Трипаносомозы (случная болезнь) – протозойные болезни животных, протекающие преимущественно хронически.
Возбудитель случной болезни – Trypanosoma equiperdum, поражающая слизистые оболочки половых органов, регионарные лимфатические узлы и сосуды, кровеносные капилляры. Основной вред – нарушение работы половых органов, приводящее к бесплодию. Также отмечается поражение нервной системы токсинами трипаносом.
Источником заражения выступают больные животные. Заражение восприимчивых животных происходит половым путем при случке или искусственном осеменении спермой, содержащей возбудителя. Жеребята могут заражаться во время родов через слизистую оболочку или через молоко от больных кобыл. Передача возбудителя происходит через инвентарь, предметы ухода и с помощью насекомых.

Болезнь протекает в любое время года обычно хронически. Клинические признаки часто развиваются в определенной последовательности. В первые 30-40 дней после заражения – период отеков слизистых оболочек органов, на них и коже появляются узелки, язвочки, на месте заживления которых образуются беспигментные пятна.

Затем следует период, когда образуются специфические для этой болезни припухлости кожи, так называемые «талерные бляшки» размером от 4 до 20 см. Характерно их внезапное появление и исчезновение. Животные обычно худеют, кобылы абортируют.

И третий период – период параличей. Появляются парезы и параличи двигательных органов, чаще лицевых: искривляются губы, отвисает ухо. Лошадь хромает, слегка приседая при проводке.

Диагноз на трипаносомоз ставят на основании эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных и результатов лабораторных исследований.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 24 пробы, проведено 70 исследований.
За отчетный период выявлено 1 положительный результат.

Плотность молока как определяющий показатель качества

Одним из важнейших показателей при анализе качества молока является его плотность. На первый взгляд, этот показатель может казаться лишь технической деталью, но на деле он несет в себе гораздо больше информации. Плотность молока, сочетаясь с другими известными показателями, может рассказать о множестве аспектов: от времени дойки до жиро-белкового состава, качества кормления животных и лактационного периода.
Для определения плотности молока используется лактоденсиметр (или ареометр).
Плотность — это мера, которая показывает, сколько массы содержится в единице объема. Ареометр измеряет плотность жидкости, определяя, насколько глубоко он погружается в нее. На стеклянном стержне ареометра нанесена шкала, которая позволяет считать плотность напрямую по глубине погружения.
Когда ареометр погружается в жидкость, он выталкивает жидкость до тех пор, пока вес ареометра не сбалансируется с поддерживающей силой, создаваемой выталкиваемой жидкостью. Эта глубина погружения зависит от плотности жидкости. В жидкости с высокой плотностью ареометр погружается менее глубоко, чем в жидкости с низкой плотностью.
Этот прибор определяет степень разбавленности молока водой при температуре 20°C. Погружая ареометр в молоко, можно увидеть, на какую глубину он опустится, что позволяет определить плотность жидкости. Высота погружения ареометра обратно пропорциональна плотности молока.
Показатель, измеренный с помощью этого прибора, называется Ареометра (°А) и соответствует классическому значению плотности за вычетом плотности воды. Так, плотность молока 1029 кг/м³ будет равна 29°А.
Плотность молока изменяется при фальсификации – понижается при добавлении воды, каждые 10% добавленной воды уменьшают плотность в среднем на 3 килограмма на сантиметр кубический, и повышается при поднятии сливок или разбавлением обезжиренным молоком. Понижение плотности молока чаще всего отличается в зимне-весенний период. При этом одна из основных причин – несбалансированность рациона, прежде всего по минеральному составу.
Стоит отметить, что плотность молока – это один из основных параметров, контролируемых на всех этапах производства молочных продуктов. Повышенная или, наоборот, сниженная плотность может указывать на нарушения в процессе получения молока, его хранения или переработки.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 715 проб материала, проведено 854 исследований, получено 2 положительных случая.
Американский гнилец - Histolysis infectijsa perniciosa larvae (злокачественный гнилец, брандербургский гнилец) - инфекционное заболевание печатного пчелиного расплода, проявляющееся летом, реже весной.
Возбудитель - спорообразующая грамположительная палочка (Paenibacillus larvae larvae (Bacillus larvae)). Окрашивается обычными анилиновыми красителями, при негативной окраске нигрозином или тушью на препарате из погибшей личинки хорошо видны споры овальной формы размером 1,2-1,8х0,6-0,7 мкм и палочки со жгутиками, имеющими спирохетообразное строение.
Устойчивость спор возбудителя американского гнильца к воздействию физических и химических средств довольно высокая, споры возбудителя сохраняют жизнеспособность в высохших трупах личинок в течении 30 лет, на сотах и ульях – до 15, в вощине – до 5, в почве – до 2 лет.
В воде при кипячении трупов личинок споры гибнут через 13 мин, при температуре 95°С, - через час, а в водяном паре - через 3,5 мин. В кипящем меде, разведенном пополам водой, споры гибнут через 20 мин, в воске, нагретом до 100°С - через пять суток, нагретом сухим жаром при 140-170°С споры погибают через 1,5-2 ч, а перегретом водяным паром (127°С) под давлением 14,71 Па в автоклаве, - за 2 ч.; 10%-ный раствор едкого натра убивает споры через 2 мин; 10%-ный раствор кальцинированной соды – 4 мин; 5-10%-ный раствор формалина – 6ч; 20%-ный – 30 мин, 1 %-ный раствор перекиси водорода, подкисленный кислотой, - за 3 ч; 10%-ный раствор однохлористого йода – 10 мин; 1-2%-ный раствор бета-пропиолактона – 20 – 30 мин.
Активное размножение бактерий американского гнильца происходит в период воспитания расплода в личинках и в основном проявляется летом, реже весной. При выявлении американского гнильца пасеку и территорию вокруг нее в радиусе 5-7 км объявляют неблагополучной по этой болезни, устанавливают карантин и принимают меры по ликвидации болезни. Соты с погибшим расплодом удаляют из больных семей и перетапливают на воск. Вытопки сжигают.
Пчел из больной семьи сметают в роевню и помещают на 1-2 дня в зимовник. Больных пчел из роевни стряхивают на лист бумаги и по сходням направляют дымом в продезинфицированный улей на чистые соты или рамки с вощиной. Бумаги после этого сжигают.
Расплод без видимых признаков поражения выращивают в специальных семьях-инкубаторах. Летки ульев таких семей заделывают мелкой сеткой, маток заменяют на здоровых, пчел обеспечивают водой и лечебным сиропом. Через 10-18 дней молодых пчел перегоняют в новое гнездо. Для лечения всех семей пасеки в зависимости от чувствительности выделенных штаммов микроорганизмов применяют антибиотики или сульфаниламидные препараты согласно действующим наставлениям. Соты, освобожденные от меда и не содержащие корочки погибшего расплода, ульи и пчеловодный инвентарь дезинфицируют.
Воск от семей неблагополучной пасеки направляют на технические цели. Мед и пыльцу реализуют только для пищевых целей. Карантин с пасеки снимают через 1 год после ликвидации заболевания.
С целью профилактики заболевания всем условно здоровым пчелиным семьям неблагополучной пасеки дают в те же сроки лечебную подкормку с аналогичными препаратами 3-4 раза. При рецидивах болезни лечение повторяют, заменяя ранее применявшийся препарат другим новым рекомендованным.

За отчетный период  в отделе ВСЭ и диагностики проведено 317 исследований.
Африканская чума свиней (АЧС) - контагиозная, природно - очаговая, остро протекающая септическая болезнь свиней с высокой летальностью.
Возбудителем АЧС является ДНК-содержащий вирус рода Asfivirus семейства Asfarviridae (далее - возбудитель).
Источником возбудителя являются больные, а также переболевшие, находящиеся в инкубационном периоде, не имеющие клинических признаков и выделяющие возбудитель во внешнюю среду свиньи и дикие кабаны (далее - вирусоносители). Передача возбудителя осуществляется алиментарным, контактным, ятрогенным, аэрогенным, трансмиссивным, внутриутробным путями и с генетическим материалом. Факторами передачи возбудителя являются секреты и экскреты больных с виней, диких кабанов и вирусоносителей, продукты убоя свиней, добычи диких кабанов и продукты их переработки, трупы свиней и диких кабанов, а также контаминированные возбудителем объекты окружающей среды, включая корма, воду, навоз, подстилку, почву, одежду и обувь обслуживающего персонала, инвентарь, оборудование, транспортные и иные материальные и технические средства.
Лабораторные исследования биологического, патологического материала и проб продуктов должны проводиться с использованием одного из методов: молекулярно-биологических исследований методом полимеразной цепной реакции (ПЦР); вирусологических исследований (изоляция вируса на чувствительной культуре клеток и его идентификация), метода обнаружения антигена возбудителя в РПИФ; метода иммуноферментного анализа. Для выявления возбудителя в продуктах убоя свиней и продуктах их переработки используется метод ПЦР.
Материал для исследования: от свиней и диких кабанов отбираются пробы сыворотки крови, крови, от трупов свиней или диких кабанов должны отбираться фрагменты селезенки, нижнечелюстные (подчелюстные), портальные, мезентериальные лимфоузлы целиком, грудная или трубчатая кость. Трупы поросят массой до 10 кг направляются целиком. Пробы пищевой продукции, кормов для свиней
Диагноз на АЧС считается установленным в случае выделения возбудителя, обнаружения антигена возбудителя, его генетического материала, антител к возбудителю.
В лаборатории проводятся исследования по выделению ДНК вируса африканской чумы свиней методом ПЦР и выявлению антител к вирусу африканской чумы свиней методом ИФА.

При установлении положительного диагноза на бруцеллез вводятся ограничительные мероприятия (карантин).

В решении об установлении ограничительных мероприятий (карантина) должны быть указаны перечень вводимых ограничительных мероприятий, срок, на который устанавливаются ограничительные мероприятия, и определены:

место нахождения источника и факторов передачи возбудителя в тех границах, в которых возможна его передача животным (эпизоотический очаг);

муниципальное образование, на территории которого установлен эпизоотический очаг (неблагополучный пункт).

Решением об установлении ограничительных мероприятий (карантина) вводятся ограничительные мероприятия в эпизоотическом очаге и неблагополучном пункте.

В эпизоотическом очаге запрещается:

- лечение больных животных;

- посещение территории посторонними лицами, кроме персонала, выполняющего производственные операции, специалистов госветслужбы и привлеченного персонала для ликвидации эпизоотического очага, лиц, проживающих и/или временно пребывающих на территории, признанной эпизоотическим очагом;

- ввоз и вывоз животных, за исключением вывоза животных на убой на предприятия по убою или оборудованные для этих целей убойные пункты;

- вывоз и использование молока, за исключением молока, прошедшего термическую обработку в соответствии с правилами;

- выпас, перемещение и перегруппировка животных;

- заготовка и вывоз кормов, с которыми могли иметь контакт больные животные (за исключением кормов, прошедших термическую обработку в соответствии с правилами);

- вывоз инвентаря и иных материально-технических средств;

- сбор, обработка, хранение и использование спермы, яйцеклеток и эмбрионов, полученных в эпизоотическом очаге;

- использование больных животных и полученного от них приплода для разведения;

- использование водоемов, не связанных с другими поверхностными водными объектами, для водопоя здоровых животных в течение 90 календарных дней после последнего поения из них больных животных;

- въезд и выезд транспортных средств (за исключением транспортных средств, задействованных в мероприятиях по ликвидации эпизоотического очага и/или по обеспечению жизнедеятельности людей);

- охота на животных, отнесенных к охотничьим ресурсам, за исключением охоты в целях регулирования численности охотничьих ресурсов.
В неблагополучном пункте запрещается проведение сельскохозяйственных ярмарок, выставок, аукционов и других мероприятий, связанных с перемещением и скоплением животных.

Репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС) - контагиозная вирусная болезнь свиней.

Характерными клиническими признаками РРСС являются угнетенное состояние, отказ от корма, повышение температуры тела, конъюнктивит, отек век, потеря зрения, поражение органов дыхания, цианоз ушей, хвоста, молочных желез, вульвы, поздние аборты, преждевременные опоросы или задержка опороса, рождение нежизнеспособного молодняка, молодняка с признаками уродства, гибель поросят на 2-7 сутки жизни, гибель поросят-отъемышей с признаками пневмонии и диареи. У хряков ухудшается качество спермы.
Возбудителем является РНК-содержащий вирус рода Arterivirus семейства Arteriviridae.Инкубационный болезни составляет от 4 до 37 суток.

Источником возбудителя являются больные, переболевшие или павшие от РРСС свиньи, их органы, кровь, ткани, секреты и экскреты.

Передача возбудителя осуществляется контактным, половым, а также транс-плацентарным путями. Факторами передачи возбудителя являются трупы павших свиней, мясо и иные продукты убоя, отходы, полученные при переработке сырья животного происхождения, корма, вода, почва, подстилка, навоз, инвентарь и иные материально-технические средства, контаминированные возбудителем.

При возникновении подозрения на РРСС должен проводиться отбор проб биологического и (или) патологического материала:

- в случае если подозрение на РРСС возникло у индивидуально содержащихся животных, пробы должны отбираться у каждого индивидуально содержащегося животного;
- в случае если подозрение на РРСС возникло в изолированно содержащейся группе свиней (далее - группа), насчитывающей до 50 голов, пробы должны отбираться от 15 свиней; в группе, насчитывающей от 51 до 100 голов, -  от 22 свиней; в группе, насчитывающей от 101 до 500 голов, - от 25 свиней; в группе, насчитывающей 501 голову и более, -  от 30 свиней.
От живых свиней с повышенной температурой тела отбирается кровь в объеме 3-5 мл.

От трупов свиней (не более 3 голов) отбираются фрагменты селезенки и легких массой 5-10 г, экссудат из грудной полости, средостенные лимфатические узлы. Каждый абортированный плод направляется в лабораторию Упаковка и транспортирование проб биологического и (или) патологического материала должны обеспечивать их сохранность и пригодность для исследований в течение срока транспортировки. Пробы биологического и (или) патологического материала охлаждаются, а на период транспортирования - помещаются в термос со льдом или охладителем.

Утечка (рассеивание) биологического и (или) патологического материала во внешнюю среду не допускается. Доставка биологического и (или) патологического материала в лабораторию должна осуществляться в течение 48 часов с момента отбора.

Контейнеры, емкости с пробами биологического и (или) патологического материала должны быть упакованы и опечатаны.

В сопроводительном письме к пробам биологического и (или) патологического материала должны быть указаны дата, время отбора проб, дата последней вакцинации свиней против РРСС, номер серии использованной вакцины, производитель вакцины, адрес места отбора проб, перечень проб, основания для подозрения на РРСС, адрес и телефоны специалиста в области ветеринарии, осуществившего отбор проб.

Пробы биологического и (или) патологического материала должны быть доставлены в лабораторию специалистом в области ветеринарии, осуществившим отбор проб.

Диагноз на РРСС считается установленным, если выделен возбудитель или обнаружен его генетический материал или антитела к возбудителю, не связанные с вакцинацией.

Лабораторные исследования проб биологического и (или) патологического материала должны проводиться с использованием следующих методов:

выделение вируса в чувствительной культуре клеток;                       

полимеразной цепной реакции;

иммуноферментного анализа.

Для профилактики РРСС должна проводиться вакцинация свиней вакцинами, допущенными к обращению на территории Российской Федерации, согласно инструкциям по их применению, в соответствии с планом диагностических исследований, ветеринарно-профилактических и противоэпизоотических мероприятий в хозяйствах всех форм собственности на территории субъекта Российской Федерации на текущий календарный год.

Контаминация объектов окружающей среды патогенными и условно-патогенными микроорганизмами — одна из причин распространения инфекционных заболеваний. Воздействие возбудителей зоонозов и зооантропонозов наряду с бесконтрольным использованием химиотерапевтических средств нередко приводит к развитию дисбактериоза - изменения количественного и качественного состава микрофлоры в слизистой оболочке кишечника. В последние десятилетия наблюдается тенденция к увеличению числа факторов, способствующих развитию дисбактериозов, которые с трудом поддаются лечению.

Как правило, для диагностики дисбактериоза и оценки эффективности препаратов проводят длительные бактериологические исследования, требующие серьезных затрат на питательные среды. В качестве ориентировочной диагностики можно использовать микроскопические методы, имеющие очевидные преимущества по времени и технике подготовки препаратов. Однако при микроскопии возникают определенные сложности, например при дифференциации кислотоустойчивых микроорганизмов и ооцист простейших.

Для идентификации микроорганизмов применяют бактериологические и микологические методы. При прижизненной диагностике на предметное стекло наносили 2 капли изотонического (0,9 %) раствора хлорида натрия и небольшое количество фекалий. Готовят тонкий мазок, который высушивают на воздухе (30 мин), крупные частицы удаляли скальпелем. Фиксируют в течение 15 мин смесью Никифорова (равные части эфира и 96° этилового спирта). Препараты окрашивают сафранином, нигрозином или карболовым фуксином по Циль-Нильсену. При посмертной диагностике исследуют мазки-отпечатки из слизистой оболочки подвздошной кишки павших или убитых телят. Предметное стекло прикладывают непосредственно к слизистой оболочке, полученный отпечаток высушивают и фиксируют над пламенем горелки. Исследуемые мазки окрашивают по Граму и метиленовым синим.

К объективным критериям, свидетельствующим о нарушении экологического баланса в биотопе желудочно-кишечного тракта, следует отнести число и процентное соотношение патогенных и условно-патогенных энтеробактерий, которые неприхотливы и достаточно быстро растут на обычных питательных средах. Количественный учет лактозанегативные энтеробактерий и бактерий со слабой лактозной активностью служит достоверным способом выявления дисбактериоза кишечника.

При этом следует иметь в виду, что в этиологии желудочно-кишечных инфекций телят наиболее значимое место занимают представители родов Salmonella,Escherichia, Citrobacter, Enterobacter, Klebsiella, Proteus, Morganella, Providencia. Дифференциация указанных возбудителей требует времени для выделения чистой культуры, а также проведения множества тестов.

Таким образом, для прижизненного определения количественного и качественного состава микрофлоры в кишечнике достаточно точным и легковыполнимым в практических условиях методом служит окраска карболовым фуксином по Циль-Нильсену, с помощью которой можно выявить и дифференцировать возбудителей болезней, относящихся к разным систематическим группам (бактерии, грибы, ооцисты простейших). При посмертной диагностике наиболее эффективен метод отпечатков, сохраняющий естественную архитектонику сочленов микробиоценоза желудочно-кишечного тракта. Использование хромогенных сред позволяет в течение суток выделить и идентифицировать соответствующие бактерии без проведения дополнительных тестов. Применение щадящих методов фиксации и обезвоживания объектов дает возможность наблюдать за процессами роста и развития популяций микроорганизмов как в естественных условиях, так и при воздействии неблагоприятных факторов.

Сап (malleus) – контагиозное зоонозное, преимущественно хронически протекающее инфекционное заболевание, вызываемое бактерией Burkholderia mallei и протекающее по типу септикопиемии с образованием специфических гранулем и абсцессов (сапных узелков) и проявляющееся язвенным ринитом и лимфаденитом, гнойно-некротическими поражениями кожи.

В основном сап поражает лошадей, мулов, верблюдов и ослов. Так же заболевание может передаваться животным семейства кошачьих (при поедании мяса больных сапом животных), человеку.

Сап имеет острое и хроническое течение. Хронический сап может принимать кожную, легочную или носовую форму.

По течению заболевания различают острую и хроническую формы. Животные, заразившиеся сапом в хронической (латентной) форме, как правило, не умирают, но остаются носителями инфекции. Заражение в острой форме практически всегда имеет летальный исход.

Человек заражается при непосредственном контакте с больными животными. Передача осуществляется через повреждённую кожу, корма, воду, пищу, вместе с выделениями больного животного. При близком контакте с животным заражение возможно воздушно-капельным путём.

В серологическом отделе для диагностики сапа проводят пластинчатую реакцию агглютинации с сапным цветным антигеном (РА) и реакцию связывания комплемента (РСК) в соответствии с Наставлением по диагностике сапа № 13-7-2/537 от 26.02.96 с изменениями № 13-7-2/1128 от 22.12.97. При получении положительного результата в РА или РСК животных считают подозреваемыми в заболевании сапом.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 27 проб, проведено 76 исследований. 
За отчетный период выявлено 2 положительных результата
В 1 пробе средства моющего технического с дезинфицирующим эффектом «АКВАдез-НУК 15» м.д. надуксусной кислоты - ниже нормы; м.д. перекиси водорода - ниже нормы.

Левомицетин (Хлорамфеникол) в продуктах питания

Хлорамфеникол (левомицетин) – естественный представитель группы амфениколов, антибиотик широкого спектра действия. Он обладает бактериостатическим действием против возбудителей таких заболеваний, как дизентерия, брюшной тиф, пневмония, сибирская язва и многих других опасных микроорганизмов. Его молекула имеет небольшие размеры, что вместе с хорошей жирорастворимостью позволяет ему легко проникать во все ткани тела, в том числе и в мозг.
Антибиотики применяют для лечения инфекционных заболеваний у людей и животных, а также в качестве стимуляторов роста в животноводстве, поэтому их остаточные количества могут встречаться в пищевых продуктах животного происхождения.  Употребление в пищу продуктов, содержащих остаточные количества антибиотиков, негативно сказывается на организме человека. Хлорамфеникол долго остается в организме животных и в пищевых продуктах, мясе, также он хорошо растворяется в жирах и в значительных количествах выделяется с молоком.
В сельском хозяйстве и ветеринарии левомицетин применяется для лечения животных и птиц, больных желудочно-кишечными заболеваниями и заболеваниями дыхательных путей.
В отделе химических исследований левомицетин в продуктах питания определяют, применяя метод иммуноферментного анализа. Методика определения предназначена для проведения измерений массовой концентрации хлорамфеникола с использованием набора реагентов ИФА антибиотик-хлорамфеникол производства ООО «Компания Альгимед».
Используемый метод основан на конкурентном колориметрическом иммуноферментном анализе.
В основе принципа действия тест-системы лежит реакция антиген – антитело. Лунки микротитровального планшета покрыт антителами захвата к антителам к хлорамфениколу. Планшет уже функционализирован антителами к хлорамфениколу, которые связаны иммобилизированными антителами захвата.
В лунки вносят растворы стандартов или проб и конъюгат хлорамфеникола.
Свободный хлорамфеникол и конъюгированный с ферментом конкурируют за места связывания с антителами. Все несвязанные молекулы конъюгата затем удаляют на этапе отмывки. Конъюгат преобразует хромоген в окрашенные в синий продукты реакции. Внесение стоп-раствора ведет к изменению окраски от синей к желтой. Измерения выполняют фотометрически при длине волны 450 нм. Оптическая плотность обратно пропорциональна концентрации хлорамфеникола в пробе.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 1327 проб материала, проведено 1542 исследований, выделено 15 положительных результатов.

Дифиллоботриоз - кишечный гельминтоз, возникающий вследствие инвазии человека паразитическими червями-лентецами. Возбудители дифиллоботриоза паразитируют в тонкой кишке. Природные очаги дифиллоботриоза располагаются преимущественно в районах умеренного и холодного климата.
Возбудителями дифиллоботриоза человека могут выступать 12 видов паразитических червей–лентецов, наиболее частым представителем которых является Diphyllobothrium latum (лентец широкий). D. Latum – крупный паразитический червь, длина которого может достигать 7-10 м. Стробила (тело) широкого лентеца состоит из 3-4 тысяч члеников – проглоттид; сколекс (головка) снабжена двумя щелевидными присосками, посредством которых он крепится к стенке тонкой кишки.
Жизненный цикл развития широкого лентеца предполагает смену трех хозяев; при этом окончательным хозяином выступает человек или животные (кошки, собаки, лисы, медведи), промежуточным - пресноводные рачки, дополнительным - пресноводные рыбы (окунь, щука, ерш, налим, лососевые). Из кишечника окончательного хозяина яйца лентеца с фекалиями попадают в окружающую среду.
Их дальнейшее развитие происходит в воде, где через несколько недель из яиц выходят личинки – корацидии. В воде они заглатываются промежуточными хозяевами - веслоногими рачками, в организме которых переходят в следующую личиночную стадию развития - процеркоиды. Инвазированные рачки служат пищей для пресноводных рыб, в организме которых процеркоиды превращаются в инвазионных для человека личинок – плероцеркоид. В мышцах, икре, печени рыб личинок лентеца можно рассмотреть невооруженным глазом.
Заражение человека дифиллоботриозом происходит при употреблении в пищу сырой, плохо термически обработанной, малосольной рыбы или икры, содержащей плероцеркоиды. Попадая в тонкую кишку окончательного хозяина, личинки прикрепляются к ее слизистой оболочке и превращаются в половозрелых гельминтов, способных выделять яйца. В организме человека широкий лентец способен паразитировать 20-25 лет. Человек, больной дифиллоботриозом, для окружающих не заразен.

 

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1794 исследований.

КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА ДЕЗИНФЕКЦИИ

Критерии контроля качества дезинфекции. Бактериологический контроль качества дезинфекции осуществляют сотрудники ветеринарных лабораторий периодически или в сроки, установленные с учетом эпизоотической обстановки, технологии производства, целей дезинфекции и других конкретных особенностей.
При бактериологическом контроле качества дезинфекции определяют наличие на поверхностях обеззараживаемых объектов жизнеспособных клеток санитарно-показательных микроорганизмов — бактерий группы кишечных палочек (Escherichia, Citrobacter, Enterо bacter), стафилококков (S. aureus, S. epidermatis, S. saprophiticus), микобактерий или спорообразующих аэробов рода Bacillus.
По наличию или отсутствию бактерий группы кишечных палочек определяют качество профилактической и вынужденной (текущей и заключительной) дезинфекции при бруцеллезе, эшерихиозе, лептоспирозе, листериозе, болезни Ауески, лейкозе, пастереллезе, сальмонеллезах, трихомонозе, кампилобактериозе, трипаносомозе, токсоплазмозе, инфекционном ринотрахеите, парагриппе и вирусной диарее крупного рогатого скота, контагиозной эктиме, инфекционной агалактии и контагиозной плевропневмонии овец и коз, отечной болезни, инфекционном атрофическом рините, дизентерии, трансмиссивном гастроэнтерите, балантидиозе, гемофилезной плевропневмонии и роже свиней, ринопневмонии лошадей, пуллорозе-тифе птиц, миксомотозе кроликов, микоплазмозе птицы.
По наличию или отсутствию стафилококков контролируют качество текущей дезинфекции при туберкулезе, болезнях, вызываемых спорообразующими микроорганизмами, и экзотических инфекциях, а также качество заключительной дезинфекции при туберкулезе, аденовирусных инфекциях, ящуре, оспе, туляремии, орнитозе (пситтакоз), диплококкозе, стафилококкозе, стрептококкозе, некробакте- риозе, катаральной лихорадке, бешенстве, чуме животных всех видов, злокачественной катаральной горячке, ринопневмонии и паратуберкулезном энтерите крупного рогатого скота, инфекционной катаральной лихорадке, копытной гнили и инфекционном мастите овец, везикулярной болезни свиней, инфекционной анемии, инфекционном энцефаломиелите, эпизоотическом лимфангите, сапе и мыте лошадей, гепатите утят, вирусном энтерите гусят, инфекционном бронхите, ларинготрахеите, болезни Марека, болезни Гамборо, ньюкаслской болезни, вирусном энтерите, алеутской болезни, псевдо- монозе и инфекционном гепатите плотоядных, хламидиозах, риккетсиозах, энтеровирусных инфекциях, гриппе сельскохозяйственных животных и птицы, трихофитии, микроспории, других микозах животных и птицы, актиномикозе крупного рогатого скота, а также болезнях, вызываемых неклассифицированными вирусами, при дезинфекции вагонов II категории. Качество заключительной дезинфекции при микозах контролируют также по выделению соответствующих возбудителей.
Качество заключительной дезинфекции при туберкулезе контролируют по выделению стафилококков и микобактерий. При сибирской язве, эмфизематозном карбункуле, брадзоте, злокачественном отеке, других споровых инфекциях и экзотических инфекциях— по наличию или отсутствию спорообразующих микроорганизмов рода Bacillus.