За отчетный период в отдел химических исследований поступило 28 проб, проведено 100 исследований.

Протеин в комбикормах

Определение содержания сырого протеина — самый массовый вид химических исследований в комбикормовой отрасли. Сырой протеин — это общее количество азотосодержащих веществ в корме, как органического, так и неорганического происхождения.
Протеин (белок) — это органическое соединение, в состав которого входит азот. Все белки, независимо от структуры, свойств и функций, построены из одних и тех же аминокислот, в состав которых и входит азот. Однако белки отличаются друг от друга по количественному соотношению аминокислот, которое зависит от биологического объекта.
Протеин является незаменимым питательным веществом для животных и птиц, это поставщик аминокислот, необходимых для синтеза специфических белков в организме животных. Если аминокислот недостаточно, замедляется или прекращается рост, снижается продуктивность, происходит внутреннее перераспределение протеина.
Недостаток протеина в кормах резко снижает продуктивность животных, их воспроизводительные способности, приводит к перерасходу кормов на единицу продукции. Протеин выполняет структурную функцию, так как является единственным и незаменимым источником аминокислот для синтеза белка животного происхождения, он имеет функциональное значение, так как входит в состав ферментов и гормонов, которые регулируют все обменные процессы в организме. Кроме этого, протеин имеет энергетическое значение (при расщеплении 1 г белка образуется 17,6 кДж энергии). Белок выполняет каталитическую функцию, протеин обладает защитной функцией (иммуноглобулин). Протеин осуществляет транспорт газов (гемоглобин переносит кислород и углекислый газ).
В качестве аналитических методов для определения общего азота с последующим пересчетом в сырой протеин обычно применяют три метода: классический (метод Кьельдаля), фотометрический и более современный – это метод Дюма.
Несмотря на то, что фотометрический метод внесен в ГОСТ на определение общего азота/сырого протеина, по ряду причин он не совсем подходит для комбикормовой продукции из-за сложности ее состава. Основное преимущество метода Дюма — быстрота анализа. Метод не является арбитражным, и в случае возникновения претензий или разногласий между поставщиком и потребителем, для повторных исследований используют метод Кьельдаля.
В отделе химических исследований определение общего азота по методу Кьельдаля проводится в три основных этапа: минерализация (разложение) образца, нейтрализация кислоты концентрированной щелочью с последующей перегонкой (дистилляцией) водяным паром, титрование перегнанного дистиллята раствором кислоты или щелочи известной концентрации (титрантом). В процессе анализа все вещества корма разрушаются до углекислого газа и воды, а азот, связываясь с серной кислотой, образует соль — сернокислый аммоний. Протеин можно определить путем умножения общего количества азота, полученного в результате анализа, на соответствующий коэффициент.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 33 проб материала, проведено 45 исследований, положительных случаев не выявлено.

Принципы микробиологической диагностики листериоза.

Основу распознавания листериоза составляют выделение и идентификация возбудителя.
Бактериологические исследования листерий: материалы для исследования на листерии - кровь, СМЖ, слизь из зева, пунктаты увеличенных лимфатических узлов, у новорождённых дополнительно — меконий, пупочная кровь; секционный материал (кусочки мозга, печени, селезёнки, лимфатические узлы). Посевы рекомендуют делать в первые 7-10 сут болезни. Кровь и СМЖ засевают на плотные среды (глюкозный, глюкозо-печёночный или КА с глюкозой). Выросшие колонии отбирают для дальнейших исследований по наличию гемолитической активности (на средах с кровью) либо по способности приобретать сине-зелёную окраску при косом освещении.
Серологические исследования листерий: обычно ставят РА с листериозным диагностикумом. Реакция специфична и положительна со второй недели с последующим нарастанием титра AT; последние сохраняются не менее 1-2лет после выздоровления (реакция может быть использована для ретроспективного анализа).
Биологическая проба в выявлении листерий: для биологической диагностики листериоза лучше всего использовать белых мышей, иммуносупрессированных введением кортизона (4-5 мг в/м за 4 ч до заражения). После гибели животного (обычно на 2-6-е сутки) проводят посев материала из различных органов. Следует помнить, что листерии размножаются в мёртвых тканях, и для избежания диагностических ошибок часть патологического материала следует поместить в стерильные пробирки и хранить в течение 5- 10 суток при температуре 4-6° С, а затем подвергнуть повторному исследованию.
Основу лечения и профилактики листериоза составляет проведение адекватной антибиотикотерапии (цефалоспорины, аминогликозиды). Ведущее значение в профилактике листериоза имеют соответствующие ветеринарно-санитарные мероприятия. Определённый вклад вносят своевременное проведение дератизации и немедленное изъятие, и уничтожение продуктов, испорченных грызунами (или подозрительных продуктов!).

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 125 исследований.

КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА ДЕЗИНФЕКЦИИ

Критерии контроля качества дезинфекции. Бактериологический контроль качества дезинфекции осуществляют сотрудники ветеринарных лабораторий периодически или в сроки, установленные с учетом эпизоотической обстановки, технологии производства, целей дезинфекции и других конкретных особенностей.
При бактериологическом контроле качества дезинфекции определяют наличие на поверхностях обеззараживаемых объектов жизнеспособных клеток санитарно-показательных микроорганизмов — бактерий группы кишечных палочек, стафилококков, микобактерий или спорообразующих аэробов рода Bacillus.
По наличию или отсутствию бактерий группы кишечных палочек определяют качество профилактической и вынужденной (текущей и заключительной) дезинфекции при бруцеллезе, эшерихиозе, лептоспирозе, листериозе, болезни Ауески, лейкозе, пастереллезе, сальмонеллезах, трихомонозе, кампилобактериозе, трипаносомозе, ток- соплазмозе, инфекционном ринотрахеите, парагриппе и вирусной диарее крупного рогатого скота, контагиозной эктиме, инфекционной агалактии и контагиозной плевропневмонии овец и коз, отечной болезни, инфекционном атрофическом рините, дизентерии, трансмиссивном гастроэнтерите, балантидиозе, гемофилезной плевропневмонии и роже свиней, ринопневмонии лошадей, пуллорозе-тифе птиц, миксомотозе кроликов, микоплазмозе птицы.
По наличию или отсутствию стафилококков контролируют качество текущей дезинфекции при туберкулезе, болезнях, вызываемых спорообразующими микроорганизмами, и экзотических инфекциях, а также качество заключительной дезинфекции при туберкулезе, аденовирусных инфекциях, ящуре, оспе, туляремии, орнитозе (пситтакоз), диплококкозе, стафилококкозе, стрептококкозе, некробакте- риозе, катаральной лихорадке, бешенстве, чуме животных всех видов, злокачественной катаральной горячке, ринопневмонии и паратуберкулезном энтерите крупного рогатого скота, инфекционной катаральной лихорадке, копытной гнили и инфекционном мастите овец, везикулярной болезни свиней, инфекционной анемии, инфекционном энцефаломиелите, эпизоотическом лимфангите, сапе и мыте лошадей, гепатите утят, вирусном энтерите гусят, инфекционном бронхите, ларинготрахеите, болезни Марека, болезни Гамборо, ньюкаслской болезни, вирусном энтерите, алеутской болезни, псевдо- монозе и инфекционном гепатите плотоядных, хламидиозах, риккетсиозах, энтеровирусных инфекциях, гриппе сельскохозяйственных животных и птицы, трихофитии, микроспории, других микозах животных и птицы, актиномикозе крупного рогатого скота, а также болезнях, вызываемых неклассифицированными вирусами, при дезинфекции вагонов II категории. Качество заключительной дезинфекции при микозах контролируют также по выделению соответствующих возбудителей.
Качество заключительной дезинфекции при туберкулезе контролируют по выделению стафилококков и микобактерий. При сибирской язве, эмфизематозном карбункуле, брадзоте, злокачественном отеке, других споровых инфекциях и экзотических инфекциях— по наличию или отсутствию спорообразующих микроорганизмов рода Bacillus.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 134 проб материала, проведено 197 исследований, получено 4 положительных случая.

Нозематоз у пчёл – это заболевание, вызванное паразитическим микроскопическим грибком Nosema spp., поражающее пищеварительную систему пчёл и серьезно сказывающееся на их продуктивности и выживаемости. В результате инфекции пчелы испытывают диарею, нарушение пищеварения, а также снижение общей активности и устойчивости к другим болезням. Нозематоз может быть особенно опасен для медоносных пчёл, поскольку он может привести к гибели целого пчелиного семейства и существенно снизить медоносность пасеки, а также распространяться на другие пчелосемьи через общие источники питания или контакты с инфицированными пчелами.
Диагностика нозематоза у пчёл требует проведения специальных лабораторных исследований, так как внешние симптомы могут быть схожи с проявлениями других заболеваний и паразитных инфекций. Вот основные методы диагностики нозематоза:
-микроскопическое исследование: это основной и наиболее распространенный метод диагностики нозематоза. Для его проведения берут образцы средней кишки пчел и размазывают их на стекле. Затем материал исследуется под микроскопом с увеличением 400-1000 раз. В случае наличия нозематоза будут видны характерные споры Nosema spp. размером около 4-6 микрон;
-методы молекулярной диагностики, такие как ПЦР (полимеразная цепная реакция), позволяют определить наличие ДНК паразитов в образцах кишечного содержимого или тканей пчелы. Молекулярная диагностика может быть более чувствительной и точной, чем микроскопия, а также позволяет различать виды паразитов (например, Nosema apis и Nosema ceranae);
-гистологическое исследование: гистологический анализ срезов кишечной стенки пчелы может показать характерные изменения, вызванные нозематозом, такие как повреждение эпителия, нарушение структуры микроворсинок и присутствие спор в клетках;
-биохимические исследования: в некоторых случаях могут проводиться биохимические анализы гемолимфы или других жидкостей пчелы на наличие специфических маркеров, связанных с нозематозом или общим состоянием здоровья пчелы.
Для проведения точной диагностики нозематоза важно использовать правильную методику отбора образцов, а также иметь доступ к качественному оборудованию и опыту специалистов. Регулярное проведение диагностики и мониторинга состояния пчел помогут своевременно выявлять и лечить нозематоз, предотвращая его распространение на пасеке и снижая негативное влияние на пчелосемьи и пчелопродукцию.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 426 исследований.

Ящур является опасным вирусным инфекционным заболеванием, при котором поражаются слизистые покровы кожи. Болезнь передается человеку от больных животных. Заражение человека может произойти, главным образом, при употреблении сырого молока, молочных продуктов, мяса, реже - при непосредственном контакте с больными животными и при контакте с инфицированными предметами (подстилка, кормушка). Возможны случаи воздушно-капельного заражения.
Данное заболевание имеет широкое распространение. Вирус обладает высокой устойчивостью во внешней среде и долгое время сохраняет активность в условиях холода и высушенном состоянии.
В сырье и продуктах, полученных от больных животных, вирус остается жизнеспособным от нескольких суток до месяца и более. В условиях холода вирус сохраняется в сливках - до 4 дней, молоке - до 12 дней, масле - до 45 дней, субпродуктах - до 3 месяцев. Вирус ящура устойчив во внешней среде: на шерсти животных он сохраняется до четырех недель, на одежде - до 3,5 недели.
Наиболее восприимчивы к ящуру крупный рогатый скот и свиньи; овцы, козы и дикие копытные животные - менее чувствительны. Молодые животные более восприимчивы и болезнь может протекать тяжелее, чем у взрослых.
Источник возбудителя ящура - больные животные, в том числе находящиеся в инкубационном периоде заболевания, а также вирусоносители (более 400 дней). Такие животные выделяют вирус во внешнюю среду с молоком, слюной, мочой и калом. В результате этого происходит инфицирование помещений, выгульных дворов, различных предметов и инвентаря, пастбищ, водоисточников, кормов, транспортных средств, предприятий по заготовке и переработке животноводческой продукции и других объектов. Заражение животных происходит преимущественно через слизистые оболочки ротовой полости при поедании кормов и питья, облизывании различных инфицированных предметов. Большое значение в распространении вируса ящура имеет человек, так как он чаще всего соприкасается с животными и может перемещаться на большие расстояния. Механически переносится вирус ящура с транспортом, птицей и другими видами невосприимчивых животных (в том числе и дикими), а также насекомыми и клещами. 
Симптомы болезни
Инкубационный период заболевания - в среднем 3-4 дня, хотя он может укорачиваться до двух дней или удлиняться до 10-14 дней, очень редко протекает 21 день.
Наиболее характерные признаки ящура выражены у взрослого крупного рогатого скота: повышение температуры тела животного до 41 °С и выше, покраснение слизистой оболочки ротовой полости и конъюнктивы, обильное слюноотделение. Животные очень осторожно пережевывают корм, глотание болезненно. У них возникает жажда, появляется хромота. Через 3 дня заболевания температура тела снижается и появляется сыпь. Животные хромают, стоят, выгнув спину, подобрав ноги под живот. Вымя отекает, становится болезненным, развиваются вторичные маститы, обусловленные обсеменением стрептококками, стафилококками. На конечностях появляются панариции и флегмоны, возможны глубокие поражения суставов и сухожилий.

1 положительная проба по лейкозу крупного рогатого скота, 2 положительные пробы по хламидиозу у мелкого рогатого скота.

Хламидиоз животных – инфекционная болезнь, вызываемая микроорганизмами из рода Chlamydia. Заболевание протекает экзотически и проявляется у маток – абортами, рождением нежизнеспособного приплода.
Источником инфекции служат больные животные, которые выделяют возбудитель с абортированными плодами и их оболочками, с истечениями из половых путей.
Диагноз на хламидиоз устанавливают на основании комплекса клинических признаков, патологоанатомических изменений и данных лабораторных исследований с обязательным выделением возбудителя болезни.
Мероприятия по предупреждению заболевания:
- комплектование хозяйств проводят клинически здоровыми животными и из хозяйств благополучных по хламидиозу;
- для устранения факторов, способствующих заболеванию животных, необходимо создать оптимальный микроклимат в помещениях, соблюдать принцип – "все пусто - все занято";
- не допускают совместного содержания животных разных видов, а также максимально ограничивают контакт их с домашней и дикой птицей.
Мероприятия по ликвидации заболевания.
При установлении диагноза на хламидиоз территорию (хозяйство, ферма), на которой выявлено заболевание, в установленном порядке объявляют неблагополучной по этой болезни и на ней вводят ограничения.
По условиям ограничений запрещают:
- ввод/ввоз и вывод/вывоз животных из неблагополучного пункта, за исключением случаев отправки поголовья на убой;
- перегруппировку животных внутри неблагополучного хозяйства без разрешения ветеринарного специалиста.
Больных животных изолируют и подвергают лечению антибиотиками тетрациклинового ряда.
Животноводческие помещения подвергают механической очистке и дезинфекции.
Абортированные плоды, плодные оболочки, трупы собирают во влагонепроницаемую тару, а затем вывозят в отведенные места для утилизации.
Навоз, подстилку складируют в бурт и обеззараживают биотермическим способом.
Вынужденный убой больных хламидиозом животных производят на санитарной бойне. Их транспортировку осуществляют специально оборудованным транспортом, который затем подвергают механической очистке и дезинфекции.
Ограничения с неблагополучного пункта снимают через 30 дней после выздоровления больных животных и проведения заключительных мероприятий.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 27 проб, проведено 76 исследований.

Вредные примеси в зерне

Вредные примеси наносят значительный ущерб зерновым культурам: отнимают у растений воду и питательные вещества, осложняют хранение, переработку зерна, снижают качество продукции. Плоды и семена многих сорных растений содержат вещества, ядовитые для людей и животных. Наиболее частые случаи выявления вредных примесей в зерновых культурах – головня и спорынья.
Головня – грибная болезнь, поражающая зерновые культуры (пшеницу, ячмень, овес) и другие виды культурных растений. По характеру проявления различают: твердую и пыльную («закоптелая») головню. При твердой головне разрушается только зерно, оболочка зерна сохраняется. При пыльной головне разрушаются почти все части колоса, споры легко разносятся ветром. Самый распространенный вид поражения пшеницы – твердая головня, возбудителем которой является гриб Tilletiatritici. Уничтожить головневые грибы практически невозможно, они обладают специальными головневыми спорами, которые помогают выживать даже в неблагоприятном климате. Споры грибов образуются в головневых мешочках, которые возникают на месте зерна и разлетаются в виде черной пыли, поражая другие растения. По форме и размеру головневые мешочки схожи с зернами пшеницы. Наибольшее количество спор образуется на бородке зерна. В результате чего бородка приобретает синий оттенок, такие зерна называют синегузочными. Мараные зерна – это зерна, к сырой поверхности которых прилипают споры головяных грибов. Синегузочные и мараные зерна объединяются под общим названием головневые. Мука из таких зерен имеет неприятный запах, вкус и синеватый оттенок.
Спорынья (ClavicepspurpureaTuli.) – болезнь, вызываемая паразитным грибом, развивается в завязях растений. Встречается во ржи, реже в других злаковых культурах (пшеница, ячмень). В колосе ржи образуются рожки (склероции) фиолетового цвета, длиной 1-4 см. В разрезе рожок белый с розоватым оттенком. Попадая в землю, рожок спорыньи прорастает весной. Гриб образует плодовые тела, выделяющие споры, которые переносятся насекомыми и ветром на завязь цветущей ржи и развиваются в грибницу. Спорынья даже при высокой температуре сохраняет свои ядовитые свойства. Для развития спорыньи наиболее благоприятен климат с повышенной влажностью (70% и выше). Мука, отруби или отходы с содержанием спорыньи вызывают тяжелое отравление человека и животных (эрготизм).
Головня и спорынья встречаются во всех регионах России.
Отделом химических исследований проводится анализ по выявлению вредных примесей в зерне методом ручного выделения примесей по ГОСТ 30483-97 Зерно. Методы определения общего и фракционного содержания сорной и зерновой примесей; содержания мелких зерен и крупности; содержания зерен пшеницы, поврежденных клопом-черепашкой; содержания металломагнитной примеси (п. 3.1).

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 113 проб материала, проведено 182 исследований, получено 20 положительных случая.

СИБИРСКАЯ ЯЗВА - одно из наиболее опасных инфекционных заболеваний животных (крупного и мелкого рогатого скота, лошадей, свиней и др.) и человека с очень высокой смертностью. Возбудитель сибирской язвы устойчив в окружающей среде. В почве он сохраняется столетиями. Длительность и признаки заболевания многообразны. Заболевание поражает как отдельные органы, так и организм в целом.
Возбудитель – спорообразующая бактерия, устойчивая к физико-химическим воздействиям, которая может сохраняться во внешней среде столетиями. Источник возбудителя - больное животное, экскременты заболевших животных (кал, моча, кровянистые истечения из естественных отверстий), а также зараженные сибиреязвенными спорами участки почвы и другие объекты внешней среды.
Основной путь заражения у животных через корма и воду, а также через укусы насекомых и органы дыхания. Заражение человека происходит при уходе за больными животными, в процессе их убоя, снятия шкур, разделки туш, кулинарной обработки мяса, при хранении, транспортировке. В зависимости от путей заражения у человека развивается кожная, кишечная, легочная формы сибирской язвы.
У свиней сибирская язва протекает местно в ангинозной форме хронически и реже - остро.
Без оказания лечебной помощи больное животное погибает. Трупы животных, павших от сибирской язвы, быстро разлагаются и поэтому обычно вздуты, окоченение в большинстве случаев не наступает или выражено слабо. Из естественных отверстий вытекает кровянистая жидкость.
Меры профилактики:
- Предоставлять животных ветеринарным специалистам для проведения клинического осмотра, вакцинации.
- Сообщать государственной ветеринарной службе по месту жительства о вновь приобретённых животных с проведением последующей их идентификации (биркование и др.).
- Проводить покупку, продажу, сдачу на убой, выгон на пастбище и всех других перемещений животных, реализацию животноводческой продукции только с разрешения ветеринарной службы.
- Проводить карантинирование в течение 30 дней вновь приобретённых животных для проведения ветеринарных исследований и вакцинаций.
- Категорически запрещается вывоз (ввоз) за пределы населенного пункта больных животных или зараженных продуктов и сырья животного происхождения (при регистрации случаев заболевания).
- Немедленно сообщать обо всех случаях заболевания, вынужденного убоя и падежа животных в ветеринарные учреждения.
- Вскрытие трупов животных при подозрении на заболевание сибирской язвой запрещено! Категорически запрещается самостоятельное захоронение павших животных.
- Обязательно приглашать ветеринарного специалиста для проведения предубойного осмотра животного и ветеринарно-санитарной экспертизы продуктов убоя с обязательным проведением лабораторных исследований мяса от вынужденного убоя животных.
- Категорически запрещается приобретать продукты животного происхождения в местах несанкционированной торговли, без наличия ветеринарных сопроводительных документов.
- При первых признаках заболевания человеку необходимо своевременно обратиться за медицинской помощью.
- Покупая мясо без ветеринарных клейм и без предъявления продавцом ветеринарных сопроводительных документов (ветеринарной справки формы № 4 или ветеринарного свидетельства формы № 2), Вы рискуете заразиться сами и заразить своих близких СМЕРТЕЛЬНОЙ БОЛЕЗНЬЮ! Будьте бдительны и осторожны!

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 515 исследований.

В ГБУ «Оренбургская облветлаборатория» проводят исследования сыворотки крови живот на выявление неструктурных белков вируса ящура.
Ящур – высоко контагиозная вирусная болезнь домашних и диких парнокопытных животных, проявляющаяся везикулярными поражениями эпителия ротовой полости, конечностей и вымени. Относится к категории трансграничных болезней, способных преодолевать границы между государствами, вызывать эпизоотии и наносить большой экономический ущерб животноводству.
Возбудителем болезни является безоболочечный РНК-содержащий вирус ящура, представитель рода Aphthovirus семейства Picornaviridae. Различают семь серотипов вируса: О, А, С, Азия-1, SАТ-1, SАТ-2 и SАТ-3.    
Важным инструментом контроля заболевания является обнаружение антител к неструктурным белкам вируса ящура в крови восприимчивых животных. Это единственный способ, позволяющий достоверно дифференцировать вакцинированных животных от переболевших и вирусоносителей. Для выявления антител к неструктурным протеинам вируса ящура разработаны различные модификации твердофазного иммуноферментного анализа (НСП-ИФА).
У инфицированных вирусом ящура животных вырабатываются антитела ко всем вирусным белкам: и структурным, и неструктурным. У животных, вакцинированных против ящура, антительный профиль отличается: выявляют антитела только против структурных белков вируса. Это обусловлено тем, что современные противоящурные вакцины проходят этап очистки, и большая часть неструктурных белков вируса удаляется из них. Таким образом, выявление антител к неструктурным белкам вируса ящура может служить доказательством инфицирования животного вирусом независимо от того, было оно вакцинировано или нет.
Способность НСП-тестов определять возбудителя независимо от серотипа вируса определяет их востребованность в странах, благополучных по ящуру без вакцинации, а возможность с помощью НСП-ИФА выявлять инфекцию у вакцинированных животных обеспечивает его широкое применение в странах или зонах с вакцинацией. Однако необходимо учитывать, что дифференциация вакцинированных и инфицированных животных с помощью НСП-тестов возможна только при условии применения высоко очищенных противоящурных вакцин.

За отчетный период выявлен 1 положительный результат:

В 1 пробе сыра твердого массовая доля влаги – ниже нормы 

Массовая доля влаги в сырах

На формирование определенного вида сыра с характерными только ему консистенцией, вкусом, запахом и прочее оказывают влияние сразу несколько факторов, определяющих скорость и направленность микробиологических, ферментативных и физико-химических процессов: степень зрелости молока; пастеризация (проводится или нет), температура пастеризации молока; вид микроорганизмов, вносимых с заквасочной культурой; температура второго нагревания; содержание влаги в сыре; уровень рН сырной массы.
Содержание влаги в сыре оказывает большое влияние на формирование органолептических и иных показателей сыра, т.е. в целом непосредственно и участвует в его создании. Как было указано выше, на содержание влаги влияет качество и зрелость исходного сырья. Также имеет значение время и температура выдержки сырного сгустка, и его обработка в последующем - нарезка, время и интенсивность вымешивания сырного зерна. Также играет роль на содержание влаги степень разбавление сыворотки водой (или отсутствие разбавления), вид посолки сырной массы.
Каким же образом эти факторы влияют на итоговое содержание влаги в сыре?
Например, итоговая влажность сырной массы уменьшается, если увеличена интенсивность молочнокислого процесса, что происходит при повышенной температуре сычужного свертывания молока. Также, потеря влаги сыра происходит за счет обменных процессов во время посолки и созревания продукта.
Важно понимать, что от количества влаги в сырной массе зависит интенсивность протекающих при созревании сыра микробиологических и биохимических процессов, которые влияют на формирование вкусовых и видовых особенностей сыра. Ведь именно свободная влага, являясь естественным растворителем для многих веществ, становится основной средой для развития молочнокислых бактерий.
Молочная кислота переводит в водорастворимое состояние минеральные соли сыра и фосфор неорганических солей. В процессе созревания сыров накапливаются и другие растворимые продукты, которые связывают значительное количество влаги, вследствие чего в оставшейся свободной воде повышается концентрация соли. В результате увеличения концентрации растворимых веществ в сыре повышается осмотическое давление и создаются неблагоприятные условия для развития микроорганизмов, что влечет за собой отмирание бактерий всех групп.
В отделе химических исследований массовую долю влаги определяют методом высушивания.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 205 проб материала, проведено 666 исследований, получено 2 положительных случая.

Сальмонеллез является одной из наиболее часто диагностируемых инфекционных причин диареи у взрослых лошадей. Клинические проявления варьируются от отсутствия патологических клинических признаков (субклиническое носительство) до острой, тяжелой диареи и даже смерти. Заболевание возникает спорадически, но может стать локальной вспышкой, в зависимости от вирулентности организма, уровня воздействия и факторов хозяина.
Заражение кишечной сальмонеллой может произойти в результате загрязнения окружающей среды, корма или воды, или при контакте с животными, активно выделяющими бактерии. Стресс, по-видимому, играет важную роль в патогенезе.
Кишечная палочка серогруппы B включает S enterica серовар Typhimurium и S enterica Agona, два наиболее часто выделяемых серовара от лошадей с клиническим заболеванием. Определение серовара и антибиотикограммы пораженных случаев позволяет осуществлять последовательный мониторинг типа сальмонелл, инфицирующих данную группу лошадей. Появление изолятов с множественной лекарственной устойчивостью S enterica вызывает беспокойство.
У взрослых лошадей выявлены три формы сальмонеллеза:
Первая форма – это субклиническое носительство, которое может активно выделять или не выделять бактерии из организма, но потенциально может передавать бактерии восприимчивым животным либо при прямом контакте, либо при загрязнении окружающей среды, воды или источников корма. Для выявления носителей могут потребоваться множественные ПЦР-анализы и или посевы кала, поскольку микроорганизм выделяется с калом периодически и в небольших количествах. При стрессе у носителя может развиться клиническое заболевание.
Вторая форма заболевания характеризуется легким клиническим течением с признаками депрессии, лихорадки, анорексии и мягким, но не водянистым калом. У пораженных лошадей может наблюдаться абсолютная нейтропения. Клиническая картина заболевания может длиться 4-5 дней и обычно носит самоограничивающийся характер; Кишечная палочка может быть выделена с фекалиями. Выздоровевшие лошади могут продолжать выделять этот организм со своими фекалиями в течение нескольких дней или месяцев; поэтому рекомендуется изолировать линяющую лошадь и провести тщательную очистку и последующую дезинфекцию зараженных участков.
Третья форма сальмонеллеза характеризуется острым началом, тяжелым клиническим течением, сопровождающимся депрессией, анорексией, глубокой нейтропенией и, часто, болями в животе. Диарея развивается через 6-24 часа после начала лихорадки; кал жидкий и дурно пахнущий. Пораженные лошади быстро обезвоживаются, а по мере ухудшения состояния лошади возникают метаболический ацидоз и потеря электролитов. Клинические признаки сепсиса и гиповолемического шока могут быстро прогрессировать. Могут наблюдаться признаки дискомфорта в животе, напряжения или сильных колик, вторичных по отношению к кишечной непроходимости, газообразованию, воспалению толстой кишки и возможному инфаркту.
Бактериемия от сальмонеллы может возникать у новорожденных жеребят, особенно с ферм с эндемичным сальмонеллезом. Новорожденные, особенно с нарушением передачи пассивного иммунитета, подвергаются высокому риску бактериемии в результате попадания бактериальных патогенов до закрытия стенки кишечника. Часто может возникать сальмонеллезная бактериемия с последующей локализацией в костных тканях и суставах. У жеребят может наблюдаться хромота и отсутствие других клинических признаков сепсиса. Резкое повышение концентрации фибриногена в сыворотке крови и другие показатели воспаления, такие как низкий уровень сывороточного железа, повышенный уровень сывороточного амилоида А, нейтрофилия и гипергаммаглобулинемия у хромого жеребенка, указывают на остеомиелит.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 634 исследования.

Срок годности пищевой продукции - период времени, в течение которого пищевая продукция должна полностью соответствовать предъявляемым к ней требованиям безопасности, а также сохранять свои потребительские свойства, заявленные в маркировке, и по истечении которого пищевая продукция не пригодна для использования по назначению.
Сроки годности и условия хранения пищевых продуктов устанавливаются изготовителем пищевых продуктов или разработчиком нормативной и технической документации в соответствии с гигиеническими требованиями безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов, и вносятся в нормативную или техническую документацию в установленном порядке.

Санитарно-эпидемиологическая оценка обоснования сроков годности и условий хранения пищевых продуктов проводится для подтверждения соответствия продуктов установленным гигиеническим требованиям в течение этих сроков, а также для предупреждения их возможного вредного воздействия на здоровье человека и среду обитания. Проводятся в соответствии с утвержденными в установленном порядке методами контроля регламентируемых показателей. При постановке на производство продукции, санитарно-эпидемиологическая оценка сроков годности которой проведена при согласовании нормативной или технической документации в установленном порядке, исследования проводятся по следующей схеме - одной партии продукции не менее 3 раз в течение установленного срока годности - в начале хранения, на момент окончания срока годности и через промежуток времени, определенный соответствующим коэффициентом резерва.
Основой санитарно-эпидемиологического обоснования сроков годности пищевых продуктов является проведение микробиологических, оценка органолептических свойств образцов продукции в процессе хранения при температурах, предусмотренных нормативной и/или технической документацией.
В пищевых продуктах животного происхождения со сроками годности 10 суток и более (молочные продукты и сыры, мясные и птицепродукты, рыбная продукция), а также в овощных блюдах из сырых овощей проводится определение бактерий Listeria monocytogenes не менее двух раз в процессе исследования - после выработки и в конце предполагаемого срока годности.
В продуктах, содержащих жизнеспособную технологическую микрофлору или обогащенных пробиотическими микроорганизмами (молочно-кислые, пропионово-кислые бактерии, бифидобактерии, дрожжи и др.), контролируется их количество в процессе всего исследования. При необходимости контролируется видовой состав микрофлоры.
Проводятся исследования продукции на отсутствие условно-патогенных микроорганизмов: БГКП, S.aureus, сульфитредуцирующие. В обязательном порядке исследуются в динамике показатели микробной порчи:
- дрожжи и плесени - во всех испытуемых продуктах (кроме сырых замороженных полуфабрикатов из мяса, рыбы, птицы без панировки), дрожжи не определяются в изделиях из дрожжевого теста;
- бактерии рода Proteus - в охлажденных мясных, птичьих, рыбных полуфабрикатах и кулинарных изделиях, блюдах общественного питания.
Дополнительно исследуются:
- молочно-кислые микроорганизмы - в продуктах из мяса и птицы, упакованных с ограничением доступа кислорода;
- бактерии рода Pseudomonas - в охлажденных мясных, птичьих, рыбных полуфабрикатах, масложировых продуктах с пониженной жирностью.