб сыворотки крови животных, проведено 14739 исследований. Выявлено: 29 положительных проб по лептоспирозу (у крупного рогатого скота – 23 положительные пробы, у лошадей – 6 положительных проб), 593 положительные пробы по лейкозу крупного рогатого скота.

Лептоспироз – зоонозная природноочаговая инфекционная болезнь диких, домашних животных и человека, широко распространенная в различных ландшафтно - географических зонах мира.
Источники возбудителей лептоспирозной инфекции подразделяются на две группы. К первой относятся грызуны и насекомоядные, являющиеся основными хозяевами (резервуаром) возбудителей в природе; ко второй – домашние животные (свиньи, крупный рогатый скот, овцы, козы, лошади, собаки), а также пушные звери клеточного содержания (лисицы, песцы, нутрии), формирующие антропургические (сельскохозяйственные) очаги.
Возбудители лептоспироза – микроорганизмы рода Leptospira.
Патогенные лептоспиры представлены 202 сероварами, которые по степени антигенного родства объединены в 23 серологические группы.
На территории Российской Федерации возбудителями лептоспироза сельскохозяйственных животных и собак являются лептоспиры серогрупп Pomona, Tarassovi, Grippotyphosa, Sejroe, Hebdomadis, Icterohaemorrhagiae, Canicola; в природных очагах установлена циркуляция лептоспир серогрупп Grippotyphosa, Pomona, Sejroe, Javanica, Icterohaemorrhagiae, Bataviae, Australis, Autumnalis. В этиологической структуре лептоспирозных заболеваний человека преобладают лептоспиры серогрупп Grippotyphosa, Pomona, Icterohaemorrhagiae, Canicola, Sejroe.
Основной путь передачи инфекции – водный, меньшее значение имеют контактный и пищевой (кормовой).
В организм человека и животных лептоспиры проникают через незначительные повреждения кожи и неповрежденные слизистые оболочки полости рта, носа, глаз, желудочно - кишечного и мочеполового трактов.
Основанием для подозрения на неблагополучие хозяйства по лептоспирозу служат клинические признаки болезни и патологоанатомические изменения, характерные для этой инфекции, обнаружение специфических антител в крови животных. Диагноз лептоспироза во всех случаях должен быть подтвержден лабораторными исследованиями.
В серологическом отделе проходил стажировку ветеринарный врач из РВЛ. Тема стажировки «Методы лабораторных исследований на бруцеллез. Серологическая диагностика». В обучение вошли постановка титрации, учет серологических реакций, согласно ГОСТ 34105-2017 «Животные. Лабораторная диагностика бруцеллеза. Серологические методы».

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 30 проб, проведено 50 исследований.
За отчетный период выявлено 4 положительных результата.
В 3 пробах сена массовая доля сырого протеина в сухом веществе - 2 ниже нормы,
массовая доля сырой клетчатки в сухом веществе – 1 выше нормы,
массовая доля каротина в сухом веществе – 1 ниже нормы.

                        Определение антибиотиков тетрациклиновой группы в мясной продукции

В настоящее время большую актуальность приобретает вопрос о безопасности животноводческой продукции. Исследования показывают, что пищевые продукты в зависимости от качества сырья и технологии его переработки могут содержать различные ксенобиотики, в том числе антибиотики.
В большинстве случаев связывают попадание антибиотиков в пищевые продукты с широким применением лечебных, лечебно-профилактических и ростостимулирующих средств для сельскохозяйственных животных и птиц, а также с несанкционированным использованием антибиотиков для удлинения сроков хранения продуктов питания. Антибиотики встречаются чаще всего: мясо, молоко, рыба, яйца.
Антибиотики есть в мясе, т.к. и животных, и птиц лечат, как и людей, тоже антибиотиками. Более того, животным делают инъекции в период бурного роста и затем дают лекарственные препараты с кормами и витаминные комплексами в качестве профилактики от болезней. Для того чтобы вывести антибиотики из мяса, существует простой способ: до убоя животное надо выдержать 7−10 дней без препаратов. Важно знать, что если этот препарат остался в организме животного, то больше всего его в печени и почках.
В результате термической обработки в мышечной ткани животных и птицы значительно снижается содержание антибиотиков. В основном из мышечных волокон лекарственный препарат вместе с мышечным соком переходит в бульон, часть препарата разрушается под действием высоких температур. Бульон после варки должен быть уничтожен, так как содержит около 70% антибиотика.

В отделе химических исследований антибиотики тетрациклиновой группы определяют методом иммуноферментного анализа. Используемый метод основан на конкурентном колориметрическом иммуноферментном анализе. В ходе анализа в лунки планшета, покрытого тетрациклином, вместе с пробой добавляют первичные антитела, специфичные к тетрациклину. Присутствующие в пробе антибиотики группы тетрациклинов конкурируют с тетрациклином, нанесенным на стенки лунок, за связывание с внесенными антителами. После внесения вторичных антител, конъюгированных с ферментом пероксидазой, последние связываются с первичными антителами, связанными с тетрациклином на стенках лунки. После добавления субстрата, а затем стоп-реагента, измеряется оптическая плотность раствора при 450 нм. Измеренная оптическая плотность находится в обратной зависимости от концентрации тетрациклина в градуировочном растворе и антибиотиков группы тетрациклинов в растворе пробы. Массовая концентрация антибиотиков группы тетрациклинов в образце определяется по градуировочной зависимости, построенной с использованием 6 градуировочных растворов.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 2613 проб материала, проведено 2651 исследование, выявлено 22 положительных результата.

Сибирская язва является острым, особо опасным инфекционным заболеванием, возникающим у человека и животных при заражении Bacillus anthracis. Источником инфекции являются дикие животные и скот, заражение происходит контактным путем. Инкубационный период сибирской язвы в среднем составляет 3-5 дней, но может затягиваться и до недели – двух, а также протекать в течение нескольких часов.
Заболевание вызывается грамположительной неподвижной палочкой. Она хорошо размножается при доступе воздуха при температуре 15–42 °C. В разлагающемся трупе бактерия сибирской язвы сохраняет жизнеспособность неделю. При нагревании до 60 °C микроб погибает за четверть часа, при солнечной радиации — за несколько минут, кипячение уничтожает его мгновенно. Сибиреязвенные бациллы устойчивы к заморозке и сохраняются при -15 °C две недели. 
В неблагоприятных условиях бактерия образует споры, устойчивые к влиянию наружной среды.
Возбудитель сибирской язвы выживает в почве десятилетия, в жидкой воде — годы. Уничтожить микроб в таком состоянии способно длительное воздействие высокой температуры и концентрированной едкой щелочи.
Заражение животных происходит при употреблении пищи или воды, содержащих споры сибирской язвы, либо при укусах насекомых, переносящих возбудителя от больных животных, зараженных трупов, загрязненных спорами объектов. Особую опасность представляют сохраняющиеся в почве споры, формирующие эпидемический очаг, который может быть затронут при проведении строительных, гидромелиоративных, геофизических и других работ, в результате чего споры сибирской язвы выходят на поверхность и могут заражать животных и человека.
Сибирская язва протекает в двух клинических формах: кожной и генерализованной.
Кожная форма, встречающаяся в подавляющем большинстве случаев (95% и более) подразделяется на карбункулезную, буллезную и эдематозную разновидности, в зависимости от характера кожных проявлений.
Генерализованная форма также бывает трех видов: легочная, кишечная и септическая.
Сибирская язва может осложняться менингитами, менингоэнцефалитами, отеком и набуханием головного мозга, отеком легких, асфиксией, перитонитом, желудочно-кишечными кровотечениями и парезом кишечника. Генерализованные формы легко перерастают в сепсис и инфекционно-токсический шок.
Если подозревается сибирская язва, нельзя вскрывать тела павших животных. Ограничиваются осмотром трупов. Они вздуты, ускоренно разлагаются, не окоченевают, из естественных проходов истекает не свернувшаяся темноокрашенная кровь. На слизистых мембранах находят микрогеморрагии. При молниеносной разновидности сибирской язвы обнаружить даже эти признаки не удается.
Наименее затратными способами предотвращения сибирской язвы считают: ведение ограничительных мероприятий в местностях, где регистрировали вспышки заболевания.

За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики проведено 457 исследований.

Корма-про­дук­ты рас­ти­тель­но­го и жи­вот­но­го про­ис­хо­ж­де­ния, ис­поль­зуе­мые для корм­ле­ния сель­ско­хо­зяй­ст­вен­ных и других животных.
Среди факторов внешней среды, определяющих нормальное развитие и жизнедеятельность организма животных, кормлению принадлежит одно из первых мест. Правильное и рациональное, биологически полноценное кормление обеспечивает здоровье животных, высокую их продуктивность и воспроизводительную способность, а также успешный рост и развитие молодняка. Полноценному кормлению принадлежит исключительная роль в предупреждении различных заболеваний животных, а также в успешном лечении больных животных. Большое значение имеет доброкачественность кормов для получения полноценных продуктов питания.
Профилактика заболеваний, вызванных попаданием в организм с кормами возбудителей болезней. Через корма могут передаваться возбудители очень многих болезней (сибирская язва, африканская чума и тд.) Кроме того, кормовые растения при неправильной уборке и хранении их в антисанитарных условиях могут быть источниками распространения гельминтозных заболеваний. Различные микроорганизмы могут не только сохраняться в кормах, но и размножаться и даже вырабатывать в них ядовитые вещества (токсины). Ветеринарно-санитарное состояние кормов животного происхождения напрямую зависит от качества сырья, которое использовали при его производстве, соблюдении правил технологического процесса, условий хранения, транспортировки. Сырьё преимущественно из разнообразных отходов животного происхождения (головы, копыта, рога, клювы, пищеводы, кишки, легкие, почки, селезенка, кровь, подкожный жир, сухожилия), а также частей туш, не пошедших в пищевое производство для людей, по тем или иным причинам.
Корма могут стать недоброкачественными вследствие вредного влияния на них окружающих условий во время уборки и хранения, а также при попадании в них различных механических примесей, ядовитых веществ, возбудителей заболеваний. Такие корма могут оказывать на животных механическое, физическое, химическое и биологическое влияние и, следовательно, обусловливать заболевания или отравления. Согласно ветеринарно-санитарным нормам и требованиям, предъявляемым к качеству кормов, основным требованием является их безопасность (отсутствие острых токсических свойств и возможных негативных последствий после их применения). Термическая обработка и химические консерванты остаются основными инструментами борьбы с этими угрозами.
К показателям безопасности кормов относятся микробиологические показатели (общая бактериальная обсемененность и наличие патогенной микрофлоры: сальмонеллы, кишечная палочка, токсинообразующие анаэробы) способные вызвать негативные последствия после их воздействия на организм животных.
Оценку микробиологической безопасности кормов проводят согласно Правилам бактериологического исследования кормов (Утверждены Главным управлением ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР 10 июня 1975 г.)

Отчетный период с 23.09.2022г. по 29.09.2022г.

За отчетный период в серологический отдел поступили 14733 пробы сыворотки крови животных, проведено 28950 исследований. Выявлено: 147 положительных проб по лептоспирозу (у крупного рогатого скота – 110 положительных проб, у лошадей – 37 положительных проб), 664 положительные пробы по лейкозу крупного рогатого скота.
Также было проведено исследование 4 проб мочи лошадей на лептоспироз. Возбудителей заболевания не обнаружено.

В серологическом отделе исследуют на лептоспироз сыворотку крови и мочу животных, согласно ГОСТ 25386-91 «Животные сельскохозяйственные, методы лабораторной диагностики лептоспироза».
Сыворотку крови исследуют в реакции микроагглютинации (РМА). Данная реакция основана на обнаружении специфических антител. Если в исследуемой сыворотке крови присутствуют специфические антитела, то это свидетельствует об инфицировании данной особи лептоспирами и возможном лептоспироносительстве.
Мочу животных исследуют методом микроскопии в виде раздавленной капли. Если в моче будут найдены лептоспиры, то такое животное будет считаться больным лептоспирозом. Как правило, мочу привозят на исследование при получении положительного результата на лептоспироз сыворотки крови для уточнения диагноза.
 Важно происследовать мочу в короткие сроки, так как из-за кислой среды мочи лептоспиры быстро утрачивают подвижность и погибают.
   Метод микроскопии мочи в виде раздавленной капли

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 57 проб, проведено 116 исследований.
За отчетный период выявлено 6 положительных результатов.
В 3 пробах сена массовая доля сырого протеина в сухом веществе – 3 ниже нормы,                  
В 2 пробах сена массовая доля каротина в сухом веществе – 2 ниже нормы.
В 1 пробе комбикорма установлена общая токсичность.  
                                                                        Определение каротина в кормах

В листьях всех растений и растительных кормах содержится желтоокрашенный пигмент – каротин или провитамин А, который представляет собой непрочное соединение, разлагающееся под действием света, кислорода воздуха, высокой температуры и окислительных ферментов клеток растений.
Содержание каротина в кормах – важный показатель витаминной питательности кормов и рационов. Каротин, поступая с кормом в желудочно-кишечный тракт, всасывается в кровь, и в печени под влиянием фермента каротиназы из него синтезируется витамин А. Синтез витамина А из каротина происходит также в стенках тонкого отдела кишечника.
Полноценность А-витаминного питания животных зависит от поступления каротина и витамина с кормами, а также от эффективности их усвоения, наличия и величины тканевых запасов. Снижение усвояемости и резервирования витамина А в организме наблюдается при избытке и недостатке в рационе протеина, жира, минеральных веществ, витамина Е, Д, В4, В12, повышенном содержании в них нитратов. Усвоение животными каротина существенно увеличивается в результате применения сбалансированных рационов. Значительную роль играет также наличие в них незаменимых аминокислот.
Недостаток в рационе каротина ведет к задержке роста и развития молодняка животных, снижению продуктивности животных, а также к падению устойчивости против инфекционных заболеваний.
Исключительно важное значение в обеспечении животных каротином имеют пастбищное содержание или зеленые корма. Богатым источником каротина в зимний стойловый период является своевременно убранное и быстро высушенное, сохранившее зеленую окраску сено, сенаж, травяная мука, хороший силос, красные и желтые сорта моркови, тыква, желтая кукуруза (зерно), зелень, выращенная гидропонным методом, хвоя ели, сосны, кедра и др. Если количество каротина в кормах не удовлетворяет потребность животных в нем, то беременным животным, молодняку и птице целесообразно давать витаминизированный рыбий жир или масляные концентраты витамина А, эмульгированные или сухие стабилизированные.
В отделе химических исследований массовую долю каротина в кормах определяют фотометрическим методом по ГОСТ 13496.17-2019 Корма. Методы определения каротина (п.8). Сущность метода заключается в экстракции каротина петролейным эфиром и фотометрическом измерении интенсивности окраски экстракта, которая зависит от содержания каротина.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 2098 проб материала, проведено 2123 исследования, выявлено 15 положительных результатов.
Бруцеллез — это хроническая бактериальная инфекция, поражающая жвачных, свиней и людей. Домашние питомцы, а также другие животные могут быть переносчиками бруцелл.
Для жизни взрослых млекопитающих болезнь не смертельна, но наносит большой экономический урон из-за снижения продуктивности, а также абортов.
Источником инфекции являются больные млекопитающие. Наибольшую концентрацию бруцелл обнаруживают в мембранах абортированного плода. Бактерии выделяются со всеми жидкостями организма. Млекопитающие заражаются бруцеллезом оральным и половым путем, через поврежденную кожу, слизистые оболочки, вдыхаемый воздух. К заболеванию расположены животные домохозяев при пастьбе в общественном стаде. Инфицирование происходит чаще всего летом, инкубационный период от 2 недель до 2 месяцев. Бруцеллез может развиваться долгие годы.
Болезнетворная бактерия прекрасно сохраняется в мясе, сыре и молоке, что делает ее чрезвычайно опасной для человека. Микроб разрушается под воздействием высокой температуры и дезинфицирующих средств.
Главными признаками бруцеллеза у самок являются аборты. У коров и мелких жвачных они возникают, преимущественно, в конце стельности. Если роды произошли, отмечают задержки выхода плаценты, эндометриты, появление нежизнеспособных детенышей. Аборты у свиней при бруцеллезе могут оставаться незамеченными. Животноводов приводит в недоумение внезапная течка, наблюдающаяся посреди супоросности. На самом деле у свинки случился выкидыш, она быстро оправилась и спустя 7–10 суток пришла в охоту. Однако часто возникают осложнения. Происходит запоздалое отделение плаценты. Развивается эндометрит, возникает мастит. Под кожей и на мускулах формируются абсцессы. У самцов развивается инфламмация тестикулов, впоследствии они атрофируются. У коней воспаляются синовиальные полости на холке. Для постановки диагноза применяют лабораторные тесты: бактериологические, серологические, аллергические. Диагноз считают установленным в следующих случаях:
Из патматериала выделена культура микроорганизмов, положительный результат биопробы, положительная реакция при серологических тестах, одновременный положительный результат аллергической пробы и РСК.
При диагностике исключают заболевания со сходной клиникой:
Лептоспироз; Паратиф; Хламидиоз; Трихомоноз; Аборты незаразной этиологии.
В обязательном порядке коров, верблюдов, оленей, быков, телок старше 12 месяцев, овец, коз, свиноматок, хряков ежегодное обследуют на бруцеллез. Коней проверяют в неблагополучных пунктах. В пушном звероводстве при массовых абортах проводят бактериологический анализ на бруцеллез. 
При установлении окончательного диагноза накладывают карантин. Помещения и окружающие территории дезинфицируют, обеззараживают навоз, проводят убой клинически больных животных. Животных старше года прививают.

За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики проведено 2483 исследования. В ходе исследований было выявлено 4 положительных случая.   

Микроорганизмы порчи – плесневые грибы и дрожжи.
Плесневые грибы. Они являются постоянными обитателями внешней среды, образуют ползучие, стелющиеся, бархатистые, пушистые, войлокообразные колонии, которые сливаются в сплошной налет. Благоприятные условия для развития плесневых грибов – свободный доступ кислорода и кислая реакция среды. Они могут развиваться при влажности окружающей среды 10-15%, рН 1,5-11, температуре до –110оС, высоком осмотическом давлении, а отдельные виды плесневых грибов – при ограниченном доступе кислорода. Плесневые грибы обладают ферментативной активностью, вызывают глубокий распад белков и белковых веществ. Разлагают жиры до жирных кислот и альдегидов. При их развитии на мясе происходит его ослизнение и плесневение, сопровождающиеся химическими превращениями, которые обусловливают изменение его запаха и вкуса. Снижается товарный вид мяса.
Дрожжи. Дрожжи распространены во внешней среде, откуда попадают на продукты. Лучше развиваются в кислой среде, оптимальная температура роста 20-300оС, но многие из них могут развиваться и при –100оС. Различные виды дрожжей сбраживают большинство углеводов (глюкозу, лактозу, сахарозу, мальтозу, декстрозу). Микроорганизмы не сбраживающие углеводов, получили название пленчатых дрожжей. Эти дрожжи широко распространены в природе. Попадая на продукты, вызывают их порчу. Так, развиваясь на мясе, дрожжевые клетки используют молочную кислоту, изменяют рН мяса, а также портят его товарный вид. При расщеплении жиров образуются свободные жирные кислоты, что ведет к прогорканию продукта. Гнилостной порчи эти микроорганизмы не вызывают, но в результате сокращаются сроки хранения мяса в охлажденном и замороженном состоянии.
Характерной особенностью некоторых дрожжей является их способность развиваться в средах с 24% NаCL и возможность использовать для жизнедеятельности белковые вещества мясных сред. Единичные клетки дрожжей могут остаться в консервируемом продукте при нарушении процесса тепловой обработки и обнаруживаться в готовых консервах.

Отчетный период с 09.09.2022г. по 15.09.2022г.

За отчетный период в серологический отдел поступили 4182 пробы сыворотки крови животных, проведено 8830 исследований. Выявлено: 1 положительная проба по бруцеллезу у крупного рогатого скота, 27 положительных проб по лептоспирозу (у крупного рогатого скота – 12 положительных проб, у свиней – 2 положительные пробы, у лошадей – 13 положительных проб), 207 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота.

Бруцеллез – зоонозная, хронически протекающая инфекционная болезнь животных, характеризующаяся абортами (у свиноматок – с мумификацией плодов), рождением мертвого или нежизнеспособного приплода, орхитами, эпидидимитами, артритами и бурситами. Клинические признаки болезни проявляются при достижении животными половой зрелости. Возможно бессимптомное течение болезни.
Возбудителем бруцеллеза являются бактерии рода Brucella, наиболее распространенные виды – Brucella abortus, Brucella melitensis, Brucella suis, Brucella ovis, Brucella canis.
Возбудитель устойчив к воздействию факторов окружающей среды, сохраняется в молоке до 10 календарных дней, сливочном масле – до 35 календарных дней, во внутренних органах, костях, мышцах и лимфатических узлах инфицированных туш – до 60 календарных дней, в шерсти, смушках – до 120 календарных дней.
Инкубационный период при бруцеллезе составляет от 2 до 4 недель.
Источниками возбудителя являются больные животные, их секреты и экскреты.
Возбудитель передается алиментарным путем, при контакте с больными животными, с абортированными плодами, плодными оболочками и околоплодной жидкостью, через поврежденную кожу, слизистые оболочки дыхательных путей и желудочно-кишечного тракта, конъюнктиву, через слизистые оболочки половых органов, при контакте с продукцией животного происхождения, полученной от больных животных.
Факторами передачи возбудителя являются контаминированные возбудителем продукция животного происхождения, корма, вода, иные объекты внешней среды, а также персонал, контактировавший с больными животными.
В серологическом отделе ставятся следующие реакции для диагностики бруцеллеза животных: реакция агглютинации (РА) в пробирках, реакция связывания комплемента (РСК), реакция иммунодиффузии (РИД) с О -полисахаридным антигеном (О-ПС), согласно ГОСТ 34105-2017 «Животные. Лабораторная диагностика бруцеллеза. Серологические методы», пункты 7.4, 7.5, 7.6 соответственно. Также в серологическом отделе проводится исследование на бруцеллез молока в кольцевой реакции (КР с молоком), согласно ГОСТ 34105-2017 «Животные. Лабораторная диагностика бруцеллеза. Серологические методы», пункт 7.3.

За отчетный период в отдел химических исследований поступила 41 проба, проведено 64 исследования.
За отчетный период выявлено 2 положительных результата.
В 1 пробе сена массовая доля сырого протеина в сухом веществе - ниже нормы,
массовая доля сырой клетчатки в сухом веществе - выше нормы.
                                                                                              Определение массовой доли протеина в кормах

Значение протеина в кормлении животных чрезвычайно высоко. Все жизненные процессы в организме животного связаны с белковым обменом. Животным необходимо систематическое поступление протеина с кормом, так как протеин тела непрерывно расходуется и в случае длительного полного исключения его из рациона животное погибает.
Белки корма необходимы для построения белка тела молодых животных, для восстановления изношенных тканей взрослых, для образования белка молока у лактирующих животных, белка яиц у птиц-несушек, белка шерсти у овец и т. д.
Многие, если не все, белки действуют как ферменты или являются необходимой составной частью ферментов, гормонов, иммунных тел и других жизненно важных веществ, с помощью которых осуществляется и регулируется обмен веществ или создается защита организма. Белки в качестве электролитов участвуют в поддержании водно-солевого равновесия в организме. В некоторых случаях, а именно при недостатке в кормовом рационе углеводов и жиров или при избытке в нем белка, протеин может использоваться животными как источник энергии.
Таким образом, животным для нормального роста, развития, репродукции, сохранения здоровья и получения максимальной продуктивности необходимо постоянно доставлять в корме определенное количество белка в сочетании с углеводами, жирами, минеральными веществами и витаминами.
Амиды имеют особое значение для крупного рогатого скота и овец. Наличие амидов в корме стимулирует развитие и деятельность микроорганизмов рубца жвачных животных. Благодаря хорошей растворимости амидов в воде, они являются весьма доступной пищей для микроорганизмов. Будучи ассимилированными в рубце, амиды используются для построения микробного белка, который в тонком отделе кишечника переваривается и используется животными. Поэтому в настоящее время оценку питательности кормов и нормирование питания животных производят не по белку, а по протеину.
В отделе химических исследований массовую долю протеина в кормах определяют титриметрическим методом по Кьельдалю. Сущность метода заключается в минерализации органического вещества пробы кипящей серной кислотой в присутствии катализатора с образованием сернокислого аммония, добавлении охлажденному минерализату избытка гидроокиси натрия для выделения аммония, отгонке и титровании выделенного аммиака, вычислении массовой доли азота в испытуемой пробе и пересчете на массовую долю сырого протеина.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 871 проба материала, проведено 901 исследование, выявлено 10 положительных результатов.

 Злокачественный отек - газовая инфекция, раневой газовый отек, газовая гангрена, газовая флегмона, анаэробная инфекция, — острое спорадическое токсико-инфекционное заболевание всех видов животных и человека характеризующееся быстро распространяющимся воспалительными газовыми отеками и некрозом пораженной ткани. Злокачественный отек вызывают спорообразующие микроорганизмы, проникающие в организм через раны, травмы, покусы и другие повреждения кожи, слизистых оболочек и более глубоких тканей.
Возбудителями злокачественного отека являются анаэробные микробы из рода Clostridium: Cl. Septicum, Cl. Perfringes, Cl. Oedematiens, Cl. Histolyticum, Cl. Sordellii как каждым из этих микробов или в ассоциации друг с другом или различными другими анаэробными микроорганизмами. Болезнь, вызванная ассоциацией микробов, протекает у животных более остро и в более тяжелой форме, отягощая течение патологического процесса.
К злокачественному отеку восприимчивы все виды животных: лошади, овцы, мулы, ослы, крупный рогатый скот, свиньи, а также и человек. Болезнь возникает в любое время года, но чаще в жаркий летний период. Основной резервуар возбудителей – почва, обсемененная споровыми культурами клостридий, выделяемыми больными животными. Споры во внешних условиях сохраняют жизнеспособность годами. Животные заражаются при проникновении спор возбудителя через поврежденные участки кожи и слизистых оболочек в более глубокие участки ткани. Чаще всего, это наблюдается при попадание обсемененных клостридиями кусочков земли, навоза, пыли, фекалий, грязной воды и других объектов.Инкубационный период от нескольких часов до 2-3 дней. Клинические признаки злокачественного отека разнообразны в зависимости от вида животного, возбудителя и места его локализации и может протекать в виде миозитов, висцеритов и септицемий. Первым симптомом злокачественного отека является появление очень болезненной и горячей припухлости, которая в дальнейшем становится холодной и малочувствительной. Болезнь длится до 2-3 суток. У больных злокачественным отеком животных наблюдаем общие явления: угнетение, отказ животных от корма, затрудненное дыхание, учащенный пульс, ослабление сердечной деятельности, цианоз видимых слизистых оболочек. Температура тела у больного животного повышена, но может оставаться нормальной (перед смертью температура обычно понижается).У животных часто встречается смешанная форма злокачественного отека, протекающая с явлениями отека и газовой инфильтрации. Обычно, при этой форме, выделяют разнообразную анаэробную микрофлору (Cl. perfringens,Cl. Odematiens и т. д.), а также аэробную. Присутствие среди возбудителей Cl. Histolyticum приводит к протеолизу мышечной ткани, а Cl. Sporogenes – приводит к гнилостному распаду тканей и резкому запаху.Профилактика и меры борьбы. Необходимо строго соблюдать асептику при различных манипуляциях, связанных с операциями или возможностью повреждения кожи (кастрация, обрезание хвостов, ушей, снятие рогов, стрижке и т.п.) и предохранять раны от загрязнения. Своевременно проводить обработку ран с иссечением пораженных тканей. Помещения, в которых находились больные животные и предметы ухода, бывшие в соприкосновении с больными или павшими животными, дезинфицируют. Уборку трупов и дезинфекцию мест, где они находились, проводят в соответствии с требованиями и правилами о ветеринарно-санитарном надзоре за уборкой, утилизацией и уничтожением трупов.

За отчетный период в отдел ВСЭ и диагностики поступило 392 пробы, проведено 542 исследования. Положительных случаев не выявлено.

Лабораторный мониторинг гриппа птиц - комплекс лабораторно - диагностических исследований по выявлению циркулирующих штаммов вируса гриппа птиц.
Грипп птиц – высоко контагиозная вирусная инфекция, которая может поражать все виды птиц. Наиболее чувствительными из домашних видов являются индюки и куры. Дикие виды птиц могут служить переносчиками инфекции. В силу естественной резистентности они сами, как правило, при этом не заболевают и могут преодолевать в процессе миграции значительные расстояния. Естественным резервуаром для вирусов гриппа птиц (ВГП) являются водоплавающие птицы, которые чаще всего ответственны за интродукцию инфекции в домашние хозяйства.
Одним из методов лабораторно - диагностических исследований на грипп птиц является иммуноферментный анализ (непрямой метод ИФА для выявления антител к гриппу типа А) - исследуют сыворотки крови с целью выявления антител к вирусу гриппа птиц у птиц из птицеводческих предприятий, фермерских хозяйств, населенных пунктов и ввозимых из-за рубежа.
Методом ИФА также производят исследования вакцинированной птицы в населенных пунктах на грипп птиц. Напряженным считается иммунитет, если у вакцинированной птицы получены положительные титры антител в 80% исследованных проб.
При подозрении на грипп птиц (наличие клинических, патологоанатомических признаков заболевания, внезапном падеже) в стадах домашней птицы рекомендуется проводить отбор проб для проведения ПЦР - диагностики. Для исследований отбираются клоакальные и/или трахеальные смывы, помет, патматериал (головной мозг, легкие, трахея, селезенка, участки кишечника).
Мониторинг дикой птицы необходимо проводить сезонно: весна, лето, осень (весенняя миграция, гнездование после вылупления птенцов, осенняя миграция).
Исследованиям подвергаются синантропные (воробьи, голуби, грачи, вороны), полусинантропные (чайки), а также дикие мигрирующие виды водоплавающих и околоводных птиц (утки, гуси, массовые виды куликов, колониально гнездящиеся цапли и др.).    
Домашняя птица обследуется: в благополучных регионах - 2 раза в год; в неблагополучных регионах и в угрожаемой зоне - один раз в месяц (каждый птичник, каждый населенный пункт): ввозимая из-за рубежа птица, эмбрионы, инкубационное яйцо - при ввозе, в период карантинирования.
Помет от дикой птицы, а также клоакальные, трахеальные смывы и патматериал исследуются методом ПЦР.
Дикая птица обследуется: в благополучных регионах - 3 раза в год (весна, лето, осень); в неблагополучных районах - 1 раз в квартал.
Помет от дикой птицы, а также клоакальные, трахеальные смывы и патматериал исследуются методом ПЦР.

Подкатегории