В серологическом отделе исследуют на лептоспироз сыворотку крови и мочу животных в соответствии с ГОСТ 25386-91 «Животные сельскохозяйственные, методы лабораторной диагностики лептоспироза».

Мочу исследуют непосредственно после взятия или после центрифугирования. Прозрачную мочу, не содержащую кристаллов солей, хлопьев, спермиев и других посторонних частиц, центрифугируют при 10000-12000 об/мин в течение 30 мин, сливают надосадочную жидкость и осадок ресуспендируют в оставшейся капле мочи и микроскопируют.
Мочу, содержащую значительное количество посторонних частиц, очищают центрифугированием при 3000 об/мин в течение 10 мин, затем сливают надосадочную жидкость и центрифугируют ее для осаждения лептоспир при 10000-12000 об/мин в течение 30 мин.

Наличие лептоспир устанавливают по следующим признакам.
Типичные лептоспиры представляют собой спиралеподобные тонкие серебристые нити, концы которых, оба или один, загнуты и булавовидно утолщены. Встречаются и бескрючковые формы лептоспир. Лептоспиры подвижны. В жидких средах обычными формами движения являются: вращательное, прямолинейное поступательное с одновременным вращением вокруг собственной оси и круговое.

За отчетный период в отдел химических исследований поступило 39 проб, проведено 137 исследований.

Влияние пестицидов на пчел 

Во всем мире интенсивно применяются пестициды. Они стали незаменимыми составляющими в технологических схемах агротехнических работ сельскохозяйственных предприятий. Применяют их и многие владельцы приусадебных участков и садов, дачники.
Известно, что при благоприятных погодных условиях летная пчела за один вылет посещает 70—200 цветков различных культур, собирая 30 мг нектара. В течение светового дня пчелы делают 10—15 вылетов из улья, контактируя с цветками растений по 5—9 часов. При этом сбор нектара одной пчелосемьи в хорошую погоду за сутки превышает несколько килограммов.
От отравления патологические изменения у пчел проявляются постепенно, сперва от первичного контакта с принесенными в ульи ядохимикатами сила семей ослабевает, затем по мере поедания отравленных кормозапасов они подвергаются дальнейшему поражению. Так, в ходе наблюдений замечено, что воздействие менее агрессивного химиката, занесенного с кормами пчелами-сборщицами, прослеживается на внутриульевых пчелах всех возрастов. Корма (нектар, пыльца) обрабатывают пчелы старших возрастов, так называемые приемщицы. Затем пчелы-кормилицы через корма передают токсины в маточное молочко, подготовленные корма — в питание расплоду, трутням и матке. Длительное потребление отравленных кормозапасов влечет за собой неминуемую гибель пчелосемьи. Смертельное поражение может растягиваться как в течение сезона, так и проявляться уже в период зимовки без видимых характерных симптомов.
Пестициды могут находиться на поверхности наземной части растений при непосредственной их обработке в стадии вегетации. Некоторые проникают из обработанной почвы, а также через листья в растения и длительное время содержатся в растительном соке, нектаре и пыльце. Это так называемые пестициды системного действия. Они могут выступать с утренней росой, собираться в мелких лужицах и водоемах, из которых пчелы будут брать воду.

За отчетный период в отдел бактериологии и паразитологии поступило 368 проб материала, проведено 442 исследований, выявлено 3 положительных результатов.

Бактериологическое исследование мяса и мясопродуктов

Бактериологическое исследование мяса и мясопродуктов проводят во всех случаях, предусмотренных разделами 3, 4 и 5 настоящих Правил ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов, для решения вопроса их использования.
В зависимости от предполагаемого диагноза и характера патологоанатомических изменений для бактериологического исследования направляют: часть мышцы сгибателя или разгибателя передней и задней конечностей туши, покрытую фасцией длиной не менее 8 см, или кусок другой мышцы не менее 8 x 6 x 6 см; лимфатические узлы от крупного рогатого скота - поверхностный шейный или собственно подкрыльцовый и наружный подвздошный, а от свиней - поверхностный шейный дорзальный (при отсутствии патологоанатомических изменений в области головы и шеи) или подкрыльцовый первого ребра и надколенный; селезенку, почку, долю печени с печеночным лимфатическим узлом (или при отсутствии лимфатический узла - желчный пузырь без желчи). При взятии части печени, почки и селезенки поверхность разрезов прижигают до образования струпа. При исследовании полутуш или четвертин туш для анализа берут кусок мышцы, лимфатические узлы и трубчатую кость. При исследовании мяса мелких животных (кролики, нутрии) и птицы в лабораторию направляют тушки целиком. При исследовании соленого мяса, находящегося в бочечной таре, берут образцы мяса и имеющиеся лимфатические узлы сверху, из середины и со дна бочки, а также при наличии - трубчатую кость и рассол. При подозрении на рожу, помимо мышцы, лимфатических узлов и внутренних органов, в лабораторию направляют трубчатую кость. Для бактериологического исследования на листериоз направляют головной мозг, долю печени и почку.
При подозрении на сибирскую язву, эмкар, злокачественный отек для исследования направляют лимфатический узел пораженного органа или лимфатический узел, собирающий лимфу с места локализации подозрительного фокуса, отечную ткань, экссудат, а у свиней, кроме того, подчелюстной лимфатический узел.
Взятые для исследования пробы с сопроводительным документом направляют в лабораторию во влагонепроницаемой таре, в запломбированном или опечатанном виде.
Если в туше или органах обнаружены сальмонеллы, внутренние органы направляют на утилизацию, а мясо направляют на проварку, переработку на мясные хлеба или консервы.
Если в мышечной ткани или лимфатических узлах будет обнаружена кишечная палочка, то мясо направляется для переработки на вареную или варено-копченую колбасу.
При выделении кишечной палочки только из внутренних органов последние перерабатывают, а туши выпускают без ограничений.
При обнаружении в глубоких слоях мускулатуры или лимфатических узлах бактерий кокковой группы, а также гнилостных микробов (в особенности из группы протея), но при хороших органолептических показателях мясо направляют на проварку или для переработки на мясные хлеба. При органолептических показателях, свидетельствующих о гнилостном разложении мяса и мясопродуктов, или при несвойственном им запахе, не исчезающем при пробе варки, такое мясо и мясопродукты направляют на техническую утилизацию или уничтожают.

За отчетный период в отделе ВСЭ и диагностики проведено 2357 исследований.

Clostridium perfringens – это анаэробные, грамположительные, спорообразующие палочки.
Пищевые инфекции, вызванные Clostridium perfringens, приобретают все большую значимость. Clostridium perfringens широко распространен в окружающей среде. Обнаружение Clostridium perfringens свидетельствует о некогда имевшем место фекальном загрязнении.
С. perfringens (семейства Bacillaceae) имеют крупные (0,6-1 х 1-1,5 мкм) вегетативные клетки в форме коротких палочек с обрубленными под прямым углом концами. Как правило, бактерии грамположительные (в старых культурах могут быть грамотрицательными), лишены жгутиков и неподвижны, in vivo образуют капсулу. Капсулы наиболее выражены у вирулентных штаммов. Форма клетки может варьировать в зависимости от состава среды. Споры крупные (диаметр больше диаметра бактерии), округлые или овальные, расположены центрально или субтерминально. На плотных средах C. perfringens образует S- и R-колонии. S-колонии круглые, куполообразные, с гладкими ровными краями, в начале роста прозрачные, напоминающие капли росы, позднее – мутные, серовато-белые. R-колонии неправильной формы, бугристые, с шероховатыми неровными краями, в глубине агара напоминают комки ваты. У некоторых штаммов образуются слизистые М-колонии.
C. perfringens – факультативные анаэробы, хемоорганотрофы. Их колонии на плотных средах окружены зоной гемолиза, который может быть либо полным, либо частичным. На жидких и полужидких средах, особенно содержащих глюкозу, рост колоний происходит очень бурно, с выделением Н2 и СО2. C. perfringens растет в анаэробных условиях на мясных питательных средах с добавлением сахаров, оптимум рН – 7,2-7,4, рост возможен и в интервале рН 5-8,5. Спорообразование обычно происходит в почве и кишечнике. Споры можно получить in vitro на щелочных средах, богатых белком и не содержащих сбраживаемых углеводов. Спорообразование стимулируется прогреванием при 75 °C в течение 10-15 мин. Серовар А относительно толерантен к краткосрочным кислородным воздействиям. При варке мяса некоторые штаммы погибают за несколько минут, тогда как другие (серовары А и С) выживают при кипячении и даже автоклавировании в течение 1-6 ч. Термоустойчивость спор серотипов B и D относительно невысока (погибают при кипячении в течение 15-30 мин). Споры, находящиеся в жировой ткани, сохраняют жизнеспособность в течение длительного времени. Споры C. perfringens отличаются высокой устойчивостью к химическим и физическим воздействиям. Протеолитическая активность слабая, оксидазо- и каталазонегативны, интенсивно створаживают молоко.  Расщепляют глюкозу и другие углеводы с образованием кислоты. Только бактерии C. perfringens способны восстанавливать нитраты, расщеплять лактозу и продуцировать лецитиназу (α-токсин). Серовары (A–F) различают по антигенным свойствам – способности образовывать различные экзотоксины.