Отчетный период с 29.05.2025г. по 05.06.2025г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 4102 пробы сыворотки крови животных, проведено 8526 исследований. Выявлено: 22 положительных пробы по лептоспирозу у лошадей, 229 положительные пробы по лейкозу крупного рогатого скота, 33 положительные пробы у крупного рогатого скота по бруцеллезу.
Инфекционная анемия лошадей (ИНАН) - вирусная болезнь однокопытных животных, характеризующаяся острым, подострым и хроническим течением.
При остром и подостром течении отмечаются рецидивирующая лихорадка, поражение сердечно-сосудистой системы с явлениями геморрагического диатеза, анемия, изменения в кроветворных органах.
Хроническое течение болезни характеризуется эритропенией, лимфоцитозом, ускоренной РОЭ, изменениями в печени, сердце и других органах периодическими подъемами температуры тела.
Большей частью болезнь протекает хронически. Острая и подострая формы регистрируются спорадически. Животные, переболевшие любой формой инфекционной анемии, остаются пожизненными вирусоносителями.
Инкубационный период болезни составляет от 7 дней до 3 месяцев.
Возбудитель болезни – вирус семейства Retroviridae, подсемейства Orthoretrovirinae, рода Lentivirus.Возбудитель в основном передается кровососущими насекомыми (чаще слепнями).
Диагноз на инфекционную анемию лошадей устанавливают на основании клинических и патологоанатомических признаков, эпизоотологических данных и результатов лабораторных исследований.
В серологическом отделе для диагностики ИНАН ставят реакцию диффузной преципитации (РДП). Принцип данного метода основан на встречной диффузии антител (иммунной сыворотки) и растворимого антигена в агаровом геле. При наличии в исследуемой сыворотке антител, гомологичных антигену, образуется полоса преципитации. Специфические антитела появляются в крови животных через 2-6 недель после инфицирования.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 23 пробы, проведено 105 исследований.
За отчетный период выявлен 1 положительный результат: 
В 1 пробе мясокостной муки массовая доля сырого жира – выше нормы.

Состав и применение мясокостной муки. 

Мясокостная мука – это продукт, получаемый из отходов мясоперерабатывающей промышленности и туш павших животных (кроме павших от заразных болезней).
Производство мясокостной и костной муки включает несколько этапов: отваривание сырья, дробление, просеивание через сито и удаление металлических примесей с помощью магнитных сепараторов, обработка антиокислителями для предотвращения порчи жира. Готовый продукт представляет собой порошок коричневого цвета, с запахом без затхлости или гнилостности, однородного состава без комков и крупных (более 12 мм) гранул.
Состав мясокостной муки: белок – 30-50%, жиры – 13-20%, зола – 26-38%, вода – не более 7%, аденозинтрифосфорная и глутоминовая кислоты, карнитин, желчные кислоты, сератонин, тироксин и т. д. Мясокостная мука отличается от мясной большим содержанием кальция. Это связано с тем, что мясокостную муку изготавливают из сырья, в состав которого входит больше костей. Тем не менее, данный продукт является ценной высокобелковой кормовой добавкой. Кормовая мясокостная мука характеризуется высоким содержанием незаменимых аминокислот. Она является хорошим источником кальция, фосфора, натрия.
Применение мясокостной муки. Она используется как витаминно-минеральная добавка при кормлении крупного и мелкого рогатого скота, а также свиней и птицы. Это очень ценный продукт, содержащий много белка. Применение мясокостной муки обогащает рационы животных необходимыми биологически активными веществами, позволяет удешевить процесс выращивания сельскохозяйственных животных и повысить качество конечного продукта. При кормлении скота и птицы мясокостная мука добавляется в мешанки или концентрированные корма, при этом термическая обработка корма после добавления муки не допускается. Примерные оптимальные нормы включения мясокостной муки для кур – 7 % от общего количества зерновых, для свиней – 5-15 % от общей массы кормов, для крупного и мелкого рогатого скота – 10-100 г на голову в сутки. В небольших количествах – 5-10 % от общего количества кормов – этот продукт дают уткам, гусям, кроликам, цесаркам, индюшкам и т. д.
Хранение. Кормовая мука животного происхождения – мясная, костная, мясокостная – содержит большое количество белка и жира и поэтому требует правильного хранения. Основные правила – хранить в сухом проветриваемом помещении без попадания прямых солнечных лучей и не допускать повышения температуры воздуха выше +30 градусов. Испорченная или просроченная мука будет не только бесполезной, но может принести вред здоровью животных и птиц.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 486 проб материала, проведено 550 исследования. Выявлено 2 положительных случая.

Биологический метод исследования

Биологические методы исследований направлены на определение наличия токсинов возбудителя в исследуемом материале и на обнаружение возбудителя (особенно при незначительном исходном содержании в исследуемом образце). Методы включают заражение лабораторных животных исследуемым материалом с последующим выделением чистой культуры патогена либо установлением факта присутствия микробного токсина и его природы. Моделирование экспериментальных инфекций у чувствительных животных — важный инструмент изучения патогенеза заболевания и характера взаимодействий внутри системы микроорганизм-макроорганизм. Для проведения биологических проб используют только здоровых животных, определённых массы тела и возраста. Инфекционный материал вводят внутрь, в дыхательные пути, внутрибрюшинно, внутривенно, внутримышечно, внутрикожно и подкожно, в переднюю камеру глаза, через трепанационное отверстие черепа, субокципитально (в большую цистерну головного мозга). У животных прижизненно забирают кровь, экссудат из брюшины, после гибели — кровь, кусочки различных органов, СМЖ, экссудат из различных полостей.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 251 исследование.

Высокая бактериальная загрязненность приводит к ухудшению вкуса, снижению питательной ценности сырого молока и изготавливаемых из него продуктов, а также способствует значительному сокращению их срока хранения. Известно, что некоторые виды микроорганизмов, обнаруживаемых в молоке, способны выдерживать не только пастеризацию, но и замораживание.
Наиболее распространенными бактериями являются энтерококки, микрококки, лактобациллы и клостридии. Данные виды хорошо переносят процесс пастеризации.
Бактериальная обсемененность молока значительно повышается у коров при мастите. С молоком инфицированного животного может выделяться более 10⁷ бактерий на 1 мл.
Мастит – воспаление молочной железы, которое может быть вызвано бактериальной инфекцией или травмой. Воспаление вызывает миграцию лейкоцитов, выполняющих защитные функции, из периферийной системы кровообращения в вымя, что ведёт к росту числа соматических клеток в 1 мл молока от 100 тысяч до нескольких миллионов.
Содержание соматических клеток является одним из наиболее значимых показателей качества молока. Соматические клетки – это отмирающие клетки эпителия молочной железы, лейкоциты и эритроциты. Соматические клетки вырабатывают ферменты, устойчивые к пастеризации, и способны разрушать жиры и белки, которые входят в состав молока. В результате этих процессов молоко может приобретать неприятный привкус или запах, что негативно отражается на его потребительских свойствах и сроках хранения. Даже в холодильнике такое молоко очень скоро портится и становится непригодным к употреблению и переработке.
Чаще всего при заболевании коров маститом в молоке выделяют стафилококки и стрептококки. Чтобы уменьшить содержание бактерий в молочном сырье и изготавливаемой из него продукции, необходимо соблюдать высокие гигиенические стандарты на ферме, а также во время транспортировки и переработки сырья.

Отчетный период с 16.05.2025г. по 22.05.2025г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 3175 проб сыворотки крови животных, проведено 7321 исследование. Положительные пробы выявлены по лептоспирозу у крупного рогатого скота - 47, лошадей -2, свиней - 9, лейкоз -76.
Лептоспироз (Leptospirosis, инфекционная желтуха, собачья лихорадка, болезнь Васильева–Вейля) — инфекционная, природно-очаговая болезнь многих видов животных и птиц, проявляющаяся лихорадкой, гемоглобинурией (гематурией), желтушным окрашиванием и некрозами слизистых оболочек и кожи, атонией желудочно-кишечного тракта, абортами, рождением нежизнеспособного потомства, снижением продуктивности животных.
Возбудитель был выявлен А. Вейлем в 1886 году и Н. П. Васильевым в 1888 году. Возбудители лептоспироза — лептоспиры, принадлежащие к семейству спирохет, которые занимают промежуточное положение между бактериями и простейшими. Лептоспира состоит из тонкой осевой нити, которую окружает цитоплазматическая спираль. Длина лептоспир колеблется от 5 до 20, толщина — от 0,1 до 0,2 микрон. Концы лептоспир крючкообразно загнуты и имеют пуговчатое утолщение. У отдельных лептоспир наблюдаются и безкрючковые формы. Размножаются лептоспиры путем поперечного деления материнской клетки на две или три части.
Лептоспиры отличаются большим разнообразием серотипов, разделенных на 19 серогрупп. У сельскохозяйственных животных выделено 7 серогрупп.
Лептоспироз сезонная болезнь. В умеренном климате пик заболеваемости приходится на лето и первую половину осени.
На территории РФ возбудителями лептоспироза сельскохозяйственных животных и собак являются лептоспиры серогрупп: Pomona, Tarassovi, Grippotyphosa, Sejroe, Hebdomadis, Icterohaemorrhagiae, Canicola; в природных очагах установлена циркуляция лептоспир серогрупп: Grippotyphosa, Pomona, Sejroe, Javanica, Icterohaemorrhagiae, Bataviae, Australis, Autumnalis.
К лептоспирозу восприимчивы все сельскохозяйственные животные (крупный и мелкий рогатый скот, лошади, овцы, свиньи), домашние (собаки, кошки), дикие плотоядные (лисицы, волки, шакалы), пушные звери (норки, песцы), грызуны (нутрии, мыши, полевки, крысы), хищные, домашние и дикие птицы.
Основной источник инфекции — мыши, крысы, ежи, землеройки. Грызуны являются пожизненными носителями и основными резервуарами инфекции. Вторичными носителями лептоспир являются КРС, МРС, свиньи, собаки/лисицы.
Резервуаром и источником лептоспироза служат больные и переболевшие лептоспирозом животные, которые выделяют из организма лептоспир во внешнюю среду с молоком, мочой (в 1мл мочи больных свиней содержится от 500 000 до 750 000 лептоспир), фекалиями, а также с выделениями из легких и половых органов. Лептоспироносительство у разных видов животных разное: у крупного рогатого скота, овец и коз - до 6 месяцев, свиней-12 месяцев, лошадей -7 месяцев, собак - от нескольких месяцев до 3-4 лет, кошек - до 4 месяцев, лис - до 17месяцев. Лептоспироз еще называют «водной лихорадкой», потому что основной путь передачи инфекции происходит через воду. Второстепенные пути передачи это алиментарный и контактный.
Факторами передачи возбудителя инфекции при лептоспирозе являются водоемы, загрязненные мочой больных животных. При этом наибольшую опасность представляют застойные водоемы, заболоченные луга. Заражение здоровых животных происходит через корма, воду, подстилку, пастбища и почву, которые уже инфицированы выделениями больных и животных-лептоспироносителей, при поедании трупов грызунов (свиньи, собаки, кошки, лисицы), не обезвреженных продуктов убоя больных животных (песцы, лисицы). Лептоспиры обладают способностью проникать в организм животных через поврежденную кожу и слизистые оболочки. Молодняк может заразиться лептоспирозом через молоко, полученное от больных матерей.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 56 проб, проведено 260 исследований. 
За отчетный период выявлено 4 положительных результата
В одной пробе прудовой воды содержание аммиака, содержание нитрит-ионов, содержание хлорид-ионов, содержание сульфат-ионов выше нормы

Каротиноиды в яйце

Каротиноиды - природные органические пигменты жёлтого, оранжевого или красного цвета, которые придают желтый цвет желтку яиц и необходимы для нормальной жизнедеятельности животных; они являются предшественниками витамина А. Основное значение каротиноидов в птицеводстве заключается в повышении выводимости яиц, увеличении выживаемости молодняка в первые дни жизни, улучшении роста и развития птицы, повышении качества и скорости воспроизводства. Применяются каротиноиды для придания товарного вида готовой продукции и подкрашивания кожи тушек. 
Недостаток каротиноидов и витамина А наиболее часто регистрируется на птицефабриках среди молодняка и проявляется в следующих симптомах: состояние общего угнетения: вялость, снижение аппетита, общая слабость, задержка роста, снижение массы тела, истончение кожи, конъюнктивит, взъерошенность перьев, снижение или полное прекращение яйцекладки, поражение эпителия дыхательной и пищеварительной систем, анемия и сердечно-сосудистая недостаточность, бледный желток и низкая выводимость яиц. В случае систематического недостатка каротиноидов в корме развиваются множественные патологоанатомические изменения в организме птицы.
Источниками каротиноидов являются растительные компоненты, то есть естественные компоненты корма с высоким содержанием каротиноидов (кукуруза, кукурузный глютен, травяная мука); кормовые добавки - препараты, содержащие экстракты из растительного сырья; синтетические добавки (синтетические каротиноиды и препараты на их основе).
В отделе химических исследований каротиноиды в яйце исследуются фотометрическим методом по Методическому руководству для зоотехнических лабораторий. Оценка качества кормов, органов, тканей, яиц и мяса птицы, 2010 г. Сущность метода состоит в экстракции каротина диэтиловым эфиром и фотометрическом измерении интенсивности окраски экстракта, которая зависит от содержания каротина.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1173 пробы материала, проведено 1298 исследования. Выявлен 1 положительный случай.
Clonorchis sinensis – это трематода, переносимая рыбами. В ее жизненном цикле есть три хозяина: пресноводные моллюски (первые промежуточные хозяева), пресноводная рыба (вторые промежуточные хозяева) и, наконец, человек или плотоядные млекопитающие (окончательные хозяева).
Взрослые особи Clonorchis sinensis живут в желчных протоках. Человек выделяет яйца Clonorchis sinensis с фекалиями, а затем они попадают в организм моллюсков. Церкарии (свободно плавающие личинки) выходят из зараженных улиток и попадают в организм пресноводных рыб, внедряясь через чешую (в водоемах с церкариями С. sinensis отмечается массовое заражение рыб). Нетрудно догадаться, что при употреблении сырой, непровареной, сушеной, соленой или маринованной рыбы, содержащей инкапсулированные метацеркарии (церкарии в стадии покоя или созревания) заражается человек. Метацеркарии попадают в двенадцатиперстную кишку, проникают в общий желчный проток и далее мигрируют к малым внутрипеченочным протокам (или иногда к желчному пузырю и протокам поджелудочной железы), где в течение одного месяца они достигают взрослого состояния.
Взрослые особи могут жить в организме человека многие годы (описан случай, когда человек был заражен клонорхозом 20 лет) и вырастать до 10–25 мм в длину и 3–5 мм в толщину.
Основную роль в патогенезе заболевания играют токсическое и механическое воздействие гельминта, развитие аллергии и нервно-рефлекторных реакций. Иммунитет после перенесенного заболевания отсутствует. Легкие инфекции клонорхоза обычно протекают бессимптомно. Жалобы, как правило, возникают у пациентов, длительное время зараженных большим количеством паразитов. В острой фазе тяжелое течение заболевания проявляется лихорадкой, ознобом, болью в верхней части живота, увеличением печени, легкой желтухой, чуть позже может появиться диарея. Клинические проявления обычно продолжаются 2-4 недели, после чего исчезают самостоятельно, и пациент, находясь в ремиссии, долгое время ощущает себя здоровым. Затем наступает очередное обострение, часто свидетельствующее о воспалении желчных путей (при массивной инвазии клонорхоз может прогрессировать до атрофии паренхимы печени и портального фиброза). Желтуха может проявиться, если скопление гельминтов создает преграду оттоку желчи.
Клинические проявления запущенной хронической стадии клонорхоза:
боли в верхней части живота,
боли в правом подреберье,
непереносимость жирной пищи,
плохой аппетит,
тошнота,
диспепсия,
утомляемость.
Диагноз клонорхоза ставят при выявлении яиц в экскрементах или содержимом двенадцатиперстной кишки. Яйца, как правило, обнаруживаются в кале только через 3–4 недели после заражения. При обструкции желчевыводящих путей яйца в кале не обнаруживаются.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 539 исследований.
Вода – основной природный ресурс, без которого нельзя представить существование человека на планете. Здоровье людей в заметной мере зависит от ее качества, так как она используется во многих сферах жизни, в том числе для утоления жажды, приготовления пищи, а также выполнения гигиенических процедур. Чтобы избежать возникновения проблем, связанных с присутствием в воде вредоносных веществ и бактерий, важно знать ее химический и микробиологический состав.
Общее микробное число, имеющее аббревиатуру ОМЧ, представляет собой количественный показатель, который отражает общее количество микроорганизмов с анаэробными и аэробными свойствами в 1 мл изучаемого образца воды. Речь прежде всего о тех микроорганизмах, которые не видны невооруженным глазом при образовании колоний. Несмотря на то, что данное тестирование не так часто используется для индикации патогенных бактерий, оно представляет собой важный санитарный показатель, позволяющий определить степень обсемененности объекта, подвергающегося анализу. С его помощью можно вовремя отреагировать на резкое увеличение числа колоний, которое при превышении допустимого порога указывает на создание оптимальных условий для развития патогенных форм бактерий.
Общее микробное число, имеющее аббревиатуру ОМЧ, представляет собой количественный показатель, который отражает общее количество микроорганизмов с анаэробными и аэробными свойствами в 1 мл изучаемого образца воды. Речь прежде всего о тех микроорганизмах, которые не видны невооруженным глазом при образовании колоний. Несмотря на то, что данное тестирование не так часто используется для индикации патогенных бактерий, оно представляет собой важный санитарный показатель, позволяющий определить степень обсемененности объекта, подвергающегося анализу. С его помощью можно вовремя отреагировать на резкое увеличение числа колоний, которое при превышении допустимого порога указывает на создание оптимальных условий для развития патогенных форм бактерий.
Фактически, ОМЧ – это показатель качества воды, отражающий суммарное число микробов, свидетельствующих о степени загрязнения объекта. Чтобы оперативно протестировать санитарное состояние систем водоподготовки, осуществляется бактериологический анализ воды, при котором в первую очередь рассматриваются динамические значения. Также анализ часто применяется при необходимости оперативной проверки работы систем дезинфекции и водоподготовки. Для осуществления данной процедуры используется динамика значений в определенных точках отбора проб воды, а не их абсолютные показатели. Сравнение показателей ОМЧ, которые устанавливаются при температурах 22 и 37 градусов, позволяет определить состояние процессов самостоятельной очистки природных водоемов.

При выделении бактерий чаще всего используется метод мембранной фильтрации. Данный способ очень популярен в лабораториях и испытательных центрах за счет своей эффективности и высокой точности получаемых данных. Также он отличается экономичностью и простотой, требуя минимальных затрат.
Анализ необходимо проводить в нескольких случаях:
1. Если источник водоснабжения не имеет защиты от влияния факторов внешней среды;
2. Если коммунальные системы используются на протяжении многих лет без чистки;
3. При начале эксплуатации нового колодца или скважины.
Своевременное исследование с периодическим повторением процедуры позволит выявить степень опасности употребления жидкости из конкретных источников и тем самым обезопасить людей от возможного негативного влияния патогенных микроорганизмов. Важно отметить, что анализ проводится только в специализированных лабораториях, оснащенных необходимым оборудованием и имеющих соответствующее разрешение на проведение подобных процедур.

Отчетный период с 23.05.2025г. по 28.05.2025г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 3836 проб сыворотки крови животных, проведено 13707 исследований. Выявлено: 48 положительных проб по бруцеллезу у крупного рогатого скота, 12 положительных проб по лептоспирозу у лошадей, 17 положительных проб у крупного рогатого скота, 202 положительные пробы у крупного рогатого скота по лейкозу.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 35 проб, проведено 205 исследований.

Нитраты в овощах и фруктах

Нитраты – соли азотной кислоты, которые могут содержаться в овощах и фруктах. Эти вещества используются в сельском хозяйстве как удобрения, но их избыток в продуктах опасен для здоровья. Азот – один из незаменимых элементов, дающих пользу деревьям, кустарникам, огородным овощам, садовым и прочим культурам, составляя основу их питания. Он требуется для синтеза белков, но растения способны поглощать его лишь в виде легкорастворимых азотистых и аммиачных соединений, то есть нитратов. Их накапливаемое количество зависит как от сорта культуры, так и от условий ее развития, включая тип почвы и состав применяемых удобрений. Нитраты накапливаются в овощах и фруктах из-за чрезмерного использования азотных удобрений, при этом часть удобрений усваивается растениями, а другая часть, поступающая сверх нормы, откладывается в плодах, стеблях и листьях. На содержание нитратов влияют: несоблюдение агротехнических приёмов (например, несвоевременное внесение удобрений); дисбаланс между микро- и макроэлементами в почве; выращивание растений в теплице или контейнере (недостаток освещения, тепла и площади может привести к накоплению нитратов).
Овощи, плоды которых находятся над поверхностью почвы, и фрукты в среднем содержат азотистых солей меньше, чем корнеплоды. Причем опасные компоненты сконцентрированы в основном в кожуре и под ней, в мякоти их количество невелико.
Опасны для человека не сами нитраты в любом овоще, фрукте, пучке огородной зелени, а избыточное содержание таких веществ. По мнению экспертов Роспотребнадзора, количество нитратов, полученных человеком за сутки, не должно превышать 3,7 мг на килограмм веса. Нитраты всасываются через стенки тонкого кишечника и попадают в кровь, а в период лактации у женщин — в грудное молоко. Компоненты реагируют с гемоглобином, окисляя его и образуя метгемоглобин с повышенным количеством железа. В результате у человека могут развиться серьезные заболевания. Чем больше нитратов накапливается в овощах и фруктах, тем выше риски для здоровья людей, которые едят такую пищу. Самая частая опасность — усиленное развитие патогенов в кишечнике (такие микроорганизмы выделяют токсины, провоцируя отравление) и нарушение работы почек при избыточном содержании солей.
В отделе химических исследований массовую долю нитратов определяют ионометрическим методом по МУ 5048-89 Методические указания по определению нитратов и нитритов в продукции растениеводства, п. 2. Сущность метода состоит в извлечении нитратов из анализируемой пробы раствором алюмокалиевых квасцов с последующим измерением их концентрации в полученной вытяжке с помощью ионоселективного электрода.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 713 пробы материала, проведено 874 исследования. Выявлено 5 положительных случая.

ДИАГНОСТИКА ГЕМОФИЛЕЗНОГО ПОЛИСЕРОЗИТА СВИНЕЙ

Источник возбудителя инфекции - больные поросята и свиноматки-бактерионосители. Возбудителя выделяют из носовой слизи, мокроты при кашле, экссудата из глаз, фекалий Заболеваемость гемофилезным полисерозитом молодняка свиней составляет 20-60%.
Кроме эпизоотологических и патологоанатомических данных, для постановки диагноза проводят лабораторные (бактериологические) исследования патологического материала, отобранного от павших или вынужденно убитых поросят, а также ставят биопробу. Материал для лабораторного исследования берут не позднее чем через 4-6 ч после смерти от 2-3 трупов поросят, павших с признаками острого полисерозита и не подвергавшихся антибиотикотерапии. От каждого животного патологический материал помещают в отдельную пробирку, закрывают резиновой пробкой, маркируют и в термосе со льдом нарочным отправляют в ветеринарную лабораторию.
Исследование патологического материала заключается в выделении чистой культуры Н. parasuis и складывается из микроскопии мазков и патологического материала, выделения культур возбудителя на специальных средах, их идентификации и определения патогенности на морских свинках.
Доставленный патологический материал суспендируют непосредственно в пробирке (флаконе). Из суспензии готовят мазки, высушивают их на воздухе, фиксируют над пламенем горелки, окрашивают по Граму и Гинсу и микроскопируют. В мазках возбудитель имеет вид мелких, полиморфных, грамотрицательных палочек, диплобактерий, нитей или коротких цепочек.
Высевы на питательные среды должны быть проведены не позднее 24 часов после взятия патологического материала. Две-три капли суспензии из экссудата и соскобов с серозных оболочек наносят на поверхность предварительно подсушенного кровяного мясопептонного агара в чашке Петри. Стерильным стеклянным шпателем материал распределяют по всей поверхности агара, а затем дробно рассеивают на 3 чашки с питательной средой. После 20-30 минутного подсушивания бактериологической петлей делают крестообразный посев штрихом по диаметру чашки культуры не гемолитического штамма белого стафилококка или кишечной палочки («Баккормилка»). Посевы инкубируют в аэробных условиях при 37-38 градусах Цельсия в течение 24 часов.
Биологическое исследование для определения патогенных свойств Н. parasuis проводят на морских свинках. Для этой цели исследуемую культуру высевают на шоколадный агар и выращивают при 37-38 градусах по Цельсию в течение 24 часов. Выращенную культуру смывают стерильным 0,85%-ным раствором поваренной соли и доводят концентрацию бактериальной суспензии до 20 ед. мутности по оптическому стандарту. Эту суспензию в дозе 1 мл вводят внутрибрюшинно трем морским свинкам массой 300-350 г. Наблюдение за зараженными животными ведут в течение 5 суток.
Культуру признают патогенной в случае гибели одной или более морских свинок из перитонеального и плевральноко экссудатов, а также из печени, селезенки и крови сердца каждой павшей морской свинки делают посевы на кровяной или сывороточный МПА в чашках Петри с «баккормилкой». Наличие в посевах роста сателлитных колоний бактерий с типичными морфологическими и тинктоиальными свойствами свидетельствует о выделении исходной культуры Н. parasuis.
Лабораторный диагноз на гемофилезный полисерозит считают установленным при выделении из патологического материала культуры Н. parasuis, патогенной для морских свинок.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 331 исследование.
Ящур (рыльно-копытная болезнь, афтозная лихорадка, эпизоотический стоматит) (Aphtae epizooticae) – острое вирусное высококонтагиозное заболевание из группы зоонозов (инфекционных болезней животных). Возбудитель ящура – фильтрующийся ультрамикроскопический вирус, который относится к семейству Picornoviridae и является одним из наиболее мелких РНК-содержащих вирусов. Данный возбудитель характеризуется высокой изменчивостью и устойчивостью во внешней среде.
Первое сообщение о заболевании животных ящуром было сделано в 1546 году венецианским врачом Фракасторо. Заболевание людей впервые было описано в 1764 году норвежским врачом Сагаром. В 1897 году Леффлер и Фрош доказали вирусную природу возбудителя и установили, что жидкость ящурных пузырьков проходит через бактериальные фильтры, сохраняя свою вирулентность.
Основным источником и резервуаром вируса являются домашние и дикие копытные животные. Выделение возбудителя больными животными происходит с мочой, слюной, испражнениями, молоком. Несоблюдение правил личной гигиены при контакте с заболевшими животными может явиться причиной заражения людей.
Большое значение в распространении вируса ящура имеет человек. Механически вирус переносится с транспортом, птицей и другими видами невосприимчивых животных, а также насекомыми и клещами. Основной путь передачи контактно-бытовой, инфицирование человека происходит при попадании вируса на поврежденную кожу или слизистую оболочку. Заражение может произойти при контакте с кормом и различными предметами ухода за животными, а также при употреблении в пищу сырого молока и плохо прожаренного мяса от больных животных.В клинической картине заболевание у человека протекает с явлениями:• афтозного стоматита (афты - поверхностные изъязвления, затрудняющие акт жевания и глотания, сопутствующим признаком является усиление слюнотечения);• герпетической ангины на фоне гриппоподобных состояний (головная и мышечная боль);• чувства жжения и сухости во рту;• появления везикулезно-эрозивных (пузырьково-язвенных) поражений ногтевого ложа и кожи межпальцевых складок.Вирус проникает в организм через слизистые оболочки полости рта (реже через слизистые пищеварительного и дыхательного тракта) и поврежденную кожу. В месте внедрения возбудителя возникает очаг поражения – небольшая везикула (пузырек), где вирус размножается и накапливается.
Следующим этапом является проникновение вируса в кровь, приводящая к интоксикации. Выраженная дерматотропность вируса обусловливает его фиксацию в эпителии слизистых оболочек (полость рта, носа, уретры) и кожи (кисти и стопы), где отмечаются вторичные везикулы. С их появлением вирус в крови не обнаруживается.
Больным ящуром независимо от тяжести заболевания необходимо проходить лечение в условиях стационара, где они должны находиться не менее 14 дней от начала болезни до полного клинического выздоровления, заживления язв на слизистых оболочках и коже.

Отчетный период с 25.04.2025г. по 15.05.2025г.

За отчетный период в серологический отдел поступило 11589 проб сыворотки крови животных, проведено 30852 исследования. Выявлено: 69 положительных проб по лептоспирозу у лошадей и 1 положительная проба по лептоспирозу у мелкого рогатого скота; 1480 положительных проб по лейкозу крупного рогатого скота.
Лейкоз крупного рогатого скота – хроническая инфекционная болезнь, вызываемая вирусом лейкоза крупного рогатого скота. Лейкозом болеет крупный рогатый скот всех возрастов. Клинически болезнь проявляется чаще у животных в возрасте старше 4 лет.
При установлении диагноза на лейкоз крупного рогатого скота в эпизоотическом очаге запрещается
- вывоз/вывод восприимчивых животных, за исключением вывоза восприимчивых животных на убой на предприятия по убою животных или оборудованные для этих целей убойные пункты или вывоза восприимчивых животных в резервацию;
- посещение территории посторонними лицами, кроме персонала, выполняющего производственные операции, специалистов госветслужбы и привлеченного персонала для ликвидации эпизоотического очага, лиц, проживающих и/или временно пребывающих на территории, признанной эпизоотическим очагом;
- сбор, обработка, хранение, вывоз и использование спермы, яйцеклеток и эмбрионов для искусственного осеменения животных, а также использование быков-производителей для случки;
- совместное содержание в помещениях или на выгульных площадках инфицированных, больных и здоровых восприимчивых животных;
- совместное доение больных, инфицированных и здоровых восприимчивых животных;
- использование для доения больных, инфицированных и здоровых восприимчивых животных одних и тех же доильных аппаратов, не прошедших дезинфекцию;
- сбор в общую емкость молока при доении больных, инфицированных и здоровых восприимчивых животных;
- получение крови от животных-продуцентов;
- использование больных, инфицированных восприимчивых животных и полученного от них приплода для воспроизводства стада;
- использование молозива от больных, инфицированных коров для выпойки телят;
- проведение отелов здоровых, больных и инфицированных восприимчивых животных в одном помещении;
- совместный выпас больных, инфицированных и здоровых восприимчивых животных.
В эпизоотическом очаге осуществляется:
- отбор проб крови с интервалом в 90 календарных дней в целях проведения серологических исследований восприимчивых животных до получения двукратных отрицательных результатов; молекулярно-биологических исследований восприимчивых животных, а также гематологических исследований вновь выявленных инфицированных восприимчивых животных;
- изолированное содержание и направление на убой больных восприимчивых животных в течение 15 календарных дней с даты установления диагноза на лейкоз;
- направление на убой инфицированных восприимчивых животных в случае, если в хозяйстве суммарное количество больных и инфицированных восприимчивых животных составляет до 5% от общего количества восприимчивых животных;
- вывоз в резервацию инфицированных восприимчивых животных, в случае, если в хозяйстве суммарное количество больных и инфицированных восприимчивых животных составляет 5% и более;
- оборудование дезинфекционных ковриков на входе/выходе, въезде/выезде;
- уничтожение запасов спермы, полученных от инфицированных быков в течение 60 календарных дней до даты обнаружения у них антител к возбудителю;
- обеспечение смены одежды, обуви при входе на территорию эпизоотического очага и выходе с территории эпизоотического очага;
- обеспечение дезинфекции одежды, обуви при выходе с территории эпизоотического очага;
- дезинфекционная обработка всей поверхности транспортных средств при выезде с территории эпизоотического очага;
- дезакаризация и дезинсекция помещений, в которых содержатся восприимчивые животные;
- обеспечение отсутствия на территории эпизоотического очага животных без владельцев.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 40 проб, проведено 193 исследования. 
За отчетный период выявлен 1 положительный результат
В одной пробе рыбной продукции массовая доля поваренной соли ниже нормы.

Определение массовой доли поваренной соли в рыбной продукции

Соленая рыба – это рыба, обработанная солью. Посол является древнейшим способом консервирования рыбы с помощью поваренной соли. Он был известен людям около 4 тыс. лет до нашей эры. Консервирующее действие поваренной соли, введенной в рыбу, состоит в том, что в процессе посола благодаря разности между концентрацией соли в тканевой жидкости рыбы и в растворе соли возникает осмотическое давление, вызывающее диффузию клеточного сока из рыбы и проникновение соли в ее ткани. Происходит просаливание рыбы и частичное ее обезвоживание. Выделенный клеточный сок рыбы с поваренной солью образует раствор, который называется тузлуком. В результате частичного обезвоживания рыбы и повышения содержания в ней соли создаются неблагоприятные условия для развития гнилостных бактерий, поэтому соленая рыба лучше сохраняется. При посоле в тузлук переходит некоторое количество белков, жира и минеральных веществ рыбы. Это понижает пищевую ценность соленой рыбы по сравнению со свежей.
Посол считается законченным, когда содержание соли в продукте достигает заданного.
Под действием ферментов мышечной ткани и ферментов микрофлоры белковые вещества расщепляются на более простые соединения. Жиры подвергаются гидролизу и окислению, в результате чего накапливаются свободные жирные кислоты. Мышечная ткань при этом становится сочной, нежной, легко отделяется от костей и приобретает специфические приятные вкус и аромат. Такой процесс называется созреванием. Созреванию подвергаются сельдевые, лососевые, анчоусовые, скумбриевые, некоторые сиговые рыбы. При созревании рыба становится пригодной для употребления в пищу без дополнительной кулинарной обработки.
Существует сухой, мокрый и смешанный посол рыбы. При сухом посоле рыбу перемешивают с солью; продукт при этом получается сильно обезвоженным, крепко-соленым, низкого качества. При мокром посоле рыбу погружают в заранее приготовленный раствор соли нужной концентрации; так получают слабосоленые продукты и полуфабрикаты, используемые в дальнейшем в консервном производстве при копчении и мариновании. При смешанном посоле рыбу пересыпают солью с добавлением рассола; выход готовой продукции больше, чем при сухом посоле; этот способ применяют обычно при посоле жирных рыб. В зависимости от температурных условий посол бывает теплым, охлажденным и холодным.
По содержанию соли сельди подразделяют на слабосоленые – поваренной соли от 7 до 10 %, среднесоленые – от 10 до 14 % и крепко-соленые более 14 %. Дальневосточные лососи реализуют слабосолеными – соли от 6 до 10 % и среднесолеными – от 10 до 14 %.
В отделе химических исследований массовую долю поваренной соли в рыбной продукции определяют аргентометрическим методом по ГОСТ 7636-85 Рыба, морские млекопитающие, морские беспозвоночные и продукты их переработки. Методы анализа, пункт 3.5.1. Метод основан на взаимодействии хлористого натрия с азотнокислым серебром в присутствии хромовокислого калия с образованием красного осадка — хромовокислого серебра.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1298 пробы материала, проведено 1519 исследования. Выявлено 5 положительных случая.

Идентификация возбудителя при заражении малым ульевым жуком (Aethina tumida) возможна двумя способами: косвенно, по нанесённому ущербу колонии, и напрямую, при обнаружении яиц, личинок и взрослых особей. Косвенный метод предполагает оценку ущерба, который нанёс жук. Например, отмечают, что мёд разжижается, изменяет цвет, вспенивается, вытекает из сотов и имеет характерный запах гнилых апельсинов. Также при большой численности жуков пчёлы покидают улей. 
                                           

Прямой метод включает осмотр колонии, например, на ранней стадии можно обнаружить взрослых жуков под крышкой на нижней стенке или прячущихся в сотах (особенно по краям). Кладки яиц жука часто находят в углах рамок.
Для точной диагностики в лаборатории используют следующие методы:
Морфологическое обследование. Включает визуальный осмотр образцов с отметкой характеристик, которые отличают Aethina tumida от других видов блестянок и личинок восковой моли.
Молекулярная идентификация. Для этого применяют полимеразную цепную реакцию (ПЦР) в реальном времени. Метод особенно полезен для проверки личинок, где морфологические признаки выражены менее ярко.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 783 исследования.
Listeria monocytogenes— это грамположительная, не образующая спор, подвижная, факультативно анаэробная палочковидная бактерия.   
При рассмотрении под световым микроскопом эта бактерия демонстрирует характерную вращательную подвижность, активно передвигается с помощью жгутиков при комнатной температуре (20−25 °C), но неподвижный при температуре выше 30 °C. Растёт в диапазоне температур от 0 до 45 °C, включая условия холодильного хранения, поэтому часто листерии называют микроорганизмом «холодильника», но оптимальная температура -37 °C. Растет в широком диапазоне pH от 4,6 до 9,5(бактерии способны адаптироваться к среде с низким уровнем pH), а также выдерживать солёность до 20%. Наибольшее значение в распространении листериоза играет способность возбудителя длительно сохраняться в различных пищевых продуктах, в том числе упакованных в барьерные пленки, ограничивающие доступ кислорода (под вакуумом, в модифицированной газовой атмосфере). Термоустойчивость листерий понижается с увеличением содержания соединительной ткани в мясе. Жир пищевых продуктов оказывает защитное действие на термоустойчивость листерий. В охлажденном мясе количество жизнеспособных листерий снижается, но полного отмирания возбудителя не происходит. В замороженном мясе, при минус 10 – 28°С, жизнеспособные листерии обнаруживаются до 10 – 14 месяцев и более. В мясе и шкурах, консервированных хлористым натрием, возбудитель листериоза сохраняется 60 суток и более.

Благодаря этим условиям роста, устойчивости бактерии могут выживать и размножаться в неблагоприятных условиях окружающей среды, которые часто встречаются на предприятиях по производству продуктов питания. L. monocytogenes является важным патогеном, передающимся через пищу и вызывающим заболевание под названием листериоз, которое может проявляться в виде спорадических инфекций или вспышек заболевания со значительным уровнем смертности — 20–30%.        
У человека в зависимости от тяжести заболевания симптомы могут длиться от нескольких дней до нескольких недель. Лёгкие симптомы могут включать лихорадку, мышечные боли, тошноту, рвоту и диарею. При развитии более тяжёлой формы листериоза симптомы могут включать головную боль, ригидность затылочных мышц, спутанность сознания, потерю равновесия и судороги. Заболевание особенно опасно для пожилых людей, беременных женщин, нерождённых детей и людей с ослабленным иммунитетом.
Бактерии широко распространены в окружающей среде: встречаются в почве, воде, растениях и пищевых продуктах (сырое или плохо термически обработанное мясо и рыба упакованная мясная нарезка, рыбная нарезка горячего или холодного копчения, колбасы, птица, сосиски, морепродукты); молочные продукты (некипячёное молоко, сыры из сырого молока, масло), немытые овощи и фрукты, контактирующие с заражённой почвой или животными.
Основным принципом обеспечения безопасности продуктов питания является соблюдение санитарно-эпидемиологических требований по условиям производства, упаковки, хранения, транспортировки пищевых продуктов с целью предупреждения их контаминации листерией при производстве и реализации.