За отчетный период в отдел химических исследований поступило 75 проб, проведено 335 исследований. 
В двух пробах арбуза массовая доля нитратов - 2 выше нормы 

Содержание нитратов в бахчевых культурах

В летнюю пору практически все люди с удовольствием лакомятся сочной арбузной мякотью, которая наиболее склонна к поглощению вредных веществ. Арбузы, дыни и другие бахчевые культуры способны вмещать в себя огромное количество нитратов, и во многом это зависит от больших размеров, которых они могут достигать. Исследования и статистика отравлений показывают, что арбузы чаще других ягод, овощей и фруктов подвергаются выращиванию на нитратах. Определяют нитраты с помощью ионометрического метода.
Следует отметить, что ранние арбузы содержат, как правило, повышенное количество нитратов, поэтому лучше всего эти ягоды покупать в конце лета или в начале осени. Однако свойства плода зависят не столько от сезона, сколько от условий его выращивания и полива. Норма нитратов в арбузе не должна превышать 60 мг на килограмм продукта, а все, что свыше этих показателей, представляет угрозу для здоровья и жизни человека.
Сущность метода. Сущность метода состоит в извлечении нитратов из анализируемого материала раствором алюмокалиевых квасцов с последующим измерением их концентрации в полученной вытяжке с помощью ионоселективного электрода.
Ход анализа. 10,0 г взвешенного до первого десятичного знака, измельченного на терке, мясорубке или мезгообразователе материала помещают в стакан вместимостью около 100 см³, наливают 50 см³ 1 %-ного раствора алюмокалиевых квасцов и перемешивают с помощью мешалки в течение трех минут.
В полученной суспензии, приготовленной одним из описанных способов, измеряют концентрацию нитрат-ионов.

За отчётный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 427 проб материала, проведено 472 исследования, положительных случаев не выявлено.

Лабораторная диагностика сальмонеллеза пчёл

Сальмонеллёз пчёл - инфекционная болезнь пчелиных семей, вызываемая бактериями рода Salmonella.
Болезнь возникает при неудовлетворительных условиях содержания пчёл в конце зимы и весной и характеризуется интенсивным размножением возбудителя в гемолимфе, куда он попадает из поражённого кишечника.
Больные пчёлы в период весеннего облёта выделяют зловонный, клейкий полужидкий кал желто-бурого цвета. Кишечник погибших пчёл вздут и имеет грязно-серый или желто-серый цвет.
Болезнь могут вызывать следующие сальмонеллы: S. pullorum gallinarum, S. typhimurium, S. dublin, S. cholerae suis и другие.
Диагноз на сальмонеллёз ставят на основании эпизоотологических данных, характерных признаков поражения пчелиных семей и результатов лабораторного исследования.
Для исследования в лабораторию направляют не менее 50 живых пчёл с признаками заболевания. Пчёл помещают в стеклянные банки, которые обвязывают 2-3 слоями марли.
Лабораторная диагностика сальмонеллёза включает микроскопию мазков из патологического материала и выделение культуры возбудителя с последующей её идентификацией.
Микроскопическое исследование.
Для приготовления мазков от 10-15 пчёл, убитых парами эфира или хлороформа, берут гемолимфу, делая прокол перепонки между 3 и 4 сегментами брюшка тонко оттянутой пастеровской пипеткой. Гемолимфу наносят на предметное стекло, мазок высушивают, фиксируют над пламенем горелки и окрашивают по Граму.
В положительных случаях в мазках находят мелкие полиморфные грамотрицательные палочки.
Бактериологическое исследование.
Выделение культуры возбудителя. Поверхность хитинового покрова пчёл дезинфицируют обжиганием и получают гемолимфу. Гемолимфу высевают в МПБ, на МПА и среду Эндо, Плоскирева или Левина.
Выделение и идентификацию возбудителей сальмонеллёза пчёл осуществляют в соответствии с действующими Методическими указаниями по бактериологической диагностике сальмонеллёзов животных.
Лабораторный диагноз на сальмонеллез считают установленным при выделении из патологического материала бактерий рода Salmonella.
Срок исследования - до 5 дней.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 1090 исследований.
Ящур - острое вирусное заболевание из группы зоонозов, характеризующееся интоксикацией и везикулёзно-эрозивным (пузырьково-язвенным) поражением слизистых оболочек ротовой и носовой полости, а также кожи межпальцевых складок и околоногтевого ложа.
Возбудителем ящура является РНК-содержащий вирус семейства Picomaviridae рода Aphtovirus, который отличается значительной антигенной вариабельностью. Существует семь типов вируса: О, А, С, Sat-1, Sat -2, Sat -3, Азия-1 и их варианты (топотипы и генетические линии). Восприимчивые животные, переболевшие ящуром, вызванным вирусом одного типа, могут заболевать ящуром, вызванным вирусом другого типа. В лаборатории исследования материала проводятся с использованием следующих методов: полимеразной цепной реакции и иммуноферментного анализа.
Для выявления РНК вируса ящура методом ПЦР направляется материал:
- Мазки и смывы из глотки берут сухими ватными зондами. Зонд с материалом помещают для транспортировки в пробирки со стерильным физиологическим раствором.
- Выделения из носа и рта собирают в стерильную тару, в количестве не менее 0,3-0,5 мл.
- Отбор пищеводно-заглоточной жидкости проводят при помощи пищеводно-глоточного зонда (у свиней мазок из зева). Отобранная жидкость должна содержать некоторое количество клеточного материала, видимого невооруженным глазом, но не должна содержать пищевых масс.
-Тканевый материал (внутренние органы, мышцы, афты, соскобы с кожи, пищевые продукты, молоко) помещают в стерильные контейнеры.
- Кровь забирается в пробирку с антикоагулянтом (ЭДТА), закрытую пробирку с кровью несколько раз переворачивают. Для получения сыворотки забирают кровь в пробирку без антикоагулянта.
- Смывы с поверхностей (внутрилабораторных, с поверхностей тары, кормушек, мест содержания животных и др.) отбирают в стерильную тару с 0,5 мл физиологического раствора.
При отборе материала для ПЦР-исследования важно учитывать тропность возбудителя к определённому виду эпителия или среде.
Допускается однократное замораживание-оттаивание материала.
Методом ИФА выявляются антитела к неструктурным белкам вируса ящура (основной метод серологического мониторинга отсутствия вирусной инфекции в вакцинированных и невакцинированных  стадах, ретроспективной диагностики заболевания) и выявляются антитела к структурным белкам (серотипоспецифическим, определяющим антитела, индуцированные при вакцинации или инфекции).